1. Fazendo a fase móvel
2. Criando as soluções componentes
Os três componentes que precisam ser fabricados são cafeína (0,8 mg/mL), benzoato de potássio (1,4 mg/mL) e aspartame (L-aspartyl-L-phenylalanine metil ester) (6,0 mg/mL). Essas concentrações, uma vez diluídas da mesma forma, colocam os padrões nos níveis encontrados nas amostras de refrigerante.
3. Fazendo as 7 soluções padrão
Todos os três componentes possuem coeficientes de distribuição diferentes, o que afeta a forma como cada um interage com ambas as fases. Quanto maior o coeficiente de distribuição, maior o tempo que o componente passa na fase estacionária, resultando em tempos de retenção mais longos para chegar ao detector.
4. Verificando as configurações iniciais do sistema HPLC
5. Injetando manualmente a amostra e a coleta de dados

Figura 1. O cromatógrafo dos 3 componentes. Da esquerda para a direita, são cafeína, aspartame e benzoato.
6. As amostras de refrigerantes diet
Coca Diet, Diet Pepsi e Coca-Cola Zero são as "incógnitas". Eles foram deixados de fora em recipientes abertos durante a noite para se livrar da carbonação, já que bolhas não são boas para o sistema HPLC. Isso se livra suficientemente de qualquer gases nas amostras.
7. Cálculos

Figura 2. Um exemplo básico da altura e largura de pico de uma curva, que devem ser multiplicados (os horários de altura de pico se largura a 1/2 altura).
Fonte: Dr. Paul Bower - Universidade Purdue
Cromatografia líquida de alto desempenho (HPLC) é um importante método analítico comumente utilizado para separar e quantificar componentes de amostras líquidas. Nesta técnica, uma solução (primeira fase) é bombeada através de uma coluna que contém uma embalagem de pequenas partículas porosas com uma segunda fase ligada à superfície. As diferentes solubilidades dos componentes amostrais nas duas fases fazem com que os componentes se movam através da coluna com velocidades médias diferentes, criando assim uma separação desses componentes. A solução bombeada é chamada de fase móvel, enquanto a fase na coluna é chamada de fase estacionária.
Existem vários modos de cromatografia líquida, dependendo do tipo de fase estacionária e/ou móvel empregada. Este experimento usa cromatografia de fase invertida, onde a fase estacionária não é polar, e a fase móvel é polar. A fase estacionária a ser empregada são grupos de hidrocarbonetos C18 ligados a partículas de sílica de 3 μm, enquanto a fase móvel é um tampão aquoso com um modificador orgânico polar (acetonitrila) adicionado para variar sua força de eluição. Nesta forma, a sílica pode ser usada para amostras solúveis em água, proporcionando uma ampla gama de aplicações. Neste experimento, as misturas de três componentes frequentemente encontrados em refrigerantes diet (cafeína, benzoato e aspartame) são separadas. Sete soluções preparadas contendo quantidades conhecidas das três espécies são usadas, e seus cromatogramas são então registrados.
1. Fazendo a fase móvel
2. Criando as soluções componentes
Os três componentes que precisam ser fabricados são cafeína (0,8 mg/mL), benzoato de potássio (1,4 mg/mL) e aspartame (L-aspartyl-L-phenylalanine metil ester) (6,0 mg/mL). Essas concentrações, uma vez diluídas da mesma forma, colocam os padrões nos níveis encontrados nas amostras de refrigerante.
3. Fazendo as 7 soluções padrão
Todos os três componentes possuem coeficientes de distribuição diferentes, o que afeta a forma como cada um interage com ambas as fases. Quanto maior o coeficiente de distribuição, maior o tempo que o componente passa na fase estacionária, resultando em tempos de retenção mais longos para chegar ao detector.
4. Verificando as configurações iniciais do sistema HPLC
5. Injetando manualmente a amostra e a coleta de dados

Figura 1. O cromatógrafo dos 3 componentes. Da esquerda para a direita, são cafeína, aspartame e benzoato.
