Name: Formação Automated Lipid bicamada da membrana Usando um polidimetilsiloxano Thin Film (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 23 s
Description: Aprenda a formação automatizada de bicamadas lipídicas usando filmes finos de polidimetilsiloxano. Este método reproduzível forma membranas em menos de uma hora, facilitando estudos de interações proteína-membrana em nanobiosensores.

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Este trabalho foi apoiado pelo Programa do Centro de Pesquisa Pioneiro (NRF-2012-0009575) e Subsídios da Fundação Nacional de Pesquisa (NRF-2012R1A1B4002413, NRF-2014R1A1A2059341) da Fundação Nacional de Pesquisa da Coreia. Este trabalho também foi parcialmente apoiado pela Bolsa de Pesquisa da Universidade de Inha.

1. Preparação de Soluções <ol><li> Preparação de solução tampão: <ol><li> Para formular uma solução tampão, dissolve-se 1 M de KCl (cloreto de potássio), Tris-HCl 10 (Tris-hidrocloreto), e 1 mM de EDTA (ácido etilenodiaminotetraacético) em água destilada e ajustar o pH a 8,0. </li><li> Filtrar a solução através de um filtro de 0,20? M. Para esterilizar, autoclave a solução a 121 ° C durante 15 min. </li></ol></li><li> Preparação da solução de lípidos para a pré-pintura: <ol><li> Para formular a solução de lípido para pré-pintura, dissolver 3% DPhPC (1,2-diphytanoyl--sn-glicero-3-fosfatidilcolina) lípido (w: v) numa mistura de 2: 8 e n -decano hexadecano (v: v). Agita-se durante a noite utilizando um rotor. </li></ol></li><li> Preparação da solução de lipidos para a formação da membrana: <ol><li> Para formular a solução de lipidos para a formação da membrana, dissolver 0,1% DPhPC (1, 2-sn-glicero diphytanoyl--3-fosfatidilcolina) lípido (w: v) numa mistura de 2: 8 squalene e hexadecano (v: v). Agita-se durante a noite utilizando um rotor. </li></ol></li></ol> 2. Formação de um PDMS Thin Film <ol><li> Misture PDMS e agente de cura numa proporção de 9: 1 (w / w) em um copo de mistura de modo a formar o pré-polímero de PDMS. Adicionar 5 g de pré-polímero de PDMS para uma placa de Petri de modo a formar o PDMS película fina (espessura de 200-250 um). Espalhe PDMS pré-polímero utilizando um revestidor de centrifugação a 800 rpm durante 10 segundos para formar uma película fina. </li><li> Colocar a placa de Petri num exsicador de vácuo a uma pressão de 100 mTorr durante 2 h, para remover as bolhas de ar. Para a polimerização a película fina de pré-polímero, cozer num forno durante 5 horas a 70 ° C. </li><li> A fim de fazer um PDMS quadrados de película fina, cortar a película fina PDMS polimerizado em 2 x 2 cm, 2 quadrados. Usar um 500 um micro punção, para se fazer uma abertura no centro do PDMS de película fina. Aberturas pré-pintura com solução DPhPC lípido A 3% misturada em 2: 8 decano n- e hexadecano. </li></ol> 3. Fabricação Câmara e Assembly <ol><li> Para fabricar a câmara de BLM, design dois blocos simétricos da câmara usando o software de desenho 3D com dimensões exteriores de 4 cm x 1,5 cm x 1 cm e dimensões internas poços de 1,5 cm x 1,3 cm x 0,8 cm 17. </li><li> Criar a câmara usando um bloco de PTFE com uma máquina CNC e siga as instruções do fabricante. </li></ol> 4. Conjunto de câmara <ol><li> Para montar a câmara, colocar a película fina pré-pintado-PDMS entre os dois blocos de PTFE de modo a que a abertura na película fina PDMS é alinhado com o orifício na câmara. </li><li> Selar as bordas exteriores da câmara utilizando uma tampa de vidro com massa (facilitando a observação óptica). Imobilizar a câmara montada utilizando parafusos e porcas. NOTA: Certifique-se de que a câmara for bem fechados para que não haja vazamento de líquido. </li></ol> 5. Formação de membrana Precursor com Formação Acelerada de auto-montagem (EMA) <ol><li> Com uma pipeta, depositar 0,5ul de 0,1% de lípidos DPhPC misturado em 2: 8 n -decano: hexadecano para a abertura do PDMS de película fina montado com a câmara. </li><li> Antes de utilizar, guardar a câmara num congelador ou frigorífico abaixo de 10 ° C. </li></ol> 6. formação da membrana e Verificação <ol><li> Para formar um BLM com MPES, retirar da câmara a partir do frigorífico e suspender a 2 ml de solução de tampão em cada lado da câmara. Defina a câmara de lado por &lt;10 min até o precursor membrana congelada descongela. </li><li> Coloque a câmara para um micromanipulador para controlar com precisão a elevação com respeito à fonte de luz e ao microscópio. Iluminar um dos lados da câmara, como uma fonte de luz, utilizando um halogéneo iluminador de fibra óptica para iluminar a abertura do PDMS de película fina de observação óptica do processo de formação de BLM. </li><li> Por outro lado, coloque um microscópio digital verticalmente com respeito à fonte de luz para observar a formação de BLM (ampliar por 200 X). </li><li> Para confirmar a formação BLM, observar o centro da abertura, onde a cor torna-se mais brilhante do que o anel. </li></ol> 7. gravação elétrica <ol><li> Para a medição elétrica, preparar eletrodos Ag / CL usando um fio de prata 208 um de espessura e água sanitária em hipoclorito de sódio para&gt; 1 min. Colocar os eléctrodos de Ag / CL em cada lado da câmara a uma profundidade suficiente para ser mergulhado na solução tampão. </li><li> Ligue os eléctrodos ao amplificador de microeletrodos. Utilizando software de electrofisiologia, aplicar uma forma de onda triangular mV ± 10 através da membrana para adquirir uma onda quadrada. Definir a aplicação de tensão, clicando nas setas indicadas na V_clamp (mV). </li><li> Grave as propriedades elétricas da membrana, clicando no botão de registro (ícone de ponto vermelho). Prosseguir com a gravação até que uma onda quadrada uniforme é observada. Saia a gravação clicando no ícone quadrado preto. </li></ol> 8. Ion Canal Incorporação NÃOE: Um gramicidina (GA) incorporação ocorre espontaneamente quando da formação de BLM, como GA é adicionado directamente à solução de lípido. <ol><li> Para observar as actividades de canal Ga, aplicam-se 100 mV através da membrana a uma taxa de amostragem de 5 kHz para medir o potencial de membrana que prende. Definir a aplicação de tensão, clicando nas setas indicadas na V_clamp (mV). </li><li> Grave as propriedades elétricas da incorporação gA clicando no botão de registro (ícone de ponto vermelho). Continuar a gravação até saltos atuais é observado. Saia a gravação clicando no ícone quadrado preto. </li><li> Após a aquisição de dados elétricos, filtrar os dados com um filtro passa-baixa Bessel a 100 Hz usando um software de eletrofisiologia. </li><li> Observe saltos atuais na exploração dos dados potenciais filtrada (cada salto atual, ~ 0,15 NS, representa dimerização de um canal iônico GA) para verificar gA incorporação. </li></ol>

