Name: Matriz Hibridização Genômica Comparativa (Array CGH) para a detecção de Genomic copiar o número de variantes (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 16 s
Description: Aprenda a técnica de hibridização genômica comparativa em array (aCGH) para detectar variantes de número de cópias em amostras de DNA de pacientes. Este método avançado substitui a cariotipagem tradicional e permite diagnosticar síndromes genéticas com alta precisão em laboratório clínico.

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Os autores não têm agradecimentos.

Reação 1. Rotulagem <ol><li> Antes de usar, dUTPs pré-aliquota de cianina 3 e 5 nucleótidos marcados, não marcados e iniciadores aleatórios para as concentrações recomendadas pelo fabricante em placas e armazenamento de 96 poços a -20 ° C prontas para utilização. Para efeitos do presente protocolo, alíquota de 10,5 mL da dUTP marcado adequado e 10,5 ul nucleotídeos não marcados e iniciadores aleatórios a cada poço. </li><li> Descongelar o prato pronto-para-uso de 96 poços de nucleótidos e os iniciadores a 4 ° C durante cerca de 1 hora, protegidas da luz. </li><li> Uma vez descongelado, esta placa equilibrar à temperatura ambiente durante pelo menos 30 minutos, ao abrigo da luz. </li><li> Equilibrar as amostras de ADN a 60 ° C durante pelo menos 15 min. </li><li> Usando um robot de tratamento de líquidos, dispensar a água livre de nuclease a cada poço de uma placa de 96 poços. NOTA: O volume de água dependerá da concentração de cada amostra de DNA de entrada e deve ser suficiente para resultar numa concentração final de 50 ng / ul. </li><li> Usando um líquido hanrobô dling, pipeta de 1 ug de ADN em um poço da placa de 96 poços (ver 1.5) para levar o volume total de 20 ul. NOTA: Pequenas quantidades de ADN pode ser usado, embora a qualidade de dados resultante pode ser comprometida (por preciosas amostras, as quantidades de ADN de entrada para baixo para 400 ng pode ser utilizado). </li><li> Usando um robot de tratamento de líquidos, transferir 20 ul de nucleótidos equilibradas e iniciadores em cada poço da placa de ADN diluída. </li><li> Selar a placa de 96 poços com tampas de tira (uma vedação estanque é importante). </li><li> Desnaturar o ADN a 99 ° C durante 10 min, em uma máquina PCR com uma tampa aquecida e em seguida, encaixe fresco em gelo durante 5 min a iniciadores recozimento. </li><li> Usando um tratamento robô líquido, adicione 10 ml de enzima polimerase Klenow Exo DNA para cada DNAs e mix pipeta completamente. NOTA: O volume total deve ser de 50 mL. </li><li> Selar a placa de 96 poços e incuba-se a 37 ° C durante 16 horas. NOTA: A incubação mais curto de 4 horas é suficiente, contudo, uma O / N emcubation pode ser mais conveniente. </li><li> Usando um robot de tratamento de líquidos, adicionam-se 5 ul de tampão de paragem a cada poço. NOTA: Um resumo dos reagentes utilizados para a reacção de marcação é mostrada na Tabela 1. </li></ol> 2. Remoção de não incorporados Nucleotides <ol><li> Remover nucleótidos não incorporados utilizando sílica-membrana baseado colunas de giro e um robô rotação processamento coluna dedicada (as colunas de spin também podem ser processados ​​manualmente). Siga as instruções do fabricante. <ol><li> Transferir o conteúdo de cada cavidade para um tubo de 2 mL; pré-label estes com bem IDs. NOTA: Este passo pode ser realizado manualmente ou de preferência através de um robô tratamento líquido. </li><li> Se estiver usando um robô processamento coluna de rotação, em seguida, coloque o robô com 2 ml tubos, colunas de giro de purificação de DNA e buffers associados. </li><li> Adicionar 250 ul de sal elevado, de ADN tampão de ligação (tampão de PB) para a reacção de marcação para ligar o ADN marcado com a sílicamembrana. </li><li> Remover as impurezas por lavagem da membrana, duas vezes com 500 ul de tampão de lavagem (tampão PE). </li><li> Adicionar 15 ul de tampão de eluição de sal baixo (tampão EB) para a membrana para recuperar o ADN purificado, marcado num volume de ~ 12 mL. </li></ol></li></ol> 3. Combinar pares HYB <ol><li> Combine os pares adequados de cyanine 3 e 5 DNA marcado, COT-1 DNA, um mix de bloqueio fornecido pelo fabricante e um tampão de hibridação fornecido pelo fabricante usando um robô de manipulação de líquidos. NOTA: Estes pares hyb pode ser um exemplo e uma referência, ou amostra vs amostra se CNVs