Name: Modelo Experimental de Endocardite resistente à meticilina Staphylococcus aureus (MRSA) em Rato (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-04T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 46 s
Description: Aprenda a estabelecer um modelo experimental de endocardite infecciosa por MRSA em ratos. Este método utiliza cateteres cirúrgicos e injeção na veia da cauda para estudar patogênese e testar terapias antimicrobianas.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Este trabalho foi financiado pelo National Institutes of Health EUA [concessão R01AI-39108 para ASB] ea American Heart Association [subsídios SDG 0630219N e AID 09GRNT2180065 para YQX].

1. Preparando o MRSA de Infecção <ol><li> Inocule uma ansa cheia de cultura MRSA de um tubo de estoque a -80 ° C a uma sangue de ovelha Trypticase Soy placa de agar (TSA) (ver Tabela de reagentes específicos e equipamentos), e incubar a 37 ° C durante a noite. </li><li> Verifique a pureza da cultura sobre a placa de ágar sangue (fenótipos semelhantes colônia) para ter certeza não há contaminação. </li><li> Escolha uma colónia da placa de sangue de ovelha TSA e inocular a colónia em 5 ml Trypticase Soy Broth (TSB) em um tubo de 15 ml snap-tapado. </li><li> Incubar a 37 ° C durante a noite com agitação a 200 rpm. </li></ol> 2. Preparando Cateteres Cirurgia Corte o tubo de polietileno (PI10,. Becton Dickinson, nenhuma ordem 427401) a 10 cm comprimento, e derreter uma extremidade pressionando a ponta com uma pinça estéreis. O objectivo da selagem uma extremidade do cateter é evitar hemorragia durante a cateterização. 3. Pré-sPreparação urgery e Anestesia <ol><li> Rato lugar Sprague-Dawley (Harlan, Indianapolis, Ind. fêmea, 250-300 gramas) em uma câmara contendo isofluorano em oxigénio da mistura de gases (50%: 50%) até que o anestésico tem efeito (por exemplo, os músculos estão relaxados e reflexos de pedais estão ausentes ), e manter os animais em um estado de anestesia durante a cirurgia com a mistura de gás. </li><li> Limpe a área do pescoço do queixo até um pouco abaixo do esterno com Betadine e etanol 70%. </li></ol> 4. Procedimento Cirúrgico <ol><li> Use uma técnica asséptica durante toda a cirurgia. Fazer uma incisão (1-1,5 cm) verticalmente através da pele só camada do pescoço acima do esterno. </li><li> Usando dissecção romba, separar a fáscia para expor a artéria carótida direita com 2 pares de pinças curvas dentadas. </li><li> Puxe delicadamente a artéria para fora da cavidade do pescoço, e coloque dois comprimentos de 10 cm de fio de seda sob a artéria e amarrar a artéria na extremidade exposta cefálica, coloque um clipe sobre a artery para evitar sangramento. </li><li> Fazer um pequeno furo no topo da artéria utilizando um introdutor de cateter (Becton Dickinson, ordem n. 406.999), inserir um cateter com um fórceps através do orifício na artéria, remover o grampo e empurrar para baixo do cateter para o coração até que a resistência seja cumprido. </li><li> Amarrá a sutura solto em torno da extremidade caudal da artéria e fixar o cateter no lugar com a sutura de seda quando o cateter está no lugar, tal como determinado por: i) o comprimento do cateter inserido (4-5 cm); resistência ii) um maior avanço e iii) pulsação do cateter com o batimento cardíaco. Deixar o cateter no lugar durante o resto da experiência. </li><li> Cortar sutura em excesso e as extremidades do cateter, e se certificar de que não há sangramento a partir do cateter. Dobre as pontas soltas sob a pele do pescoço e feche a pele com grampos de pele. </li><li> Coloque o rato na gaiola em um lugar morno até que recuperou da anestesia, e fornecer comida e água. Verifique o rato freqüentemente durante eapós a recuperação da anestesia. </li><li> Esta cirurgia é um &quot;Categoria E&quot; procedimento. Os procedimentos produzidos