<ol><li>Hanke, W., Schulue, W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHanke%2C+W+%22Planar+lipid+bilayers%3A+methods+and+applications%22">Planar lipid bilayers: methods and applications</a>. , Academic Press. (2012).</li>
<li>Mirzabekov, T. A., Silberstein, A. Y., Kagan, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+planar+lipid+bilayer+membranes+for+rapid+screening+of+membrane+active+compounds%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Use of planar lipid bilayer membranes for rapid screening of membrane active compounds.</a> Methods Enzymol. 294, 661-674 (1999).</li>
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<li>Windholz, M., Budavari, S., Stroumtsos, L. Y., Fertig, M. N. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWindholz%2C+M+%22The+Merck+index.+An+encyclopedia+of+chemicals+and+drugs%22">The Merck index. An encyclopedia of chemicals and drugs</a>. , Merck & Co. (1976).</li>
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<li>Miller, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Open-state+substructure+of+single+chloride+channels+from+Torpedo+electroplax%5BTitle%5D)+AND+%22Philos.+Trans.+R.+Soc.+Lond.+B.+Biol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Open-state substructure of single chloride channels from Torpedo electroplax.</a> Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 299 (1097), 401-411 (1982).</li>
<li>Benz, R., Frohlich, O., Lauger, P., Montal, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrical+capacity+of+black+lipid+films+and+of+lipid+bilayers+made+from+monolayers%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">Electrical capacity of black lipid films and of lipid bilayers made from monolayers.</a> Biochim. Biophys. Acta. 394 (3), 323-334 (1975).</li>
<li>Priel, A., Gil, Z., Moy, V. T., Magleby, K. L., Silberberg, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ionic+requirements+for+membrane-glass+adhesion+and+giga+seal+formation+in+patch-clamp+recording%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Ionic requirements for membrane-glass adhesion and giga seal formation in patch-clamp recording.</a> Biophys. J. 92 (11), 3893-3900 (2007).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