compartilhada não são um problema (por exemplo, nós rotineiramente emparelhar amostras fenótipo-incompatíveis, como um paciente displasia renal vs um paciente craniossinostose, como eles são muito Não deve levar o mesmo CNV clinicamente significativo). Se utilizar um ADN de referência, é recomendado um fornecimento de ADN comercial, e que deve ser processado juntamente com a amostra. <ol><li> Usando um tratamento líquido robot, adicionar COT-1 DNA (3333 ng / mL), a mistura de bloqueio e de tampão de hibridação para cada poço de uma placa de 96 poços de modo a que cada poço contém 1,1 uL de ADN Cot-1, 4,95 ul mistura bloqueio e 24.75 fornecido pelo fabricante ul de tampão de hibridação. </li><li> Adicionar 9,35 mL da apropriada 3 cianina ADN marcado a cada poço. Pre-wet cada ponta para melhorar a pipetagem precisão. </li><li> Adicionar 9,35 mL da ADN cianina apropriado 5-marcado a cada poço. Pre-wet cada ponta para melhorar a pipetagem precisão. </li><li> Selar a placa de 96 poços e vortex durante 1 min. Girar a placa de 96 poços para recolher o conteúdo na parte inferior de cada poço. </li></ol></li></ol> 4. Hibridização <ol><li> Pré-aqueça um forno de hibridação a 65 ° C e Pré-aquecer um slide de apoio e uma câmara de hibridação para cada slide matriz. <ol><li> Desnaturar o ADN marcado em uma incubação pré-hibridação, antes de ser aplicável às matrizes. Realizar hibridação num forno rotativo durante 24 horas. </li><li> Incubar a placa de 96 poços a 70 ° C durante 30 min e, em seguida, deixar a 37 ° C durante pelo menos 5 min. </li><li> Trabalhando numa plataforma aquecida a 42 ° C, carregar cada lâmina apoio para uma câmara de hibridação, antes da utilização. Certifique-se que a parte transparente do slide junta alinha com a peça &#39;janelas&#39; da câmara de hibridação. </li><li> Pipet 42 mL da mistura de hibridação previamente preparado (ver secção 3) na posição apropriada na matriz backing slide. Pre-wet cada ponta para melhorar a pipetagem precisão. Pipet lentamente sobre o centro de cada posição, certificando-se que o líquido não toca o limite anel de borracha. </li><li> Uma vez que todas as posições no slide backing são preenchidos, abaixe cuidadosamente o slide matriz nele e montar a câmara de hibridação. Certifique-se de que o lado da matriz com a escrita sobre ele está voltado para o slide de apoio. Certifique-se de apertar o parafuso de câmara de hibridação totalmente. </li><li> Inspecione a câmara de hibridação montado. ENSure que não há vazamento de mistura de hibridação fora dos limites do anel de borracha e cada bolha de ar é de aproximadamente 4 mm de altura quando a câmara de hibridação é descansou em sua vertical. Gire a câmara de hibridação e verifique se não há bolhas de ar que estão presas na posição e não em movimento. Se houver algum destes sintomas, a câmara de dar uma pancada no banco. Verifique se todas as bolhas de ar estão se movendo. </li><li> Coloque a câmara de hibridação para o forno rotativo, a 65 ° C durante 24 horas. Verifique se o rotor forno é equilibrada; utilizar outras câmaras vazias, se necessário. </li></ol></li></ol> 5. Lavar e Digitalização de Slides <ol><li> Lave matrizes para remover o excesso de DNA marcado e depois digitalizar para medir a fluorescência de cada sonda. <ol><li> Tome câmaras de hibridação fora do forno e desmontar. A matriz ea junta slides serão coladas; submergir estes em tampão de lavagem 1 e usar um par de plástico, pinça plana gumes para erguer-los. </li><li> DiScard o slide junta e coloque a lâmina matriz em um rack submerso em tampão 1. </li><li> Lava-se a lâmina de matriz em ~ 700 ml de tampão de lavagem fresca para 1 5 minutos, agitando vigorosamente (usar um pulgas e um agitador magnético). </li><li> Transferir as lâminas de matriz para tampão de lavagem ~ 700 ml 2 e lavar durante 90 segundos, mexendo vigorosamente. Levante cuidadosamente as lâminas de matriz fora de tampão de lavagem 2, eles devem emergir seco. </li><li> Carregue a lâmina matriz em um suporte de slides do scanner, usando um protetor de slide. Coloque o slide no scanner matriz e digitalizar seguindo as instruções do fabricante do array. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Miller, D. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Consensus+statement%3A+chromosomal+microarray+is+a+first-tier+clinical+diagnostic+test+for+individuals+with+developmental+disabilities+or+congenital+anomalies%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Hum.+Genet%22%5BJournal%5D)">Consensus statement: chromosomal microarray is a first-tier clinical diagnostic test for individuals with developmental disabilities or congenital anomalies.</a> Am. J. Hum. Genet. 86, 749-764 (2010).</li>
