Name: Een microfysiologisch systeem om leukocyten-endotheelcelinteractie tijdens ontsteking te bestuderen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-12-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 55 s
Description: Leer een biomimetisch microfluidisch assay om leukocyt-endotheelcelinteracties tijdens ontsteking te bestuderen met primaire humane cellen. Deze methode ondersteunt screening van potentiële therapeutica.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd ondersteund door de National Institutes of Health, Grant Number: GM114359 en GM134701 (M.F.K. en L.E.K.), 1F31AI164870-01 (J.C.L.), en Defense Threat Reduction Agency, Grant Number: HDTRA11910012 (M.F.K. en L.E.K.).

Hepariniseerd menselijk bloed wordt verkregen voor neutrofiele isolatie van gezonde volwassen donoren (mannen en vrouwen, tussen 21 en 60 jaar oud), na geïnformeerde toestemming zoals goedgekeurd door de Institutional Review Board van Temple University (Philadelphia, PA, VS).
1. Het apparaat primen en coaten met menselijke fibronectine
OPMERKING: De bMFA heeft twee inlaatpoorten en twee uitlaatpoorten die zijn aangesloten op het vasculaire compartiment. Het heeft ook één poort aangesloten op het weefselcompartiment (figuur 2).
<ol><li>Steek buizen (O.D. van 0,06" en I.D. van 0,02") (Tabel van materiaals) in alle poorten behalve één inlaatpoort met fijnpunttang. Klem de twee uitlaatpoorten en de poort van het tissuecompartiment vast met kaakklemmen. Zorg ervoor dat elke buis ~ 1 inch lang is.</li>
	<li>Verdun humaan fibronectine tot 100 μg/ml met PBS uit fibronectine stockoplossing (1mg/ml). Laad een spuit van 1 ml met bereide fibronectine-oplossing. Sluit de spuit aan op een stompe naald van 24 G en een slang van ~ 4 inch. OPMERKING: Om crosslinking te voorkomen, mag u humane fibronectine niet te veel mengen/pipetten. Andere extracellulaire matrices (ECM) zoals collageen kunnen worden gebruikt voor verschillende celtypen.</li>
	<li>Steek de slang in de open inlaatpoort, duw de zuiger totdat humaan fibronectine uit de andere inlaatpoort komt en klem deze vervolgens vast. Herhaal dit proces voor de rest van de poorten totdat alle kanalen, weefselcompartiment en slangen zijn gevuld met de menselijke fibronectine-oplossing. Verwijder de naald, maar houd de 4-inch lange slang ingebracht en ongecensureerd. OPMERKING: Zorg ervoor dat de slang gevuld is met fibronectine voordat deze wordt geklemd.</li>
	<li>Sluit voor het ontgassen de niet-verlichte buis aan op een gecomprimeerde stikstoftank via de pneumatische primer, stel de druk in op ~ 5 psi en laat gedurende ~ 15 minuten lopen.</li>
	<li>Controleer na 15 minuten onder de microscoop of er geen luchtbellen in het apparaat vastzitten. Als er luchtbellen in het kanaal of weefselcompartiment zijn opgesloten, sluit u het apparaat opnieuw aan op de pneumatische primer om opnieuw te ontgassen, d.w.z. herhaal stap 1.4. OPMERKING: Omgekeerde microscoop wordt gebruikt in alle stappen met betrekking tot microscopie in dit protocol.</li>
	<li>Verwijder het apparaat uit de pneumatische primer. Incubeer het apparaat gedurende 1 uur bij 37 °C en spoel vervolgens alle kanalen en het weefselcompartiment door met voorverwarmde HLMVEC-kweekmedia (Materiaaltabel), vergelijkbaar met stap 1.3. De bMFA is nu klaar voor celzaaien. OPMERKING: Voordat u een slang uit de poort verwijdert/plaatst, plaatst u eerst een druppel water met een pipet rond de basis van de inlaatpoortbuis om te voorkomen dat er lucht in het apparaat komt.</li>
</ol>2. BMFA zaaien met HLMVEC
<ol><li>Cultuur HLMVEC tot 60%- 80% confluency volgens het protocol van de leverancier in een T-25 kolf.</li>
	<li>Aspirate HLMVEC kweekmedia uit celkweekfles. Was tweemaal met PBS.</li>
	<li>Voeg 2 ml voorverwarmde trypsine-EDTA-oplossing (37 °C) toe aan de T-25-kolf. Incubeer gedurende 3-5 minuten in een incubator (37 °C, 5% CO2) totdat de meeste cellen uit de kolf zijn losgemaakt. OPMERKING: Incubatietijd kan variëren voor verschillende celtypen en trypsine-EDTA-concentratie.</li>
	<li>Voeg 2 ml trypsineneutralisatieoplossing (TNS, 37 °C) toe aan de kolf om trypsine-EDTA te neutraliseren.</li>
	<li>Tik zachtjes op de kolf om de cellen te helpen dissociëren. Breng vervolgens de celsuspensieoplossing over naar een conische buis van 15 ml.</li>
	<li>Centrifugeer gedurende 5 minuten bij 150 x g om de endotheelcellen te pelleteren. Verwijder de supernatant- en resuspendcellen in 3 ml celkweekmedia. Tel het aantal cellen met een hemocytometer.</li>
	<li>Centrifugeer opnieuw gedurende 5 minuten bij 150 x g om de cellen te pelleteren. Verwijder het supernatant en resuspend de cellen tot de gewenste zaaidichtheid van 20 x 106/ml. OPMERKING: Afhankelijk van de celtypen en de confluentie kan ongeveer 2 x 106 endotheelcellen worden verzameld uit twee T-25-kolven en met de zaaidichtheid van 20 x 106 / ml is 100 μL van de celsuspensie (2 x 106 endotheelcellen) voldoende om 5 apparaten te zaaien.</li>
	<li>Monteer een spuit van 1 ml in de programmeerbare spuitpomp en bevestig de slang aan de stompe naald.</li>
	<li>Trek ~ 20 μL van de celsuspensie in de slang en zorg ervoor dat de celsuspensie zich alleen in de slang bevindt, niet in de spuitcilinder.</li>
	<li>Haal de klem van een uitlaatpoort van het apparaat. Sluit de slang aan op één inlaat van het apparaat. Zorg ervoor dat er geen luchtbellen in het kanaal worden ingebracht.</li>
	<li>Start de pomp met een debiet van 4-8 μL/min. Observeer het apparaat onder een microscoop.</li>
	<li>Wanneer de kanalen zijn gevuld met cellen, stopt u de pomp, klemt u de uitlaat vast en snijdt u de inlaatbuis door. OPMERKING: Zorg ervoor dat u geen luchtbellen in het apparaat introduceert.</li>
	<li>Zet het apparaat gedurende 4 uur in de couveuse bij 5% CO2 en 37 °C.</li>
	<li>Bereid na 4 uur incubatie nog een spuit gevuld met verse celkweekmedia. Monteer de spuit op een spuitpomp, sluit de spuit aan op de inlaatpoort en verwijder de klem uit een uitlaatpoort.</li>
	<li>Laat nieuwe media ongeveer 5 minuten door het apparaat lopen bij 4-8 μL /min om zwevende / niet-vastgemaakte cellen uit te spoelen.</li>
</ol>3. Celcultuur onder stroom gedurende 48 uur
<ol><li>Bereid een spuit gevuld met verse celkweekmedia. Monteer de spuit in een spuitpomp, sluit de spuit aan op één inlaatpoort en houd een uitlaat open. Plaats het apparaat in de incubator (5% CO2, 37 °C).</li>
	<li>Programmeer de spuitpomp voor het kweken van endotheelcellen onder stroom aan de hand van de volgende instructies in tabel 1.</li>