Nossa técnica de formação de BLM fornece uma ferramenta poderosa para estudos de membranas celulares e canais iônicos, em contraste com as técnicas convencionais que têm potencial limitado para uso industrial. Desenvolvemos um precursor de membrana usando um filme fino PDMS e criamos um precursor de membrana congelada com automontagem acelerada.
Ao contrário dos métodos convencionais de formação de membranas com filmes hidrofóbicos, onde a formação de membranas ocorre apenas por meio de intera...

Artificial membrana bicamada lipídica, ou membrana lipídica preto (BLM), é uma ferramenta importante para a elucidação mecanismos de membranas celulares e canais iônicos, bem como para compreender as interacções entre canais de íons e íons / moléculas 1-7 Embora o método de patch-clamp. é muitas vezes considerado o padrão ouro para estudos da membrana celular, é trabalhoso e requer operadores altamente qualificados para medições de canais de íons. 8 enquanto membranas bicamada lipídica artificialmente reconstituídos surgiram como ferramentas alternativas para estudos de canais iônicos, 9,10 eles também estão associados com laboriosa processos e conhecimentos específicos. Além disso, as membranas são susceptíveis a perturbações mecânicas. Aplicações práticas, portanto, tecnologias bicamada lipídica introduzidas até à data têm limitado. 11 A fim de aumentar a robustez e a longevidade das membranas de bicamada lipídica, Costello et al. 12, e IDE e Yanagida <sup&gt; 13 criaram uma bicamada lipídica free-standing apoiado por hidrogéis. Apesar da longevidade aumentada no entanto (&lt;24 horas), bicamada robustez não melhorou. Jeon et al. 14 inventou uma membrana de hidrogel encapsulado (HEM), com íntimo contato bicamada lipídica hidrogel-, resultando em longevidade aumentada (até vários dias). Para aumentar ainda mais o tempo de vida da bainha, Malmstadt e Jeon et al. Criada uma membrana encapsulado-hidrogel com ligação hidrogel-lípido através in situ covalente conjugação (cgHEM). 15 Em ambos os sistemas, tempos de vida da membrana aumentou substancialmente (&gt; 10 dias) . No entanto, os sistemas de formação de membrana não eram suficientemente robustos, e não pode ser armazenado ou entregue quando necessário para libertar experiência para o uso das bicamadas lipídicas. O desenvolvimento de uma plataforma de bicamada lipídica tem girado principalmente em torno crescente robustez e longevidade da MBL. Embora a longevidade de MBL tem sido substantially reforçada recentemente, as respectivas candidaturas foram limitadas devido à falta de transportabilidade e capacidade de armazenamento. Para superar esses problemas, Jeon et al. Criado um sistema de membrana armazenável e introduziu um precursor de membrana (MP). 16 Para construir uma MP, eles prepararam uma mistura de decano n- e hexadecano contendo 3% DPhPC (1,2-diphytanoyl- sn-glicero-3-fosfatidilcolina) para controlar o ponto de congelação da solução de lípido tal ordem que não congele a ~ 14 ° C (abaixo da temperatura ambiente, acima da temperatura do típico frigorifico). Nesta experiência, o PM foi espalhada sobre uma abertura pequena em um filme de politetrafluoroetileno (PTFE) e subsequentemente congelado num frigorífico a 4 ° C. Quando o PM foi levada até à temperatura ambiente, a MP descongeladas e uma bicamada de lípido foi formado automaticamente, eliminando a experiência tipicamente associados com a formação da membrana. No entanto, a taxa de sucesso de BLM feita a partir da MP era tão baixa quanto ~ 27%, e formatio membranaN foi inconsistente tempo (30 min a 24 h), o que limita as suas aplicações práticas. Neste estudo, um polidimetilsiloxano (PDMS) de película fina é usado em vez de um filmes convencionais hidrofóbicos finas (PTFE, polioximetileno, polistireno) a (a) Tempo de controle de fabricação e (b) aumentar a taxa de sucesso da formação de BLM como previamente relatado por Ryu et al. 17 Aqui, a formação da membrana foi facilitada por extracção de solventes, devido à natureza porosa do PDMS, e o tempo necessário para a formação da membrana foi controlado com sucesso neste estudo. Neste sistema, como a solução de lípido foi absorvido pela película delgada de PDMS, um tempo de formação de membrana consistente foi alcançado. Além disso, a vida útil da membrana foi prolongada devido à absorção lenta de solventes para o PDMS de filme fino, um resultado da adição de esqualeno com a solução de lípido. Realizamos medições ópticas e elétricas para verificar se membranas formadas usando esta técnica são adequados para iem estudos de canais.