<li>Ahn, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Array+CGH+as+a+first+line+diagnostic+test+in+place+of+karyotyping+for+postnatal+referrals+-+results+from+four+years%27+clinical+application+for+over+8%2C700+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cytogenet%22%5BJournal%5D)">Array CGH as a first line diagnostic test in place of karyotyping for postnatal referrals - results from four years' clinical application for over 8,700 patients.</a> Mol. Cytogenet. 6 (16), 1755-8166 (2013).</li>
<li>Ahn, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Validation+and+implementation+of+array+comparative+genomic+hybridisation+as+a+first+line+test+in+place+of+postnatal+karyotyping+for+genome+imbalance%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cytogenet%22%5BJournal%5D)">Validation and implementation of array comparative genomic hybridisation as a first line test in place of postnatal karyotyping for genome imbalance.</a> Mol. Cytogenet. 3 (9), 1755-8166 (2010).</li>
<li>Beaudet, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+utility+of+chromosomal+microarray+analysis+in+developmental+and+behavioral+pediatrics%5BTitle%5D)+AND+%22Child+Dev%22%5BJournal%5D)">The utility of chromosomal microarray analysis in developmental and behavioral pediatrics.</a> Child Dev. 84, 121-132 (2013).</li>
<li>Park, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+implementation+of+whole-genome+array+CGH+as+a+first-tier+test+in+5080+pre+and+postnatal+cases%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cytogenet%22%5BJournal%5D)">Clinical implementation of whole-genome array CGH as a first-tier test in 5080 pre and postnatal cases.</a> Mol. Cytogenet. 4, 12(2011).</li>
<li>Iafrate, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+large-scale+variation+in+the+human+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Genet%22%5BJournal%5D)">Detection of large-scale variation in the human genome.</a> Nat. Genet. 36, 949-951 (2004).</li>
<li>Redon, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+variation+in+copy+number+in+the+human+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Global variation in copy number in the human genome.</a> Nature. 444, 444-454 (2006).</li>
<li>Cafferkey, M., Ahn, J. W., Flinter, F., Ogilvie, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotypic+features+in+patients+with+15q11.2%28BP1-BP2%29+deletion%3A+Further+delineation+of+an+emerging+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Med.+Genet.+A%22%5BJournal%5D)">Phenotypic features in patients with 15q11.2(BP1-BP2) deletion: Further delineation of an emerging syndrome.</a> Am. J. Med. Genet. A. 164, 1916-1922 (2014).</li>
<li>Molin, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+microdeletion+syndrome+at+3q13.31+characterised+by+developmental+delay%2C+postnatal+overgrowth%2C+hypoplastic+male+genitals%2C+and+characteristic+facial+features%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Med.+Genet%22%5BJournal%5D)">A novel microdeletion syndrome at 3q13.31 characterised by developmental delay, postnatal overgrowth, hypoplastic male genitals, and characteristic facial features.</a> J. Med. Genet. 49, 104-109 (2012).</li>
<li>Tropeano, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Male-biased+autosomal+effect+of+16p13.11+copy+number+variation+in+neurodevelopmental+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Male-biased autosomal effect of 16p13.11 copy number variation in neurodevelopmental disorders.</a> PLoS One. 8, e61365(2013).</li>
<li>Bon, B. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Further+delineation+of+the+15q13+microdeletion+and+duplication+syndromes%3A+a+clinical+spectrum+varying+from+non-pathogenic+to+a+severe+outcome%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Med.+Genet%22%5BJournal%5D)">Further delineation of the 15q13 microdeletion and duplication syndromes: a clinical spectrum varying from non-pathogenic to a severe outcome.</a> J. Med. Genet. 46, 511-523 (2009).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