	<li>Controleer bMFA onder een microscoop na 48 uur cultuur onder stroom. HLMVEC moet vasculaire kanalen bedekken die een volledig lumen vormen (figuur 6). OPMERKING: Andere stroomregimes kunnen nodig zijn voor verschillende celtypen.</li>
</ol>4. Cytokine en/of therapeutische behandeling
OPMERKING: Als voorbeeld beschrijft deze sectie het gebruik van bMFA om de impact te bestuderen van de behandeling van de cellen met Tumor Necrosis Factor-alpha (TNF-α) en een nieuwe ontstekingsremmer (Protein Kinase C delta-TAT peptide inhibitor, PKCδ-i)18,27,32,33,34,35,36.
<ol><li>Bereid drie verschillende bMFA-apparaten voor met behulp van het bovenstaande protocol (sectie 1-3).</li>
	<li>Laad drie spuiten van 1 ml met celkweekmedia (TNF-α) (10 ng/ml), TNF-α (10 ng/ml) + PKCδ-i (5 μM). OPMERKING: Cytokines worden gereconstitueerd in celkweekmedia.</li>
	<li>Sluit de drie spuiten aan op drie bMFA-apparaten. Behandel HLMVEC met buffer TNF-α of TNF-α + remmer gedurende 4 uur bij 0,1 μL/min. OPMERKING: Op basis van specifieke onderzoeksvereisten kunnen andere cytokines of cytokinecocktails (bijv. TNF-α + Interleukine 1 bèta (IL1-β) + Interferon-gamma (IFN-γ)) worden gebruikt om endotheelcellen te behandelen.</li>
</ol>5. Menselijke neutrofiele isolatie
<ol><li>Gebruik alle reagentia bij kamertemperatuur (RT). Reagentia omvatten leukocytenisolatiemedia, 1x HEPES-buffer met Ca2+/Mg2+ (tabel 2), 6% Dextran in normaal zoutoplossing (0,9% NaCl), 3,6% NaCl-oplossing en gedeïoniseerd water (DI) water.</li>
	<li>Pipetteer 20 ml leukocytenisolatiemedia in een conische buis van 50 ml en leg voorzichtig 25 ml bloed over de leukocytenisolatiemedia. Centrifugeer gedurende 40 minuten bij 427 x g bij RT. OPMERKING: Voer deze stap langzaam en voorzichtig uit om te voorkomen dat de bloed- en leukocytenisolatiemedia worden gemengd.</li>
	<li>Aspirateer tot ~ 5 ml boven de rode bloedcellen (RBC) laag. De witte buffy laag bovenop de RBC bestaat voornamelijk uit neutrofielen.</li>
	<li>Voeg hepes-buffer toe om het huidige volume te verdubbelen (bestaand volume: HEPES-buffer = 1:1).</li>
	<li>Voeg een bedrag van 6% Dextran toe, wat 20% van het uiteindelijke volume zal zijn. (huidig volume/4 = volume van toegevoegd 6% Dextran).</li>
	<li>Keer de buis een paar keer voorzichtig om om goed te mengen en laat het RBC-sediment (~ 25 min).</li>
	<li>Pipetteer voorzichtig de bovenste laag (neutrofielrijke laag) en breng over naar een nieuwe buis van 50 ml, pas op dat u niet verontreinigt met gesedimenteerde RBC.</li>
	<li>Centrifugeer gedurende 10 minuten bij 315 x g bij RT. Verwijder het supernatant en vul de pellet opnieuw op in 8 ml HEPES-buffer.</li>
	<li>Om de resterende RBC te lyseren, voegt u 24 ml DI-water toe en mengt u voorzichtig gedurende 50 s. Voeg onmiddellijk 8 ml 3,6% NaCl-oplossing toe, meng en centrifugeer gedurende 10 minuten bij 315 x g bij RT.</li>
	<li>Verwijder het supernatant, was de celkorrel met 15 ml HEPES-buffer en centrifugeer gedurende 5 minuten bij 315 x g. Resuspend de pellet in HEPES-buffer.</li>
</ol>6. Neutrofielenadhesie en migratie-experiment met bMFA
<ol><li>Resuspensie van de geïsoleerde menselijke neutrofielen (15 miljoen) in 999 μL HEPES-buffer.</li>
	<li>Voeg 1 μL CFDA-SE (carboxyfluoresceïnediacetaat succinimidylester) kleurstofvoorraadoplossing (10 mM) toe aan neutrofielensuspensie om een werkconcentratie van 10 μM CFDA-SE te verkrijgen en incubeer gedurende 10 minuten bij RT. Was de cellen tweemaal met HEPES-buffer door 5 minuten te centrifugeren bij 315 x g.</li>
	<li>Tel de neutrofielen met behulp van een hemocytometer en resuspend bij 2 miljoen neutrofielen / ml met celkweekmedia, TNF-α (10 ng / ml) en TNF-α (10 ng / ml) + PKCδ-i (5 μM), respectievelijk; incubeer gedurende 15 minuten bij RT voor aanvang van het experiment.</li>
	<li>Bereid een spuit gevuld met 1 μM N-formyl-met-leu-phe (fMLP), het chemoattractant voor het onderzoek, in celkweekmedia. Neem bMFA en open één inlaatpoort en één uitlaatpoort. OPMERKING: Deze experimentele voorwaarden worden gebruikt om de omstandigheden van sepsis na te bootsen die een systemische ontstekingsreactie met hoge niveaus van circulerende cytokine / chemokines omvatten. Bovendien wordt fMLP, een gramnegatief van bacteriën afgeleid peptide, gebruikt om de aanwezigheid van bacteriën in de longen (d.w.z. weefselcompartiment) te modelleren.</li>
	<li>Verwijder de poortslang van het tissuecompartiment en plaats de fMLP-slang. Injecteer ~20 μL fMLP in het weefselcompartiment voor alle bMFA, behalve degene die alleen met celkweekmedia wordt behandeld. Knip vervolgens de slang af en klem deze vast.</li>
	<li>Vul de spuit met ~200 μL neutrofiele suspensie en monteer de spuit op de spuitpomp.</li>
	<li>Plaats het apparaat op de omgekeerde microscooptrap (Materiaaltabel).</li>
	<li>Start de pomp met een debiet van 1 μL/min en wacht tot er een kleine druppel neutrofiele suspensie uit de slang komt. Steek de slang in de inlaatpoort. Zie figuur 7 voor de installatie.</li>
</ol>7. Verkrijg afbeeldingen
<ol><li>Gebruik de functie Grote afbeelding scannen in de microscoopbeeldanalysesoftware (Tabel met materialen) om de adhesiekaart in bMFA (figuur 8) 10 minuten na het starten van het experiment te verkrijgen. De meeste neutrofielen komen tijdens de eerste 10 minuten in bMFA. OPMERKING: Houd het fluorescentielicht uit wanneer u geen foto's maakt om het fotograferen te verminderen.</li>
	<li>Maak het volgende uur timelapse-beelden (1 afbeelding om de 5 minuten) van het weefselcompartiment (figuur 8B, C) voor migratieanalyse om de migratiekaart te verkrijgen.</li>
</ol>8. Digitale beeldanalyse
<ol><li>Tel voor de adhesiekaart het aantal aangehechte neutrofielen in elk vat. Maak voor elke bifurcatie een cirkelvormig interessegebied (ROI) met een diameter gelijk aan twee keer de diameter van het vat en tel het aantal aangehechte neutrofielen.</li>
	<li>Gebruik handmatig tellen of de geautomatiseerde objecttellingfunctie om het aantal aanhangende neutrofielen in elk vat en bifurcatiegebied te kwantificeren.</li>
	<li>Gebruik de afschuifsnelheidskaart van het netwerk die is gegenereerd met CFD-simulatie17 om de afschuifsnelheid in elk schip te bepalen. Zet vervolgens het aantal aangehechte neutrofielen in een bepaald vat uit tegen de afschuifsnelheid in dat vat om een afschuifsnelheidskaart in bMFA te maken zoals weergegeven in figuur 9A.</li>
	<li>Neutrofielen worden als gemigreerd geteld als ze door het endotheel in het weefselcompartiment zijn gekruist. Tel het aantal gemigreerde neutrofielen op 10 min, 15 min, 30 min en 60 min. Plot het aantal gemigreerde neutrofielen versus tijd zoals weergegeven in figuur 9B.</li>
</ol>

