$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Pegue neurônios fixos e permeabilizados em um tubo.
Adicione um tampão de bloqueio para evitar a ligação de anticorpos não específicos.
Centrifugue a suspensão e remova o sobrenadante. Em seguida, ressuspenda os neurônios no tampão.
Transfira a suspensão igualmente para tubos contendo anticorpos primários não marcados e marcados com fluoróforo.
Incubar, permitindo que os anticorpos se liguem especificamente à cadeia respiratória mitocondrial ou subunidades do complexo MRC, uma proteína associada ao DNA mitocondrial e uma proteína da membrana externa mitocondrial dentro dos neurônios.
Remova quaisquer anticorpos não ligados.
Incubar com anticorpos secundários marcados com fluoróforo que se ligam aos anticorpos primários não marcados.
Centrifugue a mistura e descarte o sobrenadante.
Ressuspenda os neurônios em tampão e transfira-os para tubos de microcentrífuga.
Realize citometria de fluxo para detectar os sinais fluorescentes nos neurônios marcados, correspondendo aos níveis de expressão das subunidades do complexo MRC e à medição dos níveis relativos de DNA mitocondrial.
Bloqueie as amostras em 1 mililitro de tampão de bloqueio e lave as células por centrifugação com PBS, conforme demonstrado. Para detectar diferentes complexos e subunidades mitocondriais, incube as células por 30 minutos com os respectivos anticorpos primários descritos no manuscrito do texto. Depois de lavar as células uma vez com PBS, incube as células com anticorpo secundário por 30 minutos.
No final da incubação, lave e ressuspenda as células em PBS conforme demonstrado. Transfira a suspensão celular para um tubo de microcentrífuga de 1,5 mililitro, mantido no escuro, no gelo. Em seguida, analise as células no citômetro de fluxo e detecte sinais e filtre um usando um filtro passa-banda 530/30.