a dor é sem alívio com analgésicos desde infecções por MRSA que acompanham angústia para os animais. </li></ol> 5. Infecção por MRSA <ol><li> A infecção pode ser realizada entre 1 e 7 dias pós-cirurgia, mas manter consistente dentro experimentos. </li><li> Limpeza da cauda de rato com etanol a 70%, e injectar 0,5 ml MRSA com uma contagem de célula desejado (10 abril-10 junho ufc / animal para a maioria das cepas de S. aureus). Com 27 G agulha 1/2 polegada por via intravenosa a partir da veia da cauda Cuidado : cultura MRSA pertence ao nível de biossegurança 2 (BSL2) e tem potencial perigo moderado para o pessoal e do ambiente. </li><li> Manter a pressão no local até que a hemostase ocorre antes de retornar o rato para o compartimento. </li></ol> 6. Ratos sacrifício e tecidos-alvo Cultura <ol><li> Sacrificar ratos por injecção ip de pentobarbital de sódio (200 mg/ Kg) após 1 a 6 dias após a infecção. </li><li> Coloque o rato sobre as costas e limpe o peito com etanol 70%. </li><li> Fazer uma incisão em forma de V no peito abaixo esterno, e cortado a cartilagem de nervuras de cada lado do esterno para expor o coração. </li><li> Puxe o coração se suavemente, e clipe através do tecido do coração perto da aorta e dissecar até libertar o coração. </li><li> Coloque o coração em uma placa de Petri esterilizada com 4x4 polegadas dentro de gaze, faça um corte através da parede do ventrículo esquerdo interior e abrir a câmara do lado esquerdo. </li><li> Verifique visualmente para a colocação do cateter. Examinar e remover vegetações da válvula com uma tesoura e pinças. </li><li> Pesar e homogeneizar as vegetações, e fazer diluições seriadas com PBS para a cultura quantitativa. </li></ol> 7. Os resultados representativos Imediatamente após a inserção do cateter na artéria e empurrando para baixo a cerca de 4-5 cm do cateter para o coração, uma resistência será experienCED. Se nenhuma resistência é detectado, o cateter pode não ter sucesso, foi inserido no lado esquerdo da câmara do coração, que podem afectar a colocação do cateter. Um correcto posicionamento do cateter publicado anteriormente 9 é mostrada na Figura 1. Parte das amostras de infecção por MRSA precisam de ser cultivadas quantitativa a certificar-se a contagem viável exacta bacteriana para a infecção e pureza da amostra infecção. Além disso, os organismos recuperados a partir de vegetações deve ser os mesmos que os utilizados no inoculo. A Tabela 1 apresenta um exemplo de virulência de um S. aureus estirpe no modelo de rato endocardite, que foi publicado anteriormente 9. Todos os animais desafiados com inóculos de 10 5 e 10 6 ufc e sacrificados entre 3 a 6 dias após infecção endocardite desenvolveram com S. alta densidades aureus em vegetações cardíacas, bem como os rins e do baço ( <strong&gt; Tabela 1). Ratos com culturas de válvulas estéreis são considerados não infectados. <img alt="A Figura 1" src="/files/ftp_upload/3863/3863fig1.jpg" /> Figura 1. O cateter está em um lugar correto (lado esquerdo da câmara do coração), e vegetações diversas são visíveis em torno da válvula aórtica 9. <table border="1"><tbody><tr><td> Inóculo (n º de animas) </td><td colspan="3"> A média de log 10 CFU / g de tecido ± DP um em: </td></tr><tr><td></td><td> Vegetação </td><td> Rim </td><td> Baço </td></tr><tr><td> 10 6 UFC / animal (9) </td><td> 10,36 ± 0,85 </td><td> 7,30 ± 0,64 </td><td> 6,70 ± 0,57 </td></tr><tr><td> 10 5 UFC / animal (8) </td><td> 9,93 ± 0,53 </td><td> 7,14 ± 0,53 </td><td> 6,44 ± 0,63</td></tr><tr><td> 10 4 UFC / animal (7) </td><td> 3,46 ± 0,50 * </td><td> 1,81 ± 0,74 * </td><td> 1,58 ± 0,59 * </td></tr></tbody></table> um desvio, SD padrão. P &lt;0,001 em relação ao 10 5 ou 10 6 CFU-desafiados animais. Tabela 1. S. densidade aureus em vegetações cardíacas com diferentes inóculos na endocardite ratos 9.