6. As amostras de refrigerantes diet
Coca Diet, Diet Pepsi e Coca-Cola Zero são as "incógnitas". Eles foram deixados de fora em recipientes abertos durante a noite para se livrar da carbonação, já que bolhas não são boas para o sistema HPLC. Isso se livra suficientemente de qualquer gases nas amostras.
7. Cálculos

Figura 2. Um exemplo básico da altura e largura de pico de uma curva, que devem ser multiplicados (os horários de altura de pico se largura a 1/2 altura).
A cromatografia líquida de alta eficiência, ou HPLC, é uma técnica altamente versátil que separa os componentes de uma mistura líquida com base em suas diferentes interações com uma fase estacionária.
A HPLC é uma adaptação da cromatografia em coluna. Na cromatografia em coluna, uma coluna é preenchida com grânulos em microescala chamados de fase estacionária. Os grânulos de fase estacionária são funcionalizados com grupos químicos que induzem uma interação entre o grânulo e os componentes de uma mistura localizada na fase líquida ou móvel. À medida que a mistura flui através da coluna, os componentes interagem com a fase estacionária de maneira diferente.
Em HPLC, a cromatografia em coluna é realizada em uma taxa de fluxo mais alta e, portanto, em uma pressão mais alta do que a cromatografia em coluna clássica. Isso permite o uso de grânulos de fase estacionária menores com uma maior relação área de superfície para volume, o que aumenta muito a interação da fase estacionária e dos componentes na fase móvel.
Este vídeo apresentará os fundamentos da operação da HPLC, demonstrando a separação de componentes de vários refrigerantes diet.
Existem dois tipos de HPLC usados no laboratório: analítico e preparativo. Na HPLC analítica, o instrumento é usado para identificar componentes de um pequeno volume, e a amostra analisada é então descartada como resíduo. Na HPLC preparativa, o instrumento é usado para purificar uma mistura e uma quantidade desejada de cada componente é coletada em frações.
A instrumentação de HPLC consiste em uma série de componentes simples. Primeiro, a fase móvel, mantida em reservatórios de solvente, é bombeada através do sistema por uma ou mais bombas a uma taxa de fluxo constante. A amostra é injetada no fluxo de fase móvel pelo injetor de amostra. A amostra, diluída pela fase móvel, é então entregue à coluna de HPLC, onde os componentes da amostra são separados. Os componentes são então analisados pelo detector e salvos em frações para uso posterior ou transferidos para um frasco de resíduos.
A coluna HPLC é o componente chave do sistema. É composto por um cilindro de metal ou plástico, embalado com esferas em microescala de fase estacionária ou resina de cromatografia. A mistura de amostra flui através do leito de partículas compactado a uma taxa de fluxo constante e cada componente interage com a fase estacionária à medida que flui.
Os compostos interagem com a fase estacionária de maneira diferente e, portanto, percorrem o comprimento da coluna até o detector a uma taxa diferente. O tempo necessário para um componente sair da coluna, ou eluir, é chamado de tempo de retenção. O resultado é um gráfico de tempo de retenção versus intensidade, ou um cromatograma. O tempo de retenção é usado para identificar o componente. O tamanho do pico, especificamente a área sob o pico, é usado para quantificar a quantidade do composto na solução inicial.
A escolha da fase estacionária depende das propriedades dos componentes da mistura de amostras. A fase estacionária mais comumente usada são os grânulos de sílica, pois são um material apolar inerte que forma grânulos em microescala e atinge densidade de empacotamento suficiente. O tipo mais comum de HPLC é a cromatografia de fase reversa, que utiliza uma fase estacionária hidrofóbica, normalmente esferas de sílica com cadeias C18 ligadas à superfície das contas. Os componentes são eluídos em ordem decrescente de polaridade.
A fase móvel usada na cromatografia de fase reversa é tipicamente uma mistura de água e um solvente orgânico, como a acetonitrila. Dependendo da amostra, a fase móvel pode permanecer uma proporção constante de água e solvente orgânico, conhecida como modo isocrático. No entanto, isso pode levar a picos largos, no caso de alto teor de água, ou picos sobrepostos no caso de alto teor orgânico.
