Name: Visualizando o desenvolvimento da cicatriz usando o ensaio SCAD - Um ensaio de cicatrização de pele ex-situ (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-04-28T13:40:00.000+00:00
Duration: 7 min 40 s
Description: Aprenda a visualizar a migração de fibroblastos e formação de cicatrizes usando o ensaio SCAD ex situ. Este método permite rastrear células individuais em tempo real e identificar novas estratégias terapêuticas contra fibrose.

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Reconhecemos todos os coautores de Jiang et al. 2020 por contribuir para o desenvolvimento da metodologia SCAD13. Agradecemos ao Dr. Steffen Dietzel e à instalação do núcleo de bioimagem da Ludwig-Maximilans-Universität pelo acesso ao sistema Multifotônio. Y.R. foi apoiado pelo Else-Kröner-Fresenius-Stiftung (2016_A21), pelo European Research Council Consolidator Grant (ERC-CoG 819933) e pela FUNDAÇÃO LEO (LF-OC-21-000835).

O modelo apresentado abaixo fornece uma descrição detalhada passo a passo da geração de ensaio SCAD, conforme descrito brevemente em Jiang et al., 202013. Os preparativos da amostra SCAD foram realizados após o sacrifício dos animais, de acordo com as diretrizes internacionais e do Governo da Alta Baviera. Os animais estavam alojados na instalação de animais do Centro Helmholtz de Munique. Os quartos foram mantidos com umidade ideal e temperatura constante com ciclo de luz de 12 horas. Os animais eram abastecidos com comida e água ad libitum.
1. Preparação do tecido SCAD
<ol><li>Sacrificar filhotes recém-nascidos no dia 0 ou dia 1 (P0 ou P1).</li>
	<li>Extite cuidadosamente pelo menos 1,5 cm x 1,5 cm de espessura total dorsal da pele dorsal até a camada muscular esquelética usando um bisturi cirúrgico estéril.</li>
	<li>Descasque a pele usando fórceps curvados estéreis, garantindo que a fáscia superficial esteja intacta com o músculo carnosus panniculus subjacente.</li>
	<li>Lave o tecido excisado com 50-100 mL de mídia DMEM/F-12 fria para remover sangue contaminante.</li>
	<li>Lave uma vez com a Solução de Sal Balanceado (HBSS) da Hanks para manter a viabilidade do tecido e celular.</li>
	<li>Coloque a pele de cabeça para baixo (fáscia superficial por cima) em uma placa de Petri de 10 cm contendo mídia DMEM/F12.</li>
	<li>Usando um soco de biópsia descartável de 2 mm, extirpar pedaços redondos de pele de espessura total, garantindo que a fáscia superficial esteja intacta com o músculo carnosus panniculus subjacente até que a epiderme gere tecidos SCAD.</li>
	<li>Prepare e encha 200 μL de DMEM/F12 (sem vermelho fenol) mídia completa media-DMEM/F12 complementada com 10% de FBS, 1x GlutaMAX, 1x aminoácidos não essenciais mem e 1x Penicillin/estreptomicina em poços individuais de uma placa de 96 poços.</li>
	<li>Usando fórceps estéreis, transfira cuidadosamente e submerga totalmente o tecido SCAD individual de cabeça para baixo (fáscia voltada para cima) para os poços de uma placa de 96 poços.</li>
	<li>Transfira a placa para uma incubadora de cultura celular mantida em condições padrão (37 °C, 21%(v/v) oxigênio, 5% (v/v) C02 e 95% de umidade).</li>
</ol>2. SCAD - Cultura tecidual
<ol><li>SCADs de cultura em uma incubadora por até 5 dias.</li>
	<li>No dia 2 e no 4º dia da cultura, substitua a mídia por 200μl de mídia completa DMEM/F12 pré-aquecida para garantir condições contínuas de viabilidade celular e tecido. Substitua os compostos de tratamento durante cada alteração de mídia. NOTA: Certifique-se de deixar 10 μL de mídia no poço para evitar que os tecidos grudem nos poços.</li>
	<li>Prepare SCADs para os seguintes experimentos: Imagem ao vivo (seção 3) e Colheita de Tecidos e Coloração de imunofluorescência 2D/3D (seção 4).</li>
</ol>3. Imagem ao vivo de SCADs
<ol><li>Prepare um mínimo de 30 mL de 2%-3% (w/v) solução de agarose de baixo derretimento em PBS em uma garrafa de vidro aquecendo-a em um micro-ondas até ferver.</li>
	<li>Transfira imediatamente a garrafa e esfrie a solução de agarose líquida em um banho de água de 40 °C.</li>
	<li>Transfira o tecido SCAD com fáscia/cicatriz voltada para o centro de uma antena de 35 mm.</li>
	<li>Incorpore o SCAD à temperatura ambiente (RT) transferindo lentamente 40 °C líquido surgido no prato de 35 mm usando uma pipeta Pasteur. Agarose polimeriza dentro de 2 minutos.</li>
	<li>Adicione 2 mL de mídia completa DMEM/F12 pré-aquecida (sem indicador vermelho fenol).</li>
	<li>Adquira imagens de lapso de tempo do dia 0 SCADs até 48 h usando um microscópio confocal ou multifotônio equipado com um sistema de incubação adequado definido para 37 °C, 21% (v/v) oxigênio, 5% (v/v) C02 e 95% de umidade.</li>
</ol>4. Colheita de tecidos e coloração de imunofluorescência 2D/3D
<ol><li>Lave os tecidos em pontos de tempo relevantes, substituindo a mídia por PBS estéril.</li>
	<li>Usando fórceps estéreis, transfira cuidadosamente os SCADs individuais para tubos de microcentrifuuge de 1,5 mL contendo 500 μL de 2% de paraformaldeído para fixar os tecidos durante a noite a 4 °C.</li>