Matriz CGH não vai detectar rearranjos equilibrados ou anormalidades ploidy como triploidy. Além disso, o baixo nível de desequilíbrios do mosaico não pode ser detectado. No entanto, array CGH tem uma resolução maior para a detecção CNV de análise cromossômica G-unida qual substituiu em muitos laboratórios de citogenética. É, por conseguinte, o padrão de ouro para detecção de corrente de CNV de todo o genoma. Ele pode ser substituído por tecnologias de sequenciamento de próxima geração no futuro, mas atualmente, seus cu...

Ficou conhecido por muitos anos que deleções ou cópias extras de segmentos cromossômicos causam deficiência intelectual, dismorfismo e malformações congentical e, em alguns casos, causar síndromes genéticas 1. No entanto, a única tecnologia disponível até meados dos anos 2000 para a detecção de todo o genoma dessas mudanças foi G-unida análise cromossômica, que tem uma resolução de cerca de 5-10Mb, dependendo da região e da natureza do problema, e que não pode detectar cromossomas anormais onde o material foi substituída por uma região de um cromossoma diferente, com o mesmo padrão de bandas. Técnicas de citogenética auxiliares, tais como hibridização fluorescente in situ e multiplex amplificação sonda específica para a ligação ter sido disponível para o interrogatório de loci específico, em casos de suspeita de desequilíbrio sindrômica específico, mas não foi até a introdução da matriz de hibridização genômica comparativa (array CGH) na rotina clínica de diagnóstico service 2-5 que a detecção de todo o genoma do número de cópias variantes (CNVs) tornou-se possível a um grande aumento da resolução (normalmente em torno de 120kb). Trabalho de serviço clínico ao lado de estudos de pesquisa têm mostrado que CNVs para algumas regiões são mais prevalentes na população normal de 6-7, ao passo que outros CNVs, anteriormente indetectável, estão associados com neurodisabilities como o autismo e epilepsia 8-11. O protocolo descrito neste documento é utilizado em nosso UK National Health Service (NHS) laboratório de diagnóstico clínico; usamos novas estratégias de hibridização, ensaios de lotes e robótica para minimizar o custo neste serviço financiado pelo Estado. Antes de o protocolo detalhado abaixo, o ADN de alta qualidade devem ser extraídos a partir do material de partida apropriado, vulgarmente sangue, células de cultura ou amostras de tecido. Espectrofotometria pode ser utilizado para medir a concentração (deve ser&gt; 50 ng / ul) e vá 260: 280 razão de absorvância (b deveme 1,8-2,0). A electroforese em gel pode ser usado para verificar que o ADN é de elevado peso molecular sem degradação significativa. Este protocolo é projetado para laboratórios de maior rendimento que estão rotulando 96 amostras por execução usando a robótica automatizados de movimentação de líquidos. No entanto, ele pode ser adaptado para laboratórios de rendimento inferiores sem automação.