<ol><li>Kolaczkowska, E., Kubes, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophil+recruitment+and+function+in+health+and+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Immunology%22%5BJournal%5D)">Neutrophil recruitment and function in health and inflammation.</a> Nature Reviews Immunology. 13 (3), 159-175 (2013).</li>
<li>Yang, Q., Wijerathne, H., Langston, J. C., Kiani, M. F., Kilpatrick, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Emerging+approaches+to+understanding+microvascular+endothelial+heterogeneity%3A+A+roadmap+for+developing+anti-inflammatory+therapeutics%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Molecular+Sciences%22%5BJournal%5D)">Emerging approaches to understanding microvascular endothelial heterogeneity: A roadmap for developing anti-inflammatory therapeutics.</a> International Journal of Molecular Sciences. 22 (15), 7770(2021).</li>
<li>Joffre, J., Hellman, J., Ince, C., Ait-Oufella, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+responses+in+sepsis%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Respiratory+and+Critical+Care+Medicine%22%5BJournal%5D)">Endothelial responses in sepsis.</a> American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 202, 361-370 (2020).</li>
<li>Ince, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+endothelium+in+sepsis%5BTitle%5D)+AND+%22Shock%22%5BJournal%5D)">The endothelium in sepsis.</a> Shock. 45, Augusta, Ga. 259-270 (2016).</li>
<li>Ruparelia, N., Chai, J. T., Fisher, E. A., Choudhury, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inflammatory+processes+in+cardiovascular+disease%3A+a+route+to+targeted+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Cardiology%22%5BJournal%5D)">Inflammatory processes in cardiovascular disease: a route to targeted therapies.</a> Nature Reviews Cardiology. 14 (3), 133-144 (2017).</li>
<li>Kilpatrick, L. E., Kiani, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+approaches+to+evaluate+leukocyte-endothelial+cell+interactions+in+sepsis+and+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Shock%22%5BJournal%5D)">Experimental approaches to evaluate leukocyte-endothelial cell interactions in sepsis and inflammation.</a> Shock. 53, Augusta, Ga. 585-595 (2020).</li>
<li>Langer, H. F., Chavakis, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Leukocyte-endothelial+interactions+in+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cellular+and+Molecular+Medicine%22%5BJournal%5D)">Leukocyte-endothelial interactions in inflammation.</a> Journal of Cellular and Molecular Medicine. 13 (7), 1211-1220 (2009).</li>
<li>Sadik, C. D., Luster, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lipid-cytokine-chemokine+cascades+orchestrate+leukocyte+recruitment+in+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Leukocyte+Biology%22%5BJournal%5D)">Lipid-cytokine-chemokine cascades orchestrate leukocyte recruitment in inflammation.</a> Journal of Leukocyte Biology. 91 (2), 207-215 (2012).</li>
<li>Phillipson, M., Kubes, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+neutrophil+in+vascular+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">The neutrophil in vascular inflammation.</a> Nature Medicine. 17, 1381-1390 (2011).</li>
<li>Maniatis, N. A., Orfanos, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+endothelium+in+acute+lung+injury%2Facute+respiratory+distress+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Critical+Care%22%5BJournal%5D)">The endothelium in acute lung injury/acute respiratory distress syndrome.</a> Current Opinion in Critical Care. 14, 22-30 (2008).</li>
<li>Ley, K., Laudanna, C., Cybulsky, M. I., Nourshargh, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Getting+to+the+site+of+inflammation%3A+the+leukocyte+adhesion+cascade+updated%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Immunology%22%5BJournal%5D)">Getting to the site of inflammation: the leukocyte adhesion cascade updated.</a> Nature Reviews Immunology. 7, 678-689 (2007).</li>
<li>Molteni, R., Fabbri, M., Bender, J. R., Pardi, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathophysiology+of+leukocyte-tissue+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Pathophysiology of leukocyte-tissue interactions.</a> Current Opinion in Cell Biology. 18, 491-498 (2006).</li>
<li>Chistiakov, D. A., Orekhov, A. N., Bobryshev, Y. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+shear+stress+on+endothelial+cells%3A+go+with+the+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiologica%22%5BJournal%5D)">Effects of shear stress on endothelial cells: go with the flow.</a> Acta Physiologica. 219 (2), 382-408 (2017).</li>
<li>Prabhakarpandian, B., Shen, M. -C., Pant, K., Kiani, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+devices+for+modeling+cell-cell+and+particle-cell+interactions+in+the+microvasculature%5BTitle%5D)+AND+%22Microvascular+Research%22%5BJournal%5D)">Microfluidic devices for modeling cell-cell and particle-cell interactions in the microvasculature.</a> Microvascular Research. 82, 210-220 (2011).</li>
<li>Zou, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PSGL-1+derived+from+human+neutrophils+is+a+high-efficiency+ligand+for+endothelium-expressed+E-selectin+under+flow%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology-Cell+Physiology%22%5BJournal%5D)">PSGL-1 derived from human neutrophils is a high-efficiency ligand for endothelium-expressed E-selectin under flow.</a> American Journal of Physiology-Cell Physiology. 289, 415-424 (2005).</li>
<li>Lamberti, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioinspired+microfluidic+assay+for+in+vitro+modeling+of+leukocyte-endothelium+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry+%28Journal%29%22%5BJournal%5D)">Bioinspired microfluidic assay for in vitro modeling of leukocyte-endothelium interactions.</a> Analytical Chemistry (Journal). 86, 8344-8351 (2014).</li>
<li>Prabhakarpandian, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthetic+microvascular+networks+for+quantitative+analysis+of+particle+adhesion%5BTitle%5D)+AND+%22Biomedical+Microdevices%22%5BJournal%5D)">Synthetic microvascular networks for quantitative analysis of particle adhesion.</a> Biomedical Microdevices. 10 (4), 585-595 (2008).</li>
<li>Soroush, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+microfluidic+assay+reveals+a+key+role+for+protein+kinase+C+delta+in+regulating+human+neutrophil-endothelium+interaction%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Leukocyte+Biology%22%5BJournal%5D)">A novel microfluidic assay reveals a key role for protein kinase C delta in regulating human neutrophil-endothelium interaction.</a> Journal of Leukocyte Biology. 100, 1027-1035 (2016).</li>
<li>Roth, N. M., Kiani, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+%26%2334%3Bgeographic+information+systems%26%2334%3B+based+technique+for+the+study+of+microvascular+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">A &#34;geographic information systems&#34; based technique for the study of microvascular networks.</a> Annals of Biomedical Engineering. 27, 42-47 (1999).</li>