A razão de fase móvel também pode ser alterada linearmente ou gradualmente durante a separação, para criar um gradiente de fase móvel. Uma eluição de gradiente pode impedir o alargamento do pico dos componentes menos polares, melhorando assim a separação e encurtando o tempo de eluição.
Agora que os fundamentos da HPLC foram delineados, a técnica de HPLC será demonstrada em laboratório. Neste experimento, a HPLC será usada para separar e quantificar três componentes comuns do refrigerante diet.
Primeiro, para preparar a fase móvel, adicione 400 mL de acetonitrila a 1,5 L de água deionizada purificada. Em seguida, adicione cuidadosamente 2,4 mL de ácido acético glacial. Diluir a solução até um volume total de 2 l. A solução resultante deve ter um pH entre 2,8 e 3,2.
Ajuste o pH para 4,2 adicionando 40% de NaOH, gota a gota, à solução de agitação, com o uso de um medidor de pH calibrado.
Filtre a fase móvel através de um filtro de membrana de 0,47 μm sob vácuo para desgaseificar a solução e remover os sólidos que possam obstruir a coluna. É importante desgaseificar a solução, pois as bolhas podem causar vazios na fase estacionária ou chegar à célula detectora e causar instabilidade nas medições.
Prepare soluções de três componentes de cafeína, benzoato e aspartame, que são três componentes típicos de refrigerantes diet. Essas soluções de componentes são então usadas para preparar as soluções padrão que serão utilizadas para determinar as incógnitas. Prepare 500 mL das soluções de cafeína e benzoato.
Prepare 100 mL da solução componente de aspartame. Guarde a solução na geladeira quando não estiver em uso para evitar a decomposição.
Em seguida, prepare 7 soluções padrão, cada uma com diferentes concentrações de cafeína, benzoato e aspartame. Pipetar a quantidade adequada de cada componente em um balão volumétrico e diluir até a marca de 50 mL com fase móvel.
As 3 primeiras soluções contêm um componente, para permitir a identificação de picos. As outras 4 soluções contêm uma faixa de concentrações de todos os 3 componentes, a fim de correlacionar a altura do pico com a concentração.
Despeje cada solução padrão em um frasco rotulado em um rack de amostras. Guarde o suporte de amostras com amostras e as soluções restantes na geladeira.
Primeiro, configure a fase móvel e os recipientes de resíduos. Certifique-se de que as linhas de resíduos sejam alimentadas em um recipiente de resíduos e não sejam recicladas de volta para a fase móvel. Certifique-se de que a linha de fase móvel de entrada seja alimentada no recipiente de fase móvel.
Verifique se a vazão da fase móvel está definida para 0.5 mL/min. Essa taxa de fluxo permitirá que todos os componentes eluam em 5 minutos, mas é lenta o suficiente para garantir a resolução de picos individuais.
Em seguida, verifique as pressões mínima e máxima no sistema de entrega de solvente. Essas configurações desligam a bomba em caso de vazamento ou entupimento, respectivamente.
Pressione "zero" no painel frontal do detector para definir o espaço em branco. Enxágue um 100-? L com água deionizada, depois com vários volumes de 1 dos 7 padrões de trabalho. Em seguida, encha a seringa com essa solução. Comece com as 3 amostras de componente único para identificar o pico de cada componente.
Em seguida, injete manualmente a solução, colocando a alça do injetor na posição de carga. Injete lentamente o 100 ? L de solução através da porta do septo.
Verifique se o programa de coleta de dados está configurado para coletar dados por 300 s, o que permite tempo suficiente para que todos os 3 picos eluam através do detector. Quando estiver pronto para iniciar o teste, gire a alça do injetor para a posição de injeção, a fim de injetar a amostra na fase móvel. Imediatamente, clique em "Iniciar teste" no programa de coleta de dados. Quando a verificação estiver concluída, repita o processo para cada uma das 7 soluções padrão. Para cada um dos 3 primeiros padrões, apenas um dos 3 picos aparece. Observe a localização do pico, que é usado para identificar o componente.