<table><tbody><tr><td>Cloreto de potássio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9333</td><td>Para solução tampão</td></tr><tr><td>Tris-cloridrato</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>1185-53-1</td><td>Para solução tampão</td></tr><tr><td>Ácido etilenodiaminotetracético</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>60-00-4</td><td>Para solução tampão</td></tr><tr><td>n-decano</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>44074-U</td><td>Para solução</td></tr> <tr><td>lipídicaHexadecano</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>544-76-3</td><td>Para solução lipídica</td></tr><tr><td>Esqualeno</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S3626</td><td>Para solução lipídica</td></tr><tr><td>Gramicidina A</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>11029-61-1</td><td>Proteína de membrana</td></tr><tr><td>1,2-difitanoil-sn-glicero-3-fosfocolina</td><td>Avanti Polar Lipids, Inc.</td><td>850356</td><td>Para formação de membrae</td></tr><tr><td>Sylgard 184a e 184b elastromer kit</td><td>Dow Corning Asia</td><td></td><td>Para produzir filme fino PDMS</td></tr><tr><td>0,2 &mu; Filtro m</td><td>Satorius stedim</td><td>16534----------K</td><td>Para filtrar a solução tampão</td></tr><tr><td>Rotator</td><td>FinePCR</td><td>AG</td><td>Para dissolver os lipídios homogeneamente</td></tr><tr><td>Autoclave</td><td>Biofree</td><td>BF-60AC</td><td>Para esterilizar a solução tampão</td></tr><tr><td>Revestidor giratório</td><td>Shinu Mst</td><td>SP-60P</td><td>Para espalhar o pré-polímero PDMS</td></tr><tr><td>Dessecador de vácuo</td><td>Welch</td><td>2042-22</td><td>Para remover bolhas de ar em pré-polímero PDMS</td></tr><tr><td>500 &mu; m&nbsp; punção</td><td>Harris Uni-Core</td><td>0.5</td><td>Para criar uma abertura na máquina CNC de filme fino PDMS</td></tr><tr><td></td><td>SME trading</td><td>SME 2518</td><td>Para fabricar câmara de formação de membrana</td></tr><tr><td>Iluminador de fibra óptica halógena</td><td>Motic</td><td>MLC-150C</td><td>Para iluminar a abertura do filme fino PDMS para observação óptica</td></tr><tr><td>Microscópio digital</td><td>Digital blue</td><td>QX-5</td><td>Para observar opticamente a membrana de bicamada lipídica formação</td></tr><tr><td>Eletrodo</td><td>Sistemas AM</td><td></td><td>Para observar eletricamente a formação da membrana</td></tr><tr><td>Amplificador de microeletrodo (amplificador Axopatch)</td><td>Axon Instruments</td><td>Amplificador Axopatch 200B</td><td>Para medir a capacitância da membrana (descrito como amplificador de microeletrodo no manuscrito)</td></tr></tbody></table>

formação automated lipid bicamada da membrana usando um polidimetilsiloxano thin film

Automated Lipid Bilayer Membrane Formation Using a Polydimethylsiloxane Thin Film