<li>Prabhakarpandian, B., Wang, Y. I., Rea-Ramsey, A., Sundaram, S., Kiani, M. F., Pant, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bifurcations%3A+Focal+points+of+particle+adhesion+in+microvascular+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Microcirculation%22%5BJournal%5D)">Bifurcations: Focal points of particle adhesion in microvascular networks.</a> Microcirculation. 18, 380-389 (2011).</li>
<li>Rosano, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+physiologically+realistic+in+vitro+model+of+microvascular+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Biomedical+Microdevices%22%5BJournal%5D)">A physiologically realistic in vitro model of microvascular networks.</a> Biomedical Microdevices. 11, 1051-1057 (2009).</li>
<li>Tousi, N., Wang, B., Pant, K., Kiani, M. F., Prabhakarpandian, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preferential+adhesion+of+leukocytes+near+bifurcations+is+endothelium+independent%5BTitle%5D)+AND+%22Microvascular+Research%22%5BJournal%5D)">Preferential adhesion of leukocytes near bifurcations is endothelium independent.</a> Microvascular Research. 80, 384-388 (2010).</li>
<li>Yona, S., Hayhoe, R., Avraham-Davidi, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monocyte+and+neutrophil+isolation+and+migration+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Immunology%22%5BJournal%5D)">Monocyte and neutrophil isolation and migration assays.</a> Current Protocols in Immunology. 88 (1), 11-14 (2010).</li>
<li>Entschladen, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+methods+of+human+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Cell+Research%22%5BJournal%5D)">Analysis methods of human cell migration.</a> Experimental Cell Research. 307 (2), 418-426 (2005).</li>
<li>Chen, H. -C. Boyden chamber assay. Methods in Molecular Biology. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aChen%2C+H-C+%22Cell+Migration%3A+Developmental+Methods+and+Protocols%22">Cell Migration: Developmental Methods and Protocols</a>. , Humana Press Inc. Totowa, NJ. (2005).</li>
<li>Deosarkar, S. P., Prabhakarpandian, B., Wang, B., Sheffield, J. B., Krynska, B., Kiani, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+dynamic+neonatal+blood-brain+barrier+on+a+chip%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">A novel dynamic neonatal blood-brain barrier on a chip.</a> PloS one. 10, 142725(2015).</li>
<li>Soroush, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophil-endothelial+interactions+of+murine+cells+is+not+a+good+predictor+of+their+interactions+in+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22The+FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">Neutrophil-endothelial interactions of murine cells is not a good predictor of their interactions in human cells.</a> The FASEB Journal. 34, 2691-2702 (2020).</li>
<li>Soroush, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+Kinase+C-Delta+%28PKC%CE%B4%29+tyrosine+phosphorylation+is+a+critical+regulator+of+neutrophil-endothelial+cell+interaction+in+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Shock%22%5BJournal%5D)">Protein Kinase C-Delta (PKCδ) tyrosine phosphorylation is a critical regulator of neutrophil-endothelial cell interaction in inflammation.</a> Shock. 51 (5), 538-547 (2019).</li>
<li>Soroush, F., Tang, Y., Zaidi, H. M., Sheffield, J. B., Kilpatrick, L. E., Kiani, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PKC%CE%B4+inhibition+as+a+novel+medical+countermeasure+for+radiation-induced+vascular+damage%5BTitle%5D)+AND+%22The+FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">PKCδ inhibition as a novel medical countermeasure for radiation-induced vascular damage.</a> The FASEB Journal. 32, 6436-6444 (2018).</li>
<li>Pradhan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+microvascularized+tumor-mimetic+platform+for+assessing+anti-cancer+drug+efficacy%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">A microvascularized tumor-mimetic platform for assessing anti-cancer drug efficacy.</a> Scientific Reports. 8 (1), 3171(2018).</li>
<li>Tang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+biomimetic+microfluidic+tumor+microenvironment+platform+mimicking+the+EPR+effect+for+rapid+screening+of+drug+delivery+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">A biomimetic microfluidic tumor microenvironment platform mimicking the EPR effect for rapid screening of drug delivery systems.</a> Scientific Reports. 7 (1), 1-14 (2017).</li>
<li>Tang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+kinase+C-delta+inhibition+protects+blood-brain+barrier+from+sepsis-induced+vascular+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroinflammation%22%5BJournal%5D)">Protein kinase C-delta inhibition protects blood-brain barrier from sepsis-induced vascular damage.</a> Journal of Neuroinflammation. 15, 309(2018).</li>
<li>Mondrinos, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulmonary+endothelial+protein+kinase+C-delta+%28PKCd%29+regulates+neutrophil+migration+in+acute+lung+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Journal+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">Pulmonary endothelial protein kinase C-delta (PKCd) regulates neutrophil migration in acute lung inflammation.</a> The American Journal of Pathology. 184, 200-213 (2014).</li>
<li>Kilpatrick, L. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protection+against+sepsis-induced+lung+injury+by+selective+inhibition+of+protein+kinase+C-d+%28d-PKC%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Leukocyte+Biology%22%5BJournal%5D)">Protection against sepsis-induced lung injury by selective inhibition of protein kinase C-d (d-PKC).</a> Journal of Leukocyte Biology. 89, 3-10 (2011).</li>
<li>Mondrinos, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biodistribution+and+efficacy+of+targeted+pulmonary+delivery+of+a+protein+kinase+C-d+inhibitory+peptide%3A+Impact+on+Indirect+lung+Injury%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacology+and+Experimental+Therapeutics%22%5BJournal%5D)">Biodistribution and efficacy of targeted pulmonary delivery of a protein kinase C-d inhibitory peptide: Impact on Indirect lung Injury.</a> Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 355, 86-98 (2015).</li>
<li>Liverani, E., Mondrinos, M. J., Sun, S., Kunapuli, S. P., Kilpatrick, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+protein+kinase+C-delta+in+regulating+platelet+activation+and+platelet-leukocyte+interaction+during+sepsis%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Role of protein kinase C-delta in regulating platelet activation and platelet-leukocyte interaction during sepsis.</a> PloS one. 13, 0195379(2018).</li>
<li>Smith, A. M., Prabhakarpandian, B., Pant, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+shear+adhesion+map+using+SynVivo+synthetic+microvascular+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Generation of shear adhesion map using SynVivo synthetic microvascular networks.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (87), e51025(2014).</li>
</ol>