<table><tbody><tr><td>Microarray CGH 8 x 60K</td><td>Agilent</td><td>G4126</td><td></td></tr><tr><td>Array CGH tampões de lavagem</td><td>Agilent</td><td>5188-5226</td><td></td></tr><tr><td>Array CGH hibridização Buffer</td><td>Agilent</td><td>5188-5380</td><td></td></tr><tr><td>Minelute kit de purificação</td><td>Qiagen</td><td>28006</td><td></td></tr><tr><td>Array CGH kit de rotulagem</td><td>Enzo</td><td>ENZ-42672-0000</td><td></td></tr></tbody></table>

matriz hibridização genômica comparativa (array cgh) para a detecção de genomic copiar o número de variantes

Array Comparative Genomic Hybridization (Array CGH) for Detection of Genomic Copy Number Variants

Array CGH para a detecção de variantes do número de cópias genômicas substituiu a análise do cariótipo com banda G. Este artigo descreve a tecnologia e sua aplicação em um laboratório de serviço de diagnóstico clínico. O DNA extraído da amostra de um paciente (sangue, saliva ou outros tipos de tecido) é marcado com um fluorocromo (cianina 5 ou cianina 3). Uma amostra de DNA de referência é marcada com o fluorocromo oposto. Segue-se uma etapa de limpeza para remover nucleotídeos não incorporados antes que os DNAs marcados sejam misturados e ressuspensos em um tampão de hibridização e aplicados a uma matriz composta por ~ 60.000 sondas de oligonucleotídeos de loci em todo o genoma, com alta densidade de sonda em áreas clinicamente importantes. Após a hibridização, as matrizes são lavadas, depois digitalizadas e as imagens resultantes são analisadas para medir a fluorescência vermelha e verde para cada sonda. O software é usado para avaliar a qualidade de cada medição de sonda, calcular a proporção de fluorescência vermelha para verde e detectar possíveis variantes do número de cópias.

Cada sonda numa matriz hibridado é visualizado como uma mistura de vermelho e verde fluorocromos (ver Figura 1). A relação do vermelho ao sinal verde fluorescente para cada sonda é quantificado pelo scanner e software associado traça estes como rácios log2 acordo com sua posição genômica, e identifica regiões abrangidas limites predefinidos fora. Os traços da matriz resultantes permitem a interpretação de regiões identificadas como genomicamente desequilibrado. Por exemplo, o rastreio a partir de uma cr...

Matriz CGH para a detecção de variantes do número de cópia genômicas substituiu análise do cariótipo G-unida. Este artigo descreve a tecnologia e sua aplicação em um laboratório de serviço de diagnóstico.

Matriz Hibridização Genômica Comparativa (Array CGH) para a detecção de Genomic copiar o número de variantes

Array CGH for the detection of genomic copy number variants has replaced G-banded karyotype analysis. This paper describes the technology and its ...