Uma bicamada lipídica artificial, ou membrana lipídica preto (BLM), é uma ferramenta poderosa para estudar canais iônicos e interações proteína, bem como para aplicações de biossensores. No entanto, técnicas de formação de BLM convencionais têm várias desvantagens e que muitas vezes exigem conhecimentos específicos e processos laboriosos. Em particular, MBL convencionais sofrem de taxas de sucesso de formação baixos e tempo de formação da membrana inconsistente. Aqui, nós demonstramos um sistema de formação de BLM armazenável e transportável com o tempo de desbaste-out controlado e maior taxa de formação de BLM, substituindo filmes tradicionais (politetrafluoretileno, polioximetileno, poliestireno) de polidimetilsiloxano (PDMS). Nesta experiência, um polímero poroso estruturado tal como película fina de PDMS é usado. Além disso, ao contrário de solventes convencionalmente utilizados com baixa viscosidade, o uso de esqualeno permitido um tempo de desbaste de saída controlada por via de absorção lenta solvente por PDMS, prolongando tempo de vida da membrana. Em anúnciodição, usando uma mistura de esqualeno e hexadecano, o ponto de congelação da solução de lípido foi aumentada (~ 16 ° C), além disso, os precursores de membrana foram produzidas, que pode ser armazenado indefinidamente e facilmente transportado. Estes precursores de membrana ter reduzido BLM tempo de formação de &lt;1 h e alcançou uma taxa de formação de BLM de ~ 80%. Além disso, as experiências de canal iónico com gramicidina Um demonstraram a viabilidade do sistema de membrana.

Optimização das MPE Solução Composição Diferentes composições de lípidos e solventes foram testados com sucesso para reconstituir membranas de bicamada lipídica da MPES. O sistema de MP com uma mistura de n- decano e hexadecano contendo 3% DPhPC 14 exibiram uma baixa taxa de sucesso de formação de membrana (~ 27%). Além disso, como o filme de PDMS extraiu-se continuamente solução de lípido, que era necessária para optimizar a composição de solv...

Nós demonstramos um sistema armazenável e transportável de lípidos em bicamada. Uma membrana de bicamada de lípido pode ser formado dentro de 1 hora com uma taxa de sucesso superior a 80% quando um precursor de membrana congelada é levada até à temperatura ambiente. Este sistema irá reduzir os processos laboriosos e conhecimentos associados com canais de íons.

Formação Automated Lipid bicamada da membrana Usando um polidimetilsiloxano Thin Film

An artificial lipid bilayer, or black lipid membrane (BLM), is a powerful tool for studying ion channels and protein interactions, as well as for ...

O objetivo geral deste procedimento é descrever um método que pode ser utilizado para estudar a formação automatizada de bicamadas lipídicas utilizando uma película fina de polidimetilsiloxano. Este método pode ajudar a responder questões fundamentais na área de nanobiossensores relacionadas às interações entre membranas e proteínas. A principal vantagem desta técnica é que a formação da bicamada lipídica é automatizada e reprodutível.Para começar, prepare a solução tampão combinando cloreto de potássio, tris hidrocloreto e EDTA em água destilada. Em seguida, ajuste o pH da solução para 8,0. Depois, filtre a solução utilizando um filtro de 0,2 mícron e autóclave a solução a 121 graus Celsius por 15 minutos.Em seguida, prepare a solução lipídica para pré-pintura dissolvendo 3% do lipídio em uma mistura composta por duas partes de undecano e oito partes de hexadecano em volume. Agite a solução durante a noite utilizando um rotador. Além disso, prepare a solução lipídica para formação da membrana dissolvendo 0,1% do lipídio na mesma mistura de duas partes de undecano e oito partes de hexadecano em volume.Agite esta solução durante a noite em um agitador rotativo também. Para preparar

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Bioengenharia

Bicamadas lipídicas suportadas e partículas de membranas naturais são sistemas convenientes que podem aproximar as propriedades das membranas celulares e ser incorporadas em uma variedade de estratégias de análise. Aqui demonstramos um método para a preparação de compostos de microarrays de suporte revestidas de lípidos em bicamada-SiO 2 grânulos, vesículas de fosfolípidos ou partículas de membranas naturais.

Formação de biomembrana Microarrays com um método de montagem baseada em Rodo

Jorrando Microfluidic contra uma bicamada lipídica interface de gota fornece uma maneira confiável para gerar vesículas com controle sobre a assimetria da membrana, a incorporação de proteínas transmembrana, e encapsulamento do material. Esta técnica pode ser aplicada ao estudo de uma grande variedade de sistemas biológicos, onde são desejados biomoléculas compartimentadas.