De auteurs verklaren geen belangenverstrengeling te hebben.

De bMFA reproduceert de topografie en stromingscondities van de in vivo microvasculaire netwerken en kan worden gebruikt om leukocyten-endotheelcelinteractie en endotheelfunctie in vitro te bestuderen onder fysiologisch realistische omstandigheden. In de microvasculatuur van muis of mens is de geometrie van de microvasculaire netwerken zelfgelijkaardig en fractaal, en het Reynolds-getal << 1, wat aangeeft dat vasculaire geometrie geen significante invloed heeft op stromingspatronen. Daarom kan de bFMA w...

Ontsteking is de reactie van de gastheer op infectie en letsel, en het endotheel speelt een belangrijke rol in de ontstekingsreactie 1,2,3. Inflammatoire ontregeling is de onderliggende oorzaak van een aantal ziektepathologieën zoals sepsis, hart- en vaatziekten, astma, inflammatoire darmaandoeningen, kanker en COVID-19. Leukocyten-endotheelcelinteracties spelen een centrale rol bij deze ontstekingsziekten. Tijdens ontsteking activeert de afgifte van PAMPS (pathogen-associated molecular patterns) uit pathogenen of DAMPS (damage-associated molecular patterns) uit gewonde weefsels immuuncellen om cytokines/chemokines en andere pro-inflammatoire mediatoren vrij te maken die leiden tot de activering van endotheel, resulterend in veranderingen in de vasculaire endotheelbarrièrefunctie en verhoogde permeabiliteit 3,4 . Verhoogde activering van endotheelcellen tijdens ontsteking resulteert in verbeterde interactie tussen leukocyten en endotheelcellen, wat leidt tot overmatige migratie van geactiveerde leukocyten over het vasculaire endotheel naar sleutelorganen 1,5,6,7.
De rekrutering van leukocyten wordt geïnitieerd door chemisch diverse chemoattractanten bestaande uit bioactieve lipiden, cytokines, chemokines en complementcomponenten 8,9. Leukocytenrekrutering is een proces in meerdere stappen dat vijf afzonderlijke stappen omvat: 1) leukocytenmargeatie en vangst/ hechting, 2) rollen, 3) stevige arrestatie, 4) spreiden en kruipen en 5) extravasatie / migratie (figuur 1). Elke stap van dit proces vereist overspraak tussen leukocyten en endotheelcellen om dit dynamische fenomeen te orkestreren 1,9. Uiteindelijk extravaseren gestileerde leukocyten naar ontstoken weefsels over endotheel via een meerstapsproces dat wordt gecontroleerd door gelijktijdige chemoattractant-afhankelijke signalen, kleefgebeurtenissen en hemodynamische schuifkrachten 1,9,10,11,12.
Gezien de centrale rol van schuifstress bij het reguleren van de endotheelcelfunctie en de betekenis van de leukocyten-endotheelcelinteracties13, zijn er de afgelopen decennia verschillende in vitro modellen ontwikkeld om verschillende aspecten van de leukocytenmigratiecascade in een meer gecontroleerde omgeving te bestuderen14. Traditionele fluidische apparaten om leukocyten-endotheelcelinteracties te bestuderen, kunnen worden ingedeeld in twee brede categorieën14: a) apparaten voor het bestuderen van leukocytenrollen, adhesie en adhesiemolecuulexpressie zoals parallelle plaatstroomkamers en b) apparaten voor het bestuderen van leukocytenmigratie onder statische omstandigheden zoals transwellkamers. Systemen zoals parallelle plaatstroomkamers zijn gebruikt om de rol van adhesiemoleculen en hun liganden in de adhesiecascade onder schuifkrachten15 te bestuderen. Een belangrijk nadeel is echter dat deze simplistische, geïdealiseerde apparaten (bijv. Recht kanaal) niet in staat zijn om de schaal en geometrie van de in vivo microvasculatuur (bijv. Opeenvolgende vasculaire bifurcaties, vasculaire morfologie) en de resulterende stroomomstandigheden (bijv. Convergerende of divergerende stromen bij bifurcaties) te reproduceren. Als gevolg hiervan kunnen deze apparaten alleen adhesie modelleren, maar geen transmigratie. Transwellkamers kunnen transmigratie alleen onder statische omstandigheden bestuderen zonder rekening te houden met de in vivo geometrische kenmerken en stromingsomstandigheden. Deze traditionele modellen bootsen dus niet de micro-omgeving van levende weefsels na of lossen adhesie- en migratiecascade op in een enkele test6.
Om deze beperking aan te pakken, hebben we een nieuwe 3D-biomimetische microfluïdische assay (bMFA) ontwikkeld en uitgebreid gevalideerd (figuur 2), die realistisch in vivo microvasculaire netwerken reproduceert op een chip 16,17,18. Het protocol voor microfabricage van dit apparaat is eerdergepubliceerd 17 en wordt hier slechts kort beschreven. De microvasculatuur van muis cremaster spier werd gedigitaliseerd met behulp van een gemodificeerd Geografisch Informatie Systeem (GIS) benadering19. Vervolgens werd het synthetische microvasculaire netwerk gegenereerd op polydimethylsiloxaan (PDMS) met behulp van softlithografieprocessen op basis van het gedigitaliseerde microvasculaire netwerk 14,17,20,21,22. Kortom, de gedigitaliseerde netwerkbeelden werden afgedrukt op Mylar-film, die vervolgens werd gebruikt als een masker om een SU-8 positieve fotoresist bovenop een siliciumwafer te patroon om de meesters voor fabricage te maken. Microfabricated pilaren (10 μm diameter, 3 μm hoog) werden gebruikt om de 3 μm hoge en 100 μm brede poriën te creëren, een optimale grootte voor leukocytenmigratie 23,24,25, die de vasculaire kanalen en weefselcompartimenten met elkaar verbinden. PDMS werd bereid volgens de instructies van de fabrikant en over de ontwikkelde meesters gegoten. Verder werd het PDMS ontgast en een nacht in een oven (65 °C) uitharden om complementaire microkanalen in PDMS te creëren. Vervolgens werd het uitgeharde PDMS van de SU-8 master geschild, gevolgd door ponspoorten voor inlaten/uitgangen. Vervolgens werd de PMDS plasma gebonden aan een glasplaat. Het oppervlak van het microfluïdische apparaat bestaat uit native glas en PDMS. Om celaanhechting, verspreiding en proliferatie te bevorderen, is extracelluar matrix (ECM) coating vereist. De bMFA omvat een microvasculair netwerk en een weefselcompartiment verbonden via 3 μm hoge en 100 μm brede poriën (figuur 2). Dit microfluïdische systeem reproduceert de volledige leukocytenadhesie/migratiecascade in een fysiologisch relevante 3D-omgeving van een compleet microvasculair netwerk met onderling verbonden vaten en bifurcaties, inclusief circulatie, marginatie, rollen, adhesie en migratie van leukocyten naar het extra vasculaire weefselcompartiment in een enkel systeem 14,16,17,21,26.
Opgemerkt moet worden dat zelfs wanneer het debiet bij de inlaat van bMFA vaststaat, de stroomomstandigheden in het netwerk op verschillende locaties variëren en niet kunnen worden berekend met een eenvoudige wiskundige formule. Een op COMPUTATIONAL FLUID DYNAMICS (CFD) gebaseerd model werd ontwikkeld om verschillende stroomparameters (bijv. Schuifspanning, afschuifsnelheid, snelheid) op verschillende locaties in het netwerk te berekenen. Dit CFD-model werd gebruikt om de kleurstofperfusiepatronen en stromingsparameters in de bMFA te simuleren. Kruisvalidatie met experimentele resultaten suggereerde dat de stroomweerstanden over het netwerk goed worden voorspeld door het computationele model (figuur 3)17. Dit CFD-model werd vervolgens gebruikt om de snelheid en het afschuifsnelheidsprofiel in elk vat van bMFA te schatten (figuur 4), waardoor de effecten van afschuifstroom en geometrie op leukocytenrollen, adhesie en migratiekonden worden geanalyseerd 16. Leukocyten hechten zich bij voorkeur in de buurt van bifurcaties en in lage schuifgebieden in vivo, en deze ruimtelijke patronen van leukocytenadhesie werden met succes aangetoond in bMFA met behulp van neutrofielen (figuur 5)16. Dit artikel beschrijft het protocol voor het voorbereiden van bMFA om leukocyten-endotheelcelinteractie onder inflammatoire omstandigheden te bestuderen met behulp van menselijke longmicrovasculaire endotheelcellen (HLMVEC) en menselijke neutrofielen. Microfysiologische systemen, zoals de bMFA, kunnen worden gebruikt om endotheelcelinteracties te bestuderen met verschillende soorten cellen zoals neutrofielen, monocyten, lymfocyten en tumorcellen 18,27,28,29,30. De bMFA kan worden bezaaid met primaire endotheelcellen uit verschillende organen (bijv. Long versus hersenen) en verschillende soorten (bijv. Menselijke versus muriene endotheelcellen), evenals endotheelcellijnen 21,27,31,32. De bMFA kan worden gebruikt om meerdere cellulaire responsen, cel-cel interacties, barrièrefunctie, medicijnafgifte en geneesmiddeltoxiciteit te bestuderen.