O objetivo geral deste procedimento é realizar a hibridização genômica comparativa para identificar desequilíbrios no genoma que podem levar a uma grande variedade de doenças genéticas. Isso é realizado primeiramente marcando o DNA do paciente com um corante fluorescente. Na segunda etapa, o DNA do paciente e um DNA de referência marcado de forma diferente são hibridizados ao arranjo.Em seguida, o arranjo é escaneado para medir a quantidade de DNA do paciente e do referência ligada a cada sonda. Na etapa final, a imagem escaneada é processada para identificar as regiões do genoma onde o DNA do paciente possui mais ou menos material do que o DNA de referência no arranjo final. A hibridização genômica comparativa é utilizada para determinar se o paciente possui uma variante no número de cópias que resulta em uma síndrome genética.A demonstração visual deste método é essencial, pois a montagem da lâmina do arranjo pode ser difícil e é fácil ocorrer vazamento da hibridização. Misture o conteúdo derramado para fora da câmara antes de iniciar a reação de marcação. Deixe descongelar a placa de 96 poços pronta para uso, contendo nucleotídeos e iniciadores, a quatro graus Celsius e protegida da luz por cerca de uma hora.Uma vez descongelado, equilibre a placa tampada por mais 30 minutos à temperatura ambiente; neste mesmo período, equilibre as amostras de DNA por 15 minutos a 60 graus Celsius. Enquanto as amostras estão aquecendo, use um robô de manipulação líquida para dispensar água livre de nucleases suficiente em cada poço de uma nova placa de 96 poços. Em seguida, quando o DNA estiver pronto, transfira um micrograma da amostra por poço para a placa de 96 poços contendo água.Agora, transfira 20 microlitros dos nucleotídeos e iniciadores em equilíbrio para cada poço da placa contendo as amostras de DNA diluído e sela a placa com tampas em tira, tomando cuidado para garantir um selamento hermético. Em seguida, desnature o DNA a 99 graus Celsius em uma máquina de PCR com tampa aquecida após 10 minutos e hibride os iniciadores mediante resfriamento rápido da placa em gelo por cinco minutos. Depois, utilize o robô de manipulação líquida para adicionar 10 microlitros da enzima polimerase DNA exo clean out a cada amostra.Misture as amostras com pipeta e, em seguida, feche e incube a placa a 37 graus Celsius por 16 horas. No dia seguinte, interrompa a reação com cinco microlitros de tampão de parada por poço. Em seguida, remova os nucleotídeos não incorporados. Transfira o conteúdo de cada poço para tubos individuais pré-rotulados de dois mililitros.Carregue as amostras e as colunas de centrifugação para purificação de DNA em um robô processador de colunas de centrifugação, bem como os tampões associados apropriados. De acordo com as instruções do fabricante, o robô processador de colunas de centrifugação ligará o DNA marcado à membrana de sílica com 250 microlitros de tampão de ligação de DNA de alta salinidade por tubo, após o que as impurezas serão removidas das membranas com duas lavagens de 500 microlitros de tampão de lavagem cada. Em seguida, o robô adicionará 15 microlitros de tampão de solução de baixa salinidade às membranas para recuperar as amostras de DNA marcado purificado em volumes aproximados de 12 microlitros para hibridização das amostras.A seguir, pré-aqueça um forno de hibridização a 65 graus Celsius e aqueça previamente as lâminas de suporte e as câmaras de hibridização. Para preparar a mistura de hibridização, combine 1,1 microlitros de DNA cot-1, 4,95 microlitros da mistura bloqueadora fornecida pelo fabricante e 24,75 microlitros do tampão de hibridização. Utilize o robô de manipulação líquida para distribuir esta mistura em cada poço de uma nova placa de 96 poços, umedecendo previamente cada ponteira para aumentar a precisão da transferência.A seguir, pipete 9,35 microlitros do DNA marcado apropriado com sinalização três, seguido por 9,35 microlitros do