Lipid Bilayer Vesicle Geração Usando Microfluidic jateamento

Apresenta-se um protocolo experimental para formar uma bicamada lipídica suportado sobre substratos sem a utilização de vesículas lipídicas. Nós demonstramos um método de um só passo para formar uma bicamada lipídica em dióxido de silício e ouro, bem como membranas suportadas com o domínio enriquecida em colesterol durante várias aplicações biológicas.

Biomembrane Fabrication pelo Solvent-assistida Lipid bicamada (SALB) Método

A geração de emulsões duplas microfluídicas normalmente envolve dispositivos com molhabilidade padronizada ou componentes de vidro fabricados sob medida. Aqui descrevemos a fabricação e o teste de um gerador de emulsão dupla totalmente polidimetilsiloxano (PDMS) que não requer tratamento de superfície ou processos de fabricação complicados e é capaz de produzir emulsões duplas de até 14 μm.

Duplo Emulsion Geração de utilizar um dispositivo de polidimetilsiloxano (PDMS) Co-Axial Flow Foco

Com suporte sólido, isento de proteína, dobro fosfolipídeo BICAMADA membranas (DLBM) podem ser transformadas em redes de nanotubo de lipídios complexos e dinâmicos e podem servir como modelos 2D de baixo para cima do retículo endoplasmático.

Formação espontânea e rearranjo das redes de nanotubo lipídica Artificial como um modelo de baixo para cima para o retículo endoplasmático

Relatamos um protocolo para a produção de uma membrana lipídica híbrida na interface água/ar dopando a bicamada lipídica com moléculas de cobre (II) 2,9,16,23-tetra-tert-butil-29H,31H-phthalocyanine (CuPc). A membrana lipídica híbrida resultante tem uma estrutura de sanduíche lipídida/CuPc/lipídio. Este protocolo também pode ser aplicado à formação de outros nanomateriais funcionais.

Auto-montagem de membranas lipídicas híbridas dopadas com moléculas orgânicas hidrofóbicas na interface água/ar

Este protocolo descreve a formação de células imitando vesículas uni-lipídicas e multi-lipídicas, bicamadas lipídicas suportadas e bicamadas lipídicas suspensas. Estes modelos in vitro podem ser adaptados para incorporar uma variedade de tipos lipídes e podem ser usados para investigar várias interações de moléculas e macromoléculas.

Montagem de Modelos de Bicamadas lipídicas apoiadas e suspensas para o estudo de interações moleculares

Aqui, um protocolo para realizar e analisar a ligação, mobilidade e montagem de moléculas individuais em membranas lipídicas artificiais apinhadas usando microscopia de fluorescência de reflexão interna total de molécula única (smTIRF) é apresentado.

Difusão e Montagem de Molécula Única em Membranas Lipídicas Repletas de Polímeros

Aqui, um sistema de bicamada lipídica suportado por nanobar é desenvolvido para fornecer uma membrana sintética com uma curvatura definida que permite a caracterização de proteínas com capacidade de detecção de curvatura in vitro.

Um Sistema de Bicamada Lipídica Suportado por Nanobar para o Estudo de Proteínas de Detecção de Curvatura de Membrana in vitro

O presente protocolo descreve a montagem de lipossomas assistida por octanol (OLA), uma técnica microfluídica para gerar lipossomas biocompatíveis. O OLA produz lipossomas monodispersos do tamanho de mícrons com encapsulamento eficiente, permitindo a experimentação imediata no chip. Prevê-se que este protocolo seja particularmente adequado para biologia sintética e pesquisa de células sintéticas.

Montagem de lipossomas assistida por octanol on-chip para bioengenharia

Este protocolo apresenta um procedimento de desmoldagem aprimorado para a técnica de fundição dupla de polidimetilsiloxano (PDMS), introduzindo o óleo de silicone como uma barreira não adesiva entre as camadas de PDMS. Ao contrário dos métodos de modificação de superfície química ou de plasma, essa abordagem não requer equipamentos especializados ou caros, tornando-a uma alternativa mais acessível e econômica.

Fundição dupla aprimorada de polidimetilsiloxano (PDMS) via tratamento com óleo de silicone para replicação de microestrutura densamente compactada

Aprenda a formação automatizada de bicamadas lipídicas usando filmes finos de polidimetilsiloxano. Este método reproduzível forma membranas em menos de uma hora, facilitando estudos de interações proteína-membrana em nanobiosensores.

Formação Automated Lipid bicamada da membrana Usando um polidimetilsiloxano Thin Film

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