<table><tbody><tr><td>1 mL spuit</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-823-30</td><td></td></tr><tr><td>Biomimetische microfluïdische test (bMFA)</td><td>SynVivo</td><td>SMN1-C001</td><td>Exclusief bij SynVivo</td></tr><tr><td>Blunt naald</td><td>Jensen Global</td><td>JG24-0.5</td><td></td></tr><tr><td>Calcium Chloride</td><td>Fisher Scientific</td><td>C70-500</td><td></td></tr><tr><td>CFDA, SE</td><td>ThermoFisher</td><td>C1157</td><td></td></tr><tr><td>Dextraan, 250.000, Poeder</td><td>Spectrum Chemical Mfg. Corp</td><td>DE-130</td><td></td></tr><tr><td>Ficoll-Paque Premium</td><td>GE Health Care</td><td>17-5442-02</td><td>Leukecyte-isolatiemedium</td></tr><tr><td>fMLP</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F3506</td><td></td></tr><tr><td>Hepes</td><td>Fisher Scientific</td><td>AAJ1692630</td><td></td></tr><tr><td>Human fibronectine</td><td>Fisher Scientific</td><td>33-016-015</td><td>Gebruik door leverancier aanbevolen ECM voor verschillende cellijnen</td></tr><tr><td>Microvasculair Endotheelcel Groeimedium-2 BulletKit</td><td>Lonza</td><td>cc-3202</td><td>Menselijk longmicrovasculair endotheelcel-kweekmedium (HLMVEC).</td></tr><tr><td>Menselijke longmicrovasculaire endotheelcellen</td><td>Lonza</td><td>cc-2527</td><td>Gebruik door leverancier aanbevolen trypsin-EDTA en TNS</td></tr><tr><td>Magnesium Chloride</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP214-500</td><td></td></tr><tr><td>Nikon Eclipse Ti2</td><td>Nikon Instruments Inc.</td><td></td><td>Microscoop</td></tr><tr><td>NIS-elements, 5.20.01</td><td>Nikon Instruments Inc.</td><td></td><td>Beeldvormingssoftware</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Fisher Scientific</td><td>MT21040CV</td><td></td></tr><tr><td>PhD Ultra Spuitpomp</td><td>Harvard Apparatus</td><td>70-3007</td><td>Spuitpomp</td></tr><tr><td>Kaliumhydroxide</td><td>Fisher Scientific</td><td>02-003-763</td><td></td></tr><tr><td>Recombinant Human TNF-alpha</td><td>R&amp;D Systems</td><td>210-TA</td><td></td></tr><tr><td>Schuifklem</td><td>SynVivo</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Natrium Chloride</td><td>Fisher Scientific</td><td>S640-500</td><td></td></tr><tr><td>Synvivo Pneumatische Primer</td><td>SynVivo</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA, Trypsine Neutralisatieoplossing(TNS)</td><td>Lonza</td><td>cc-5034</td><td></td></tr><tr><td>Tygon slang</td><td>Fisher Scientific</td><td>50-206-8921</td><td>Slang</td></tr></tbody></table>

een microfysiologisch systeem om leukocyten-endotheelcelinteractie tijdens ontsteking te bestuderen

A Microphysiological System to Study Leukocyte-Endothelial Cell Interaction during Inflammation

Leukocyten-endotheelcelinteracties spelen een belangrijke rol bij ontstekingsziekten zoals sepsis. Tijdens ontsteking kan overmatige migratie van geactiveerde leukocyten over het vasculaire endotheel naar belangrijke organen leiden tot orgaanfalen. Een fysiologisch relevante biomimetische microfluïdische assay (bMFA) is ontwikkeld en gevalideerd met behulp van verschillende experimentele en computationele technieken, die de volledige leukocyten rollende / adhesie / migratiecascade kunnen reproduceren om leukocyten-endotheelcelinteracties te bestuderen. Microvasculaire netwerken verkregen uit in vivo beelden bij knaagdieren werden gedigitaliseerd met behulp van een Geografisch Informatie Systeem (GIS) benadering en gemicrofabriceerd met polydimethylsiloxaan (PDMS) op een microscoopglaasje. Om het effect van afschuifsnelheid en vasculaire topologie op leukocyten-endotheelcelinteracties te bestuderen, werd een Computational Fluid Dynamics (CFD) -model ontwikkeld om een overeenkomstige kaart van afschuifsnelheden en -snelheden in het hele netwerk te genereren. De bMFA maakt de kwantificering van leukocyten-endotheelcelinteracties mogelijk, waaronder rolsnelheid, aantal geconh adhered leukocyten in reactie op verschillende afschuifsnelheden, aantal gemigreerde leukocyten, endotheelceldoorlaatbaarheid, adhesiemolecuulexpressie en andere belangrijke variabelen. Bovendien biedt bMFA, door gebruik te maken van mensgerelateerde monsters, zoals menselijke endotheelcellen en leukocyten, een hulpmiddel voor snelle screening van potentiële therapieën om hun klinische vertaalbaarheid te vergroten.

Na 48 uur cultuur onder schuifstroom in bMFA bedekten endotheelcellen het oppervlak van de vasculaire kanalen in bMFA en uitgelijnd in de stroomrichting (figuur 6). Confocale microscopie gaf aan dat alle oppervlakken van de vasculaire kanalen bedekt waren door endotheelcellen, die een volledig 3D-lumen vormden in bMFA18.
Met behulp van dit protocol kan een neutrofielenadhesiekaart worden verkregen, waaruit blijkt dat er een significante hec...

In dit protocol wordt een biomimetische microfluïde assay, die een fysiologisch relevante microvasculaire omgeving kan reproduceren en de gehele leukocytenadhesie / migratiecascade kan reproduceren, gebruikt om leukocyten-endotheelcelinteracties bij ontstekingsziekten te bestuderen.

Een microfysiologisch systeem om leukocyten-endotheelcelinteractie tijdens ontsteking te bestuderen

Leukocyte-endothelial cell interactions play an important role in inflammatory diseases such as sepsis. During inflammation, excessive migration of ...