<ol><li>Petti, C. A., Fowler, V. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Staphylococcus+aureus+bacteremia+and+endocarditis%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiol.+Clin%22%5BJournal%5D)">Staphylococcus aureus bacteremia and endocarditis.</a> Cardiol. Clin. 21, 219-233 (2003).</li>
<li>Bashore, T. M., Cabell, C., Fowler, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Update+on+infective+endocarditis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Probl.+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Update on infective endocarditis.</a> Curr. Probl. Cardiol. 31, 274-352 (2006).</li>
<li>Fowler, V. G. Jr, Justice, A., Moore, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Risk+factors+for+hematogenous+complications+of+intravascular+catheter-associated+Staphylococcus+aureus+bacteremia%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Infect.+Dis%22%5BJournal%5D)">Risk factors for hematogenous complications of intravascular catheter-associated Staphylococcus aureus bacteremia.</a> Clin. Infect. Dis. 17, 313-320 (1993).</li>
<li>Wisplinghoff, H., Bischoff, T., Tallent, S. M., Seifert, H., Wenzel, R. P., Edmond, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nosocomial+bloodstream+infections+in+US+hospitals%3A+analysis+of+24%2C179+cases+from+a+prospective+nationwide+surveillance+study%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Infect.+Dis%22%5BJournal%5D)">Nosocomial bloodstream infections in US hospitals: analysis of 24,179 cases from a prospective nationwide surveillance study.</a> Clin. Infect. Dis. 39, 309-317 (2004).</li>
<li>Hoen, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Special+issues+in+the+management+of+infective+endocarditis+caused+by+gram-positive+cocci%5BTitle%5D)+AND+%22Infect+Dis.+Clin.+North+Am%22%5BJournal%5D)">Special issues in the management of infective endocarditis caused by gram-positive cocci.</a> Infect Dis. Clin. North Am. 16, 437-452 (2002).</li>
<li>Moise, P. A., Hershberger, E., Amodio-Groton, M. I., Lamp, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safety+and+clinical+outcomes+when+utilizing+high-dose+%28%3E+or+%3D8+mg%2Fkg%29+daptomycin+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Pharmacother%22%5BJournal%5D)">Safety and clinical outcomes when utilizing high-dose (> or =8 mg/kg) daptomycin therapy.</a> Ann. Pharmacother. 43, 1211-1219 (2009).</li>
<li>Sakoulas, G., Brown, J., Lamp, K. C., Friedrich, L. V., Lindfield, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+outcomes+of+patients+receiving+daptomycin+for+the+treatment+of+Staphylococcus+aureus+infections+and+assessment+of+clinical+factors+for+daptomycin+failure%3A+a+retrospective+cohort+study+utilizing+the+Cubicin+Outcomes+Registry+and+Experience%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Ther%22%5BJournal%5D)">Clinical outcomes of patients receiving daptomycin for the treatment of Staphylococcus aureus infections and assessment of clinical factors for daptomycin failure: a retrospective cohort study utilizing the Cubicin Outcomes Registry and Experience.</a> Clin. Ther. 31, 1936-1945 (2009).</li>
<li>Xiong, Y. Q., Willard, J., Kadurugamuwa, J. L., Yu, J., Francis, K. P., Bayer, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+in+vivo+bioluminescent+imaging+for+evaluating+the+efficacy+of+antibiotics+in+a+rat+Staphylococcus+aureus+endocarditis+model%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob.+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Real-time in vivo bioluminescent imaging for evaluating the efficacy of antibiotics in a rat Staphylococcus aureus endocarditis model.</a> Antimicrob. Agents Chemother. 49, 380-387 (2005).</li>
<li>Peerschke, E. I., Bayer, A. S., Ghebrehiwet, B., Xiong, Y. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((gC1qR%2Fp33+blockade+reduces+Staphylococcus+aureus+colonization+of+target+tissues+in+an+animal+model+of+infective+endocarditis%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">gC1qR/p33 blockade reduces Staphylococcus aureus colonization of target tissues in an animal model of infective endocarditis.</a> Infect. Immun. 74, 4418-4423 (2006).</li>
<li>Ganesh, V. K., Rivera, J. J., Smeds, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+structural+model+of+the+Staphylococcus+aureus+ClfA-fibrinogen+interaction+opens+new+avenues+for+the+design+of+anti-staphylococcal+therapeutics%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">A structural model of the Staphylococcus aureus ClfA-fibrinogen interaction opens new avenues for the design of anti-staphylococcal therapeutics.</a> PLoS Pathog. 4, e1000226(2008).</li>
<li>Boles, B. R., Horswill, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Staphylococcal+biofilm+disassembly%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Staphylococcal biofilm disassembly.</a> Trends Microbiol. , (2011).</li>
<li>Tseng, C. W., Sanchez-Martinez, M., Arruda, A., Liu, G. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subcutaneous+Infection+of+Methicillin+Resistant+Staphylococcus+Aureus+%28MRSA%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Subcutaneous Infection of Methicillin Resistant Staphylococcus Aureus (MRSA).</a> J. Vis. Exp. (48), e2528(2011).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