Selecione 3 amostras de refrigerante diet e deixe-as em recipientes abertos durante a noite para remover a carbonatação.
Após a desgaseificação durante a noite, coloque aproximadamente 3 mL de cada refrigerante diet em uma seringa de plástico. Em seguida, coloque uma ponta de filtro na seringa e empurre o refrigerante através do filtro para um frasco de vidro, a fim de remover quaisquer partículas sólidas.
Dilua 2 mL de cada amostra com 2 mL da fase móvel para diminuir a concentração de refrigerante pela metade.
Empate 100 ? L de uma das amostras de refrigerante em uma seringa e injete-a no laço de amostra. Execute o teste com parâmetros idênticos às soluções padrão. Repita para cada amostra de refrigerante.
Primeiro, correlacione as áreas de pico das amostras padrão com as concentrações conhecidas. Para isso, determinar as áreas dos picos nos cromatógrafos para cada amostra-padrão utilizando o método triangular. Calcule os tempos de altura de pico com a largura na metade da altura e use esse valor como a área de pico.
Usando a área de pico e as concentrações conhecidas, crie uma curva de calibração para cada componente e determine os mínimos quadrados adequados para cada curva de calibração.
Calcule a concentração de cada componente nos refrigerantes diet das áreas de pico. Lembre-se de que os refrigerantes foram todos diluídos por um fator de 2 antes da injeção na HPLC. Com base nesses resultados, calcule o mg de cada componente em uma lata de refrigerante de 12 onças.
Sem surpresa, todos os 3 refrigerantes testados continham aproximadamente a mesma quantidade do conservante benzoato. No entanto, os produtos da Coca-Cola continham mais cafeína. Os valores calculados para todos os componentes correlacionaram-se bem com os valores relatados pelos fabricantes.
A HPLC é um instrumento altamente versátil, usado em uma ampla gama de análises.
A HPLC é frequentemente usada para purificar moléculas de peptídeos. Neste exemplo, complexos peptídicos transmembranares foram preparados e, em seguida, estabilizados por reticulação oxidativa das proteínas com ligações dissulfeto.
As proteínas foram então dissolvidas em ácido fórmico e purificadas usando HPLC de fase reversa. A amostra foi então eluída usando um gradiente linear de dois solventes e a pureza confirmada com espectrometria de massa.
A HPLC também pode ser usada para identificar compostos orgânicos sintetizados em laboratório. No experimento de Miller-Urey, a síntese abiótica de compostos orgânicos na terra primordial foi estudada. Gases primordiais, como metano e amônia, foram introduzidos em um frasco contendo água, simulando os primeiros oceanos. A descarga elétrica foi então aplicada, imitando o relâmpago na terra primordial.
A água foi então analisada usando HPLC acoplada à espectrometria de massa e comparada com os padrões de aminoácidos conhecidos. 23 aminoácidos foram sintetizados e identificados neste experimento.
Você acabou de assistir à introdução da JoVE à HPLC. Agora você deve entender os fundamentos da execução do instrumento e da análise dos dados resultantes.
Obrigado por assistir!
Durante um experimento hplc, uma bomba de alta pressão leva a fase móvel de um reservatório através de um injetor. Em seguida, ele viaja através de uma coluna c18 de fase inversa para a separação de componentes. Finalmente, a fase móvel se move para uma célula detectora, onde a absorção é medida a 220 nm, e termina em uma garrafa de resíduo. A quantidade de tempo que leva para um componente viajar da porta do injetor para o detector é chamada de tempo de retenção.
Um cromatógrafo líquido é usado neste experimento, onde a separação é realizada em uma coluna de fase inversa. As dimensões da coluna são de 3 mm (i.d.) x 100 mm, e a embalagem de sílica (tamanho de partícula de 3-μm) é funcionalizada com octidalsilano C18 (ODS). Uma válvula de injeção rotativa Rheodyne de 6 portas é usada para armazenar inicialmente a amostra em um pequeno loop e introduz a amostra à fase móvel após a rotação da válvula.