Leukocyten-endotheelcelinteracties spelen een belangrijke rol bij ontstekingsziekten zoals sepsis. Ontstekingsontregeling veroorzaakt vaak een veranderde vasculaire endotheelbarrièrefunctie en overmatige leukocytenhandel, wat kan leiden tot orgaanschade. De biomimetische microfluïdische assay, wat we bMFA noemen, reproduceert topografie en stromingsomstandigheden van in-vivo microvasculaire netwerken en maakt realtime beoordeling mogelijk van rollende, stevige adhesie, verspreiding en migratie van neutrofielen in het weefselcompartiment.Een kracht van de biomimetische microfluïdische test is het vermogen om primaire menselijke cellen en klinisch relevante patiëntmonsters te gebruiken om de klinische vertaling te verhogen en potentiële therapieën snel te screenen. De procedures worden gedemonstreerd door Mr.Qingliang Yang, een afgestudeerde onderzoeksassistent van mijn laboratorium. Begin met het inbrengen van de buis van ongeveer een centimeter lengte in de poorten met behulp van een fijne tang, op één inlaatpoort na.Klem met behulp van kaakklemmen de twee uitlaatpoorten en het weefselcompartiment samen. Verdun de fibronectine-stamoplossing tot 100 microgram per milliliter met PBS. Laad een spuit van één milliliter die is aangesloten op een stompe naald van 24 gauge met de verdunde fibronectine-oplossing en sluit de spuit aan op een vier centimeter lange slang.Steek de slang in de open inlaatpoort, duw vervolgens op de zuiger totdat humaan fibronectine vrijkomt uit een andere inlaatpoort en klem deze vast. Herhaal het proces voor de resterende poorten totdat alle kanalen, weefselcompartiment en slangen zijn gevuld met de menselijke fibronectine-oplossing. Verwijder de naald, maar houd de vier inch lange slang ingebracht en ongecensureerd.Om ontgassing uit te voeren, sluit u de niet-verlichte buis aan op de pneumatische primer die is aangesloten op een gecomprimeerde stikstoftank met een druk van vijf pond per vierkante inch gedurende 15 minuten. Controleer onder de microscoop of er geen luchtbellen in het kanaal of weefselcompartiment zijn opgesloten en sluit het apparaat opnieuw aan als de luchtbellen aanwezig zijn. Verwijder het apparaat uit de pneumatische primer en incubeer het gedurende een uur bij 37 graden Celsius.Met behulp van voorverwarmde humane longmicrovasculaire endotheelcelkweekmedia, spoel alle kanalen en het weefselcompartiment. Na het oogsten van de endotheelcellen zoals beschreven in het teksthandschrift, pelleteert u de cellen door centrifugeren gedurende vijf minuten op 150 keer G.In de programmeerbare spuitpomp, monteert u een spuit van één milliliter en bevestigt u de slang aan de stompe naald. Trek ongeveer 20 microliter van de celsuspensie in de slang zonder deze in de spuitcilinder te laten.Verwijder de klem uit de uitlaatpoort van het apparaat. Sluit de slang aan op de inlaatpoort zonder een luchtbel in het kanaal te brengen. Stop de pomp met een debiet van vier tot acht microliter per minuut en observeer onder de microscoop.Stop de pomp wanneer de kanalen gevuld zijn met cellen. Klem de uitlaat vast en knip de inlaatbuis. Plaats het apparaat vier uur in de couveuse bij 5% koolstofdioxide en 37 graden Celsius.Na vier uur incubatie, bereid een andere spuit en vul deze met verse celkweekmedia. Monteer de spuit in een spuitpomp en sluit deze aan op de inlaatpoort. Verwijder de klem uit de uitlaatpoort.Laat de verse media ongeveer vijf minuten met vier tot acht microliter per minuut door het apparaat lopen om de zwevende of niet-losgemaakte cellen te verwijderen. Bereid een spuit voor door deze te vullen met verse celkweekmedia. Monteer de spuit in een spuitpomp en sluit deze aan op één inlaatpoort terwijl de uitlaatpoort open blijft.Plaats het apparaat in een incubator bij 37 graden Celsius en 5% koolstofdioxide. Programmeer de spuitpomp voor het kweken van endotheelcellen onder stroom zoals beschreven in het tekstmanuscript. Controleer met behulp van een microscoop bMFA na 48 uur cultuur onder stroom.Confocale microscopie gaf aan dat alle oppervlakken van de vasculaire kanalen bedekt waren door endotheelcellen, die een volledig 3D-lumen vormden in bMFA. Na het bereiden van drie verschillende bMFA-apparaten, laadt u drie spuiten van één milliliter met celkweekmedia of TNF-alfa of TNF-alfa in combinatie met pkc-deltaremmer respectievelijk, waarbij TNF-alfa en inflammatoir cytokine wordt gebruikt om endotheelcellen en neutrofielen te stimuleren. PKC delta inhibitor is een nieuwe ontstekingsremmer.Sluit de drie geladen spuiten aan op drie bMFA-apparaten. Gebruik buffer TNF-alfa of TNF-alfa met toegevoegde remmer, behandel menselijke longmicrovasculaire endotheelcellen gedurende vier uur met 0,1 microliter per minuut. Na het isoleren van de menselijke neutrofielen zoals beschreven in het teksthandschrift, resuspendeert u de neutrofielen in 999 microliter HEPES-buffer en voegt u één microliter 10-millimolaire CFDA SE-kleurstofvoorraadoplossing toe aan de suspensie, wat resulteert in een 10-micromolaire werkoplossing van CFDA SE en incubeer deze gedurende 10 minuten bij kamertemperatuur.Was de cellen tweemaal met hepes-buffer door de oplossing gedurende vijf minuten te centrifugeren op 315 maal G.Na het tellen van de cellen, resuspend met 2 miljoen neutrofielen per milliliter in celkweekmedia of TNF-alfa of TNF-alfa toegevoegd met PKC deltaremmer en incubeer bij kamertemperatuur gedurende 15 minuten. Vul de spuit met één micromolair van een chemo-lokstof, fMLP, bereid in celkweekmedia. Open één inlaat en één uitlaatpoort van de bMFA.Verwijder de poortslang uit het weefselcompartiment en plaats de fMLP-slang. Injecteer ongeveer 20 microliter fMLP in het weefselcompartiment voor alle bMFA, waarbij degene die wordt behandeld met celkweekmedia. Knip de slang af en klem deze vast.Vul de spuit met ongeveer 200 microliter neutrofielensuspensie en monteer de spuit op de spuitpomp. Nadat u het apparaat op een omgekeerd microscooptrap hebt geplaatst, stelt u het debiet in op één microliter per minuut en start u de pomp. Wacht tot een kleine druppel van de neutrofielensuspensie uit de slang komt en steek de slang in de inlaatpoort.Fluorescerend gelabelde neutrofielen stromen in de vasculaire kanalen en interageren met endotheelcellen en de fysiologisch relevante stroomomstandigheden. Na 10 minuten na het starten van het experiment opent u de beeldanalysesoftware, schakelt u de objectieflens naar 10x en gebruikt u de podiumjoystick om het apparaat onder de microscoop te centreren. Als u de hechtingstoewijzing wilt ophalen, gaat u naar Verwerven en klikt u op Grote afbeelding scannen.Er verschijnt een nieuw venster. Kies 10x Objectief lens en stel de veldoptie in, bijvoorbeeld 5 bij 3. Klik op Scannen, klik op Bestand en sla de hechtingskaart op.Om de migratiekaart voor migratieanalyse te verkrijgen, centreert u het apparaat onder de microscoop met behulp van de podiumjoystick. Klik op Weergave, Acquisitiecontroles, ND-acquisitie. Er verschijnt een nieuw venster.Stel het pad in om het bestand op te slaan en typ de bestandsnaam. Controleer de functie Grote afbeelding, stel Scangebied in, bijvoorbeeld 5 bij 3. Controleer de functie Tijd, stel het interval in op vijf minuten en de duur op 60 minuten.Maak timelapse-afbeeldingen van het weefselcompartiment, waarbij het volgende uur elke vijf minuten één foto wordt gemaakt. CFD-simulatie toont het laminaire stromingspatroon in vasculaire kanalen, behalve voor bifurcatiegebieden waar het stromingspatroon verstoord is. Na het uitvoeren van de biomimetische microfluïdetest, onthulden fasecontrastbeelden dat de oppervlakken van de vasculaire kanalen bedekt waren met endotheelcellen en uitgelijnd in de richting van de schuifstroom na 48 uur cultuur.Fluorescentiebeeldvorming werd uitgevoerd met behulp van confocale microscopie, wat aangeeft dat de endotheelcellen een volledig driedimensionaal lumen vormen in bMFA Een neutrofiele adhesiekaart werd verkregen, waaruit bleek dat er een significante hechting van neutrofielen aan endotheelcellen in bMFA is. Neutrofielenmigratiekaart in bMFA toonde aan dat bij TNF-alfa-activering een aanzienlijke migratie van neutrofielen optreedt in het weefselcompartiment, terwijl een dergelijke migratie niet werd waargenomen zonder TNF-alfa-activering. Een adhesiekaart die de ruimtelijke verdeling van neutrofielen correleerde met de afschuifsnelheid toonde aan dat neutrofielenadhesie bij voorkeur optrad in vaten met een lage afschuifsnelheid en in de buurt van bifurcatiegebieden.Verder verhoogt TNF-alfabehandeling de hechting aanzienlijk, die werd geremd met de PKC-deltaremmer. Het analyseren van timelapse-beelden gaf aan dat TNF-activering van endotheelcellen de neutrofielenmigratie verhoogt als reactie op fMLP, terwijl behandeling met de PKC-deltaremmer de migratie verminderde in vergelijking met met TNF-alfa behandelde cellen. Zo kan bMFA worden gebruikt om de werkzaamheid van een nieuw therapeutisch middel voor de behandeling van ontstekingsziekten te testen.De bMFA kan ook worden gebruikt om de endotheelintegriteit te bestuderen door variabelen te meten zoals permeabiliteit en trans-endotheel elektrische weerstand, wat TEER wordt genoemd, en adhesiemolecuulexpressie tijdens ontsteking. De biomimetische microfluïdische test kan de micro-omgeving van verschillende organen nabootsen en is niet beperkt tot enkele celtypen of soorten, en kan ook cel / celcommunicatie modelleren die cruciaal is voor de orgaanfunctie en het modelleren van verschillende ziekten.