DNA marcado apropriado com sinalização cinco. Sobre cada poço, feche a placa, centrifugue as amostras por um minuto e dê uma breve centrifugação rápida para recolher o conteúdo no fundo de cada poço. Desnaturar o DNA marcado em um incubador de pré-hibridização.Primeiro por três minutos a 95 graus Celsius, seguido por 30 minutos a 37 graus Celsius. Em seguida, trabalhe em uma plataforma aquecida a 42 graus Celsius. Coloque a lâmina de apoio na câmara de hibridização, garantindo que a parte transparente da junta esteja alinhada com a parte janelada da câmara de hibridização usando ponteiras pré-umedecidas.Agora, pipete lentamente 42 microlitros da mistura de hibridização no centro da posição apropriada da lâmina suporte da matriz, tomando cuidado para que o líquido não toque a borda do anel de borracha. Após preencher todas as posições, abaixe cuidadosamente a lâmina da matriz sobre a lâmina suporte e monte a câmara de hibridização.Certifique-se de que o lado do arranjo com a escrita esteja voltado para a lâmina de suporte, em seguida aperte completamente o parafuso da câmara de hibridização e inspecione a câmara montada, confirmando que não há vazamento de hibridização fora dos limites do anel de borracha e que cada bolha de ar tenha aproximadamente quatro milímetros de altura. Quando a câmara de hibridização estiver apoiada verticalmente em sua extremidade, gire-a para verificar isso.Todas as bolhas de ar em cada posição estão se movendo. Se alguma das bolhas estiver presa, dê uma leve batida firme na câmara sobre a bancada. Em seguida, coloque as câmaras de hibridização na estufa rotativa a 65 graus Celsius por 24 horas.No dia seguinte, mergulhe as câmaras de hibridização no tampão de lavagem um e use um par de pinças plásticas de borda plana para separar as lâminas. Em seguida, descarte as lâminas com juntas e coloque as lâminas do arranjo em uma grade submersa em tampão fresco um. Lave as lâminas do arranjo em aproximadamente 700 mililitros de tampão de lavagem por um a cinco minutos, agitando vigorosamente com um agitador magnético e um ímã em forma de pulga.Em seguida, transfira as lâminas do arranjo para cerca de 700 mililitros de tampão de lavagem, duas vezes por 90 segundos, com agitação mais vigorosa ao final da segunda lavagem. Levante cuidadosamente as lâminas do arranjo do tampão. Elas devem emergir secas.Em seguida, carregue as lâminas do arranjo nos porta-lâminas do escâner juntamente com os protetores de lâmina e, depois, escaneie as amostras. De acordo com as instruções do fabricante do arranjo, cada sonda em um arranjo hibridizado é visualizada como uma mistura de fluorocromos vermelho e verde. As proporções entre o sinal fluorescente vermelho e verde para cada sonda são quantificadas pelo escâner e o software associado as registra como logaritmos na base dois, de acordo com sua posição genômica.Os traçados da matriz resultante permitem a interpretação de regiões identificadas como geneticamente desbalanceadas. Por exemplo, neste traçado de uma criança com síndrome de Williams, uma síndrome de microdeleção recorrente mediada por repetições de baixa cópia na região proximal do cromossomo sete, o desequilíbrio genômico foi identificado pelo software com uma linha vermelha. A razão logarítmica fluorescente proporcional deve agrupar-se próximas a zero, indicando uma razão verde para vermelho de um para um em regiões normais do genoma.Rastos em arranjo disperso, como observados nesta varredura, podem resultar em chamadas imprecisas de regiões anormais, ou na falha na identificação do desequilíbrio genômico, e podem ser causados por diversos fatores, incluindo baixa qualidade do DNA ou a presença de raios, níveis de ozônio na esfera atmosférica. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como processar amostras de pacientes para teste por A CGH e produzir dados de boa qualidade para análise posterior e detecção de variações no número de cópias.