A detecção é por espectroscopia de absorção em um comprimento de onda de 220 nm. Este experimento pode ser executado a 254 nm, se um detector não for variável. Os dados do detector têm uma saída de tensão analógica, que é medida por meio de um multimímetro digital (DMM), e lida por um computador carregado com um programa de aquisição de dados. O cromatógrafo resultante tem um pico para cada componente da amostra. Para este experimento, todos os três componentes elute dentro de 5 min.
Este experimento usa uma única fase móvel e bomba, que é chamada de fase móvel isocrática. Para amostras difíceis de separar, uma fase móvel gradiente pode ser usada. É quando a fase móvel inicial é principalmente aquosa, e com o tempo, uma segunda fase móvel orgânica é gradualmente adicionada à fase móvel global. Este método eleva a polaridade desta fase ao longo do tempo, que reduz os tempos de retenção dos componentes e funciona de forma semelhante a um gradiente de temperatura em um cromatógrafo de gás. Existem alguns casos em que a coluna é aquecida (geralmente a 40 °C), o que tira quaisquer erros de tempo de retenção associados a uma mudança de temperatura ambiente.
Em fase inversa HPLC, a embalagem de fase estacionária da coluna geralmente é uma embalagem C4, C8 ou C18. As colunas C4 são principalmente para proteínas com grandes pesos moleculares, enquanto as colunas C18 são para peptídeos e amostras básicas com pesos moleculares mais baixos.
A detecção por espectroscopia de absorção é esmagadoramente o método de detecção de escolha, pois os espectros de absorção dos componentes estão prontamente disponíveis. Alguns sistemas utilizam medidas eletroquímicas, como condutividade ou amperometria, como seu método de detecção.
Para este experimento, a fase móvel é principalmente 20% de acetonitrila e 80% de água deionizada purificada (DI). Uma pequena quantidade de ácido acético é adicionada para diminuir o pH da fase móvel, que mantém o silanol na fase de embalagem estacionária em um estado não dissociado. Isso reduz o pico de adsorção do rejeito, dando picos mais estreitos. Em seguida, o pH é ajustado com hidróxido de sódio de 40% para elevar o pH e ajudar a diminuir os tempos de retenção dos componentes.
Cada grupo utiliza um conjunto dos 7 frascos contendo diferentes concentrações das soluções padrão(Tabela 1). Os 3 primeiros são usados para identificar cada pico, e os últimos 4 são para a criação de um gráfico de calibração para cada componente. As normas 1-3 também são usadas para o gráfico de calibração.
| Número | Cafeína (mL) | Benzoato (mL) | Aspartame (mL) |
| 1 | 4 | 0 | 0 |
| 2 | 0 | 4 | 0 |
| 3 | 0 | 0 | 4 |
| 4 | 1 | 1 | 1 |
| 5 | 2 | 2 | 2 |
| 6 | 3 | 3 | 3 |
| 7 | 5 | 5 | 5 |
Mesa 1. Volumes de padrões de estoque utilizados para preparar os 7 padrões de trabalho fornecidos (o volume total de cada padrão é de 50 mL).
Os cromatogramas HPLC são capazes de quantificar cada um dos 3 componentes para todas as amostras com base nas curvas de calibração das normas(Figura 3).
A partir deste conjunto de experimentos, foi determinado que uma lata de 12 oz desses refrigerantes diet continha as seguintes quantidades de cada componente:
Coca Diet: 50,5 mg de cafeína; 217,6 mg aspartame; 83,6 mg de benzoato.
Coca-Cola Zero: 43,1 mg de cafeína; 124,9 mg aspartame; 85,3 mg de benzoato.
Pepsi Diet: 34,1 mg de cafeína; 184,7 mg aspartame; 79,5 mg de benzoato.