a-microphysiological-system-to-study-leukocyte-endothelial-cell

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bio-engineering

Dit is een methode om leukocyt adhesie te visualiseren aan het endotheel in geoogste drukvaten. De techniek maakt het bestuderen van vasculaire adhesie onder afschuiving stroom met verschillende intraluminale druk tot 200 mmHg aldus de pathofysiologische omstandigheden van hoge bloeddruk na te bootsen-ing.

Imaging Leukocyt Hechting aan het vasculair endotheel bij High intraluminale druk

Een methode om cultuur een endotheelcel monolaag het gehele inwendige oppervlak van een 3D microfluïdische apparaat met microvasculaire grootte kanalen (&lt;30 pm) beschreven.

Endothelialized Microfluidics voor het bestuderen van microvasculaire Interacties in Hematologische ziekten

Microfluïdische stromingskamers geëtst door fotolithografie en vervaardigd uit PDMS worden toegepast op functionele resultaten in verband met EG-dysfunctie en ontsteking te onderzoeken. In een representatief experiment het vermogen van differentiële schuifspanning moduleren monocyte celhechting aan cytokine geactiveerd EC monolagen wordt aangetoond.

On-Chip Endotheliale Inflammatoire Fenotypering

In this video, we demonstrate the real-time visualization of blood cell-endothelial interactions in the mesenterial veins of a mouse model injected intraperitoneally with lipopolysaccharide.

Intravital Microscopy to Analyze Blood Cell-Endothelial Interactions in an Inflammation Mouse Model

This video demonstrates a laminar flow-based assay to characterize the interaction of leukocytes and cellular partners such as endothelial cells. This method provides dynamic insights into adhesion, deadhesion, and transmigration of leukocytes when perfused over an intact and confluent layer of vascular cells.

A Laminar Flow-Based Assay to Study the Interactions Between Leukocytes and Endothelial Cells

Leukocyten steken de endotheelcellen monolaag met behulp van de paracellulaire of de transcellulaire route. We ontwikkelden een eenvoudige test om te volgen de verdeling van endogene junctionele VE-cadherine en PECAM-1 tijdens de migratie van leukocyten onder fysiologische stroom te maken tussen de twee transmigratie routes.

Real-time beeldvorming van endotheelcellen-cel Junctions Tijdens Neutrophil Transmigration onder fysiologische Flow

Hier presenteren we een protocol waarmee de onderzoeker leukocytaantrekking dynamiek ex vivo evaluatie door er een kamer bekleed met endotheliaalverkregen adhesiemoleculen aan het circulatiesysteem van een muis. Deze methode biedt aanzienlijke voordelen, omdat het zorgt voor leukocyten beoordeling op grond van de relatieve biologische omstandigheden.

Het beoordelen Leukocyte-endotheliale Interacties Onder stroomtoestanden in een Ex Vivo Autoperfused microflow Kamer Assay

Deze vereenvoudigde toepassing van intravitale microscopie van mesenterische aderen bij muizen kan worden gebruikt in verschillende ontstekingsmodellen om leukocyten-endotheel en bloedplaatjes-leukemie-interacties te observeren.

Intravitale Microscopie van leukocyten-endotheel en bloedplaatjes-leukocyten Interactions in mesenteriale Veins in Muizen

Vasculaire endotheel bepaalt strak leukocyte werving. Onvoldoende leukocyte extravasation draagt bij tot de inflammatoire ziekten bij de mens. Daarom is zoeken naar nieuwe regelgevende elementen van endothelial activering om te ontwerpen van verbeterde therapieën voor inflammatoire aandoeningen. Hier beschrijven we een uitgebreide methodologie om te karakteriseren roman endothelial regelgevers die leukocyte handel tijdens ontsteking kunnen wijzigen.

Screening tests karakteriseren roman Endothelial toezichthouders die betrokken zijn bij de ontstekingsreactie

Leukocyten interactie gretig met vasculaire cellen en trombocyten na vaartuig muur letsel of tijdens ontsteking. Hier beschrijven we een eenvoudig laminaire flow gebaseerde assay karakteriseren de moleculaire mechanismen die ten grondslag liggen aan de interacties tussen leukocyten en hun cellulaire partners.

Laminaire stroming gebaseerde testen te onderzoeken Leukocyte aanwerving op gekweekte vasculaire cellen en aanhangend bloedplaatjes

Dit stapsgewijze protocol biedt een gedetailleerde beschrijving van de experimentele opstelling en data-analyse voor de beoordeling van inflammatoire reacties in hiPSC-ECs en de analyse van leukocyten hechting onder fysiologische stroom.

Microfluidic Assay voor de beoordeling van leukocyten hechting op menselijke geïnduceerde pluripotente stamcellen-afgeleide endotheliale cellen (hiPSC-ECs)

Leer een biomimetisch microfluidisch assay om leukocyt-endotheelcelinteracties tijdens ontsteking te bestuderen met primaire humane cellen. Deze methode ondersteunt screening van potentiële therapeutica.

Een microfysiologisch systeem om leukocyten-endotheelcelinteractie tijdens ontsteking te bestuderen

Meer video's verkennen