	<li>Lave os tecidos três vezes com PBS e prossiga com a coloração de imunofluorescência 2D/3D.</li>
	<li>Coloração de imunofluorescência 3D<ol>
<li>Permeabilize os tecidos incubando em um tubo de microcentrífuga de 1,5 mL contendo 500 μL de PBS complementado com 0,2% de gelatina, 0,5% Triton-X100 e 0,01% Thimerosal (PBSGT) na RT por 24 h.</li>
		<li>Prepare uma quantidade adequada de anticorpos primários de acordo com as instruções do fabricante e incuba os tecidos SCAD em 150 μL de solução PBSGT para 24 h na RT. NOTA: Se a concentração ideal de anticorpos para fluorescência imunológica não for relatada pelo fabricante, a titulação prévia de anticorpos precisa ser realizada em tecidos de controle usando concentrações variadas (por exemplo, 1:50, 1:200, 1:500, 1:1000).</li>
		<li>Lave suavemente os SCADs três vezes com PBS para remover o anticorpo primário não ligado.</li>
		<li>Incubar tecido com anticorpos secundários Alexa Fluor relevantes em PBS durante a noite na RT.</li>
		<li>Lave suavemente o tecido por 30 minutos em PBS três vezes para remover o excesso de anticorpos secundários não ligados.</li>
		<li>Transfira o tecido para um prato de fundo de vidro de 35 mm para imagens confocal ou multifoton. NOTA: Ao usar os objetivos de imersão em água, incorpore os SCADs em 2 % ponto de fusão baixo para imobilizar o tecido para evitar a deriva durante a aquisição de imagem</li>
	</ol>
</li>
	<li>Coloração de imunofluorescência 2D<ol>
<li>Transfira o tecido para um crio-mofo e preencha suavemente com o composto de temperatura de corte ideal (OCT) para imergir completamente o tecido.</li>
		<li>Ajuste suavemente a orientação do tecido, garantindo a ausência de bolhas de ar para obter uma seção transversal ou uma seção vertical.</li>
		<li>Coloque o molde em gelo seco por 20-30 min e incubar o bloco a -80 °C durante a noite.</li>
		<li>Coloque a temperatura da lâmina em -25 °C e bloqueie a temperatura do bloco de -17 °C. Prepare a crio-seção de 6 μm usando um criostat, transfira as seções para um slide de adesão e armazene os slides no congelador de -20 °C.</li>
		<li>Enxágüe os slides três vezes em PBS e incuba os slides em 5% De Colmina de Soro Bovino (BSA) c/v em PBST (PBS complementado com 0,05% Tween) por 1 h.</li>
		<li>Adicione uma quantidade apropriada de anticorpo primário a 150μl PGST e incubar durante a noite a 4 °C NOTA: Se a concentração ideal de anticorpos para fluorescência imunológica não for relatada pelo fabricante, a titulação prévia de anticorpos precisa ser realizada em seções de controle usando concentrações variadas (por exemplo, 1:50, 1:200, 1:500, 1:1000).</li>
		<li>Lave suavemente as seções três vezes com PBS para remover o anticorpo primário não ligado.</li>
		<li>Incubar tecido com 1:1000 anticorpos secundários Alexa Fluor relevantes na PBS durante a noite na RT por 2h.</li>
		<li>Lave suavemente o tecido por 5 minutos em PBS três vezes para remover o excesso de anticorpos secundários não ligados.</li>
		<li>Monte os slides com um meio de montagem contendo DAPI e seque as lâminas no escuro em RT.</li>
		<li>Imagem as seções usando um microscópio de fluorescência.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Longaker, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adult+skin+wounds+in+the+fetal+environment+heal+with+scar+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Surgery%22%5BJournal%5D)">Adult skin wounds in the fetal environment heal with scar formation.</a> Annals of Surgery. 219 (1), 65-72 (1994).</li>
<li>desJardins-Park, H. E., Foster, D. S., Longaker, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibroblasts+and+wound+healing%3A+an+update%5BTitle%5D)+AND+%22Regenerative+Medicine%22%5BJournal%5D)">Fibroblasts and wound healing: an update.</a> Regenerative Medicine. 13 (5), 491-495 (2018).</li>
<li>Jiang, X., Iseki, S., Maxson, R. E., Sucov, H. M., Morriss-Kay, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+origins+and+interactions+in+the+mammalian+skull+vault%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Tissue origins and interactions in the mammalian skull vault.</a> Developmental Biology. 241 (1), 106-116 (2002).</li>
<li>Tripathi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypertrophic+scars+and+keloids%3A+a+review+and+current+treatment+modalities%5BTitle%5D)+AND+%22Biomedical+Dermatology%22%5BJournal%5D)">Hypertrophic scars and keloids: a review and current treatment modalities.</a> Biomedical Dermatology. 4, 11(2020).</li>
<li>Martin, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wound+healing--Aiming+for+perfect+skin+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Wound healing--Aiming for perfect skin regeneration.</a> Science. 276 (5309), 75-81 (1997).</li>
<li>Correa-Gallegos, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patch+repair+of+deep+wounds+by+mobilized