A endocardite rato é um modelo animal importante e bem caracterizado para estudos in vivo na patogénese e agentes antimicrobianos para o tratamento de infecções bacterianas 9-11. Além disso, o modelo de rato endocardite representa um composto de infecções agudas e sub-aguda, e imita homólogo humano e endocardite válvula humana nativa. Além disso, acompanhados por um cateter na habitação, que representa uma infecção clássica associada ao biofilme, um problema comum e difícil na prática clínic...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentários </td></tr><tr><td> Placa de ágar sangue, sangue de carneiro 5% em Trypticase Soy ágar (TSA) </td><td> Diagnóstico Hardy </td><td> A10BX </td><td></td></tr><tr><td> Trypticase Soy Broth (TSB) </td><td> Becton Dickinson </td><td> 211825 </td><td></td></tr><tr><td> Agitando incubadora </td><td> Labnet </td><td> I5311-DS </td><td></td></tr><tr><td> Tubagem de polietileno </td><td> Becton Dickinson </td><td> 427401 </td><td></td></tr><tr><td> Introdutor de cateter </td><td> Becton Dickinson </td><td> 6999 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Isofluorance </td><td> Western Medical Suppy, Inc </td><td> 2147 </td><td> Siga as informações de segurança e manuseio </td></tr><tr><td> Instrumentos Cirúrgicos </td><td> Belas Ferramentas e Instrumentos de Pesquisa de Ciências Biomédicas, Inc. </td><td></td><td> Encontre os instrumentos das duas empresas para as suas necessidades </td></tr></tbody></table>

modelo experimental de endocardite resistente à meticilina<em&gt; staphylococcus aureus</em&gt; (mrsa) em rato

Experimental Endocarditis Model of Methicillin Resistant Staphylococcus aureus (MRSA) in Rat

Infecções endovasculares, incluindo endocardite, são fatais síndromes infecciosas 1-3. Staphylococcus aureus é a causa mais comum em todo o mundo dessas síndromes com morbidade e mortalidade inaceitavelmente elevada, mesmo com tratamentos adequados agente antimicrobiano 4-6. O aumento em infecções devidas a resistente à meticilina S. aureus (MRSA), as altas taxas de falhas vancomicina clínicas de tratamento e os problemas crescentes de linezolida e resistência à daptomicina tem tudo ainda mais complicada a gestão de pacientes com essas infecções, e levou a custos de saúde de elevada 7, 8. Além disso, deve salientar-se que os estudos mais recentes com os resultados do tratamento com antibióticos têm sido baseados em cenários clínicos e, portanto, pode muito bem ser influenciada por factores do hospedeiro variando de paciente para paciente. Portanto, um modelo animal de infecção relevante endovascular em que factores do hospedeiro são semelhantes a partir de animal para animal é maiscrucial para investigar patogénese microbiana, bem como a eficácia de novos agentes antimicrobianos. Endocardite em rato é um bem estabelecida modelo experimental animal que se aproxima endocardite humana nativa. Este modelo tem sido utilizado para examinar o papel de determinados factores de virulência de estafilococos e da eficácia dos regimes de tratamento com antibióticos para endocardite estafilocócica. Neste relatório, nós descrevemos o modelo de endocardite experimental devido à MRSA que poderia ser usado para investigar patogênese bacteriana e da resposta ao tratamento com antibióticos.

Endocardite modelo experimental de ratos devido à meticilina-resistente<em&gt; S. aureus</em&gt;.

Modelo Experimental de Endocardite resistente à meticilina<em&gt; Staphylococcus aureus</em&gt; (MRSA) em Rato

Infecções endovasculares, incluindo a endocardite, são síndromes infecciosas com risco de vida1-3. O Staphylococcus aureus é a causa mais comum em todo o mundo...

O objetivo geral deste procedimento é estabelecer um modelo experimental de endocardite infecciosa em ratos. Isso é realizado primeiramente cultivando aureus e preparando cateteres cirúrgicos para infecção. Em seguida, a área cirúrgica é preparada e o animal é anestesiado.Uma vez que o animal está anestesiado, um cateter é inserido pela artéria carótida direita em direção ao coração. O passo final é infectar os animais com aureus por injeção na veia caudal. Por fim, os tecidos-alvo são dissecados e preparados para cultura quantitativa.A principal vantagem desta técnica em relação aos métodos existentes, como um modelo rápido de endocardite, é que o modelo de endocardite vermelha pode ser utilizado com o sistema de imagem in vivo Ivus. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais no campo da patogênese oral, como a virulência e a eficácia de agentes antimicrobianos. Geralmente, indivíduos novos nesta técnica enfrentarão dificuldades porque o procedimento cirúrgico é desafiador.Primeiro, inocular um alça cheia de cultura de M SSA de um estoque congelado em um ágar de tripcaseína de sangue ovino. Incubar a cultura durante a noite a 37 graus Celsius em uma placa de ágar d

experimental-endocarditis-model-methicillin-resistant-staphylococcus

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

O modelo do rato de infarto agudo do miocárdio (IAM) é útil para estudar as consequências do enfarte do miocárdio sobre a função fisiológica e fisiopatológica cardíaca.

Infarto Agudo do Miocárdio em Ratos

Pele murina e modelo de infecção dos tecidos moles é utilizado para avaliar a função de virulência de Staphylococcus aureus resistente (MRSA) e as respostas imunológico do hospedeiro. Aqui, apresentamos um modelo de infecção subcutânea por infecção da pele e tecidos moles.

Infecção subcutânea de Staphylococcus aureus resistente (MRSA)

Streptococcus pneumoniae forma lesões microscópicas discretas e não purulentas no coração. Está delineado o protocolo para um modelo murino de formação de microlesões cardíacas. São fornecidas instruções sobre visualização de microlesões usando microscopia, discriminação entre microlesões precoces e tardias e métodos para detectar remodelação cardíaca em corações de animais convalescentes.

Visualização de<em&gt; Streptococcus pneumoniae</em&gt; Dentro Microle- cardíacas e remodelação cardíaca Subsequente

Um método para estabelecer infecções pulmonares em roedores imunocompetentes é descrito. Com proficiência, este método pode ser realizado de forma rápida e fácil para induzir infecção estável com muitos isolados de S. pneumoniae, H. influenzae, P. aeruginosa, K. pneumoniae e A. baumannii.

Um Modelo Pneumonia robusta em imunocompetentes Roedores para avaliar antibacteriano Eficácia contra<i&gt; S. pneumoniae</i&gt;,<i&gt; H. influenzae</i&gt;,<i&gt; K. pneumoniae</i&gt;,<em&gt; P. aeruginosa</em&gt; ou<em&gt; A. baumannii</em

Uma abordagem é descrita para a detecção em tempo real da resposta imune inata de ferimento cutâneo e Staphylococcus aureus infecção de ratos. Por LysM-EGFP comparando os ratos (que possuem fluorescentes neutrófilos) com um LysM-EGFP mestiços cepa de rato imunodeficientes, avançamos nossa compreensão da infecção e o desenvolvimento de abordagens para combater a infecção.

Um modelo do rato para avaliar a resposta imune inata à infecção de Staphylococcus aureus

O protocolo descreve um novo modelo in vivo de infecção de implante espinhal em camundongos, onde um implante de fio k de aço inoxidável é infectado com Staphylococcus aureus Xen36 bioluminescente. A carga bacteriana é monitorada longitudinalmente com imagens bioluminescentes e confirmada com contagens de unidades formadoras de colônias após a eutanásia.

Modelo in vivo de infecção de implante espinhal em camundongos

Aqui, apresentamos um modelo de endotoxina de terapia intensiva reprodutível em ratos.

Um modelo de endotoxina de unidade de terapia intensiva reprodutível em ratos

O modelo de isperfusão de isquessões miocárdicas de coração de rato é melhorado usando um retrátil auto-fabricado, tubo de cloreto de polivinil e um método único de nó. Os resultados de eletrocardiograma, cloreto de tripheniltetrazolium e coloração histológica, e os resultados de análise de sobrevivência percentual mostraram que o grupo modelo melhorado tem maior sucesso e taxas de sobrevivência do que o grupo modelo já existente.

Modelo de roedor melhorado de Isquemia do Miocárdio e Lesão de Reperfusão

Este trabalho apresenta um modelo animal de fibrose induzida pela transição endotelial-mesenquimal, como visto em defeitos cardíacos congênitos, como estenose aórtica crítica ou síndrome do coração esquerdo hipoplásico, que permite a avaliação histológica detalhada do tecido, a identificação de vias de sinalização regulatórias e o teste de opções de tratamento.

Modelo de Transplante Cardíaco Heterotópico Neonatal em Rato para Estudo da Transição Endotelial-Mesenquimal

Staphylococcus aureus (S. aureus) tem a capacidade de se disseminar por todo o corpo, causando infecções persistentes e recorrentes. Para melhor compreender esses processos, este estudo estabelece um modelo de infecção intracelular para S. aureus. Este modelo fornecerá uma base crucial para investigar os mecanismos por trás das infecções intracelulares.

Desenvolvimento e Avaliação de Modelos de Infecção Intracelular para Staphylococcus aureus

O presente protocolo descreve um modelo de camundongo que emprega implante dorsal subcutâneo para investigar infecções associadas ao implante, permitindo uma investigação abrangente dos mecanismos fisiopatológicos e apoiando o desenvolvimento de critérios diagnósticos com estratégias terapêuticas direcionadas.

Modelo animal de infecções associadas a implantes em camundongos

Aprenda a estabelecer um modelo experimental de endocardite infecciosa por MRSA em ratos. Este método utiliza cateteres cirúrgicos e injeção na veia da cauda para estudar patogênese e testar terapias antimicrobianas.

Modelo Experimental de Endocardite resistente à meticilina

Explorar mais vídeos