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JoVE Journal

Biology

Biologia

Este vídeo é uma demonstração técnica do protocolo de hibridização para todo o genoma azulejos caminho disposição CGH, que escaneia todo o genoma humano usando apenas 25-100 ng de DNA que podem ser isoladas a partir de uma variedade de fontes, incluindo o material de arquivo formol fixa.

Demonstração de técnicas Whole Genome hibridização genômica comparativa de matriz

Este artigo descreve a seleção de sondas adequadas para uma única célula FISH, técnicas de espalhamento de núcleos de blastômeros, e hibridização in situ e marcando sinal, aplicada ao diagnóstico genético pré-implantação (PGD) em um ambiente clínico.

FISH para diagnóstico pré-implantação Genética

Periventricular nodular heterotopia (PNH) é a forma mais comum de malformação do desenvolvimento cortical (MCD) na idade adulta, mas sua base genética permanece desconhecida em casos mais esporádicos. Recentemente desenvolvemos uma estratégia para identificar genes candidatos romance para MCDs e confirmar diretamente seu papel causal em vivo.

Uma nova estratégia combinando Array-CGH, todo-exome sequenciamento e eletroporação no Utero em roedores para identificar Genes causadores de malformações do cérebro

sequenciamento de uma única célula é uma ferramenta cada vez mais popular e acessível para lidar com alterações genômicas em alta resolução. Nós fornecemos um protocolo que utiliza a sequenciação de célula única para identificar alterações no número de cópias em células individuais.

Detecção de Copy Number Alterações Usando Sequencing única célula

Este protocolo fornece etapas experimentais e informações sobre os reagentes, equipamentos e ferramentas de análise para pesquisadores interessados na realização de análise de hibridação genômica comparativa baseada em array (CGH) do genoma inteiro das variações números de cópia em plantas.

Uma plataforma array de hibridização genômica comparativa para detecção eficiente de variações no número de cópias em Medicago truncatula mutantes induzidos por nêutrons rápidos

Este manuscrito descreve a análise de variação número da cópia realizada em DNA de soro ou plasma utilizando a abordagem PCR em tempo real. Este método é adequado para a previsão da resistência a drogas em pacientes com câncer de próstata resistente a castração, mas poderia ser informativo também para outras doenças.

Soro e Plasma cópia número deteção usando PCR em tempo real

O manuscrito descreve um ensaio PCR digital baseada no chip para detectar uma rara variante de CDH1 transcrição (CDH1a) em normal fresco congelado e tecidos de tumor obtidos de pacientes com câncer gástrico.

Deteção de uma variante de transcrição raro CDH1 em tecidos de câncer gástrico fresco congelado pelo PCR Digital baseada em Chip

Uma biblioteca CRISPR/sgRNA aplicou-se para interrogar os genes codificantes de proteínas. No entanto, a viabilidade de uma biblioteca de sgRNA para descobrir a função de um limite CTCF na regulação gênica permanece inexplorada. Aqui, descrevemos uma biblioteca de sgRNA específico de loci HOX para elucidar a função dos limites CTCF HOX loci.

HOX Loci Focused CRISPR/sgRNA biblioteca rastreio identificando crítico CTCF limites

Aqui, descrevemos um procedimento para análise genoma de metilação de DNA em cânceres gastrointestinais. O procedimento é de relevância para estudos que investigam relações entre padrões de metilação de genes e fatores que contribuem para a carcinogênese em cânceres gastrointestinais.

Análise genoma-em todo o DNA da metilação de DNA no câncer gastrointestinal

O protocolo apresenta os procedimentos gerais em laboratório necessários em testes genéticos pré-implantação para aneuploide em uma plataforma de sequenciamento de próxima geração baseada em semicondutores. Aqui apresentamos as etapas detalhadas de amplificação completa do genoma, seleção de fragmentos de DNA, construção de bibliotecas, preparação de modelos e sequenciamento do fluxo de trabalho com resultados representativos.

Teste genético pré-implantação para aneuploidia em uma plataforma de sequenciamento de próxima geração baseada em semicondutores

Este protocolo descreve um fluxo de trabalho de sequenciamento de próxima geração automatizado e credenciado pela ISO15189 para detectar alterações genômicas direcionáveis em tecidos embebidos em parafina fixados em formalina de câncer de pulmão de células não pequenas (NSCLC).

Detecção de alterações direcionáveis no câncer de pulmão de células não pequenas usando sequenciamento de última geração

Aprenda a técnica de hibridização genômica comparativa em array (aCGH) para detectar variantes de número de cópias em amostras de DNA de pacientes. Este método avançado substitui a cariotipagem tradicional e permite diagnosticar síndromes genéticas com alta precisão em laboratório clínico.

Matriz Hibridização Genômica Comparativa (Array CGH) para a detecção de Genomic copiar o número de variantes

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