Não surpreende que todos os três tivessem aproximadamente a mesma quantidade de benzoato, pois é apenas um conservante. Os produtos de Coca-Cola tinham um pouco mais de cafeína, e o Coke Zero tinha muito menos aspartame do que os outros dois refrigerantes, pois também inclui ácido cítrico para alguns aromatizantes.
Os números a seguir são as quantidades reais de cafeína e aspartame em uma lata de 12 oz dos 3 refrigerantes diet (O teor de cafeína foi obtido nos sites da Coca-Cola e pepsi. O conteúdo aspartame foi obtido tanto de LiveStrong.com quanto de DiabetesSelfManagement.com.):
Coca Diet: 46 mg de cafeína; 187,5 mg aspartame
Coca-Cola Zero: 34 mg de cafeína; 87,0 mg aspartame
Pepsi Diet: 35 mg de cafeína; 177,0 mg aspartame
Cálculos amostrais(Tabela 2):
Concentração de cafeína em DST #1: A solução componente para a cafeína teve 0,400 g de cafeína diluída a 500 mL = 0,500 L → 0,800 g/L = 0,800 mg/mL.
StD#1 teve 1 mL desta solução diluída para 50,0 mL
0,800 mg/mL * (1,0 mL / 50,0 mL) = 0,016 mg/mL = 16,0 mg/L.
STD#2 teve 2 mL desta solução diluída para 50,0 mL
0,800 mg/mL * (2,0 mL / 50,0 mL) = 0,032 mg/mL = 32,0 mg/L.
Os resultados dos três gráficos de calibração(Figura 4) produziram as seguintes equações:
Área de Pico da Cafeína = 0,1583 *[Cafeína mg/L] - 0,574
Aspartame Peak Area = 0,02696 *[Aspartame mg/L] - 0,405
Área de Pico do Benzoato = 0,1363*[Benzoato mg/L] - 1.192
Coca-Cola Diet: Área de Pico da Cafeína = 10,68 = 0,1583 *[Cafeína mg/L] - 0,574
[Cafeína mg/L] = (10,68 + 0,574)/ (0,1583) = 71,1 mg/L na amostra injetada.
Como a amostra foi diluída por um fator de 2, a Coca Diet tinha 141,2 mg/L de cafeína.
A quantidade por lata de 12 oz = (141,2 mg/L)(0,3549 mL/12-oz pode) = 50,5 mg de cafeína/lata.

Figura 3. Os cromatogramas HPLC das 5 normas e das 3 amostras.

Figura 4. As curvas de calibração para cada um dos 3 componentes.

Mesa 2. As tabelas de dados para os ensaios HPLC utilizados para gerar as curvas de calibração.
O HPLC é uma técnica amplamente utilizada na separação e detecção de muitas aplicações. É ideal para compostos não voláteis, pois a cromatografia gasosa (GC) exige que as amostras estejam em fase de gás. Compostos não voláteis incluem açúcares, vitaminas, drogas e metabólitos. Além disso, não é destrutivo, o que permite que cada componente seja coletado para análise suplementar (como espectrometria de massa). As fases móveis são praticamente ilimitadas, o que permite mudanças na polaridade do pH para obter uma melhor resolução. O uso de fases móveis gradientes permite essas alterações durante os ensaios reais.
Há preocupação com os possíveis problemas de saúde que podem estar associados ao adoçante artificial aspartame. A rotulagem atual do produto não mostra a quantidade desses componentes dentro das bebidas dietéticas. Este método permite quantificar essas quantidades, juntamente com a cafeína e benzoato.
Outras aplicações incluem determinar as quantidades de pesticidas na água; determinando a quantidade de acetaminofeno ou ibuprofeno em comprimidos para aliviar a dor; determinar se há medicamentos que melhoram o desempenho presentes na corrente sanguínea dos atletas; ou simplesmente determinar a presença de drogas em um laboratório criminal. Embora as concentrações dessas amostras, e muitas vezes a identidade dos componentes, possam ser prontamente determinadas, a única limitação é que várias amostras podem ter tempos de retenção idênticos, resultando em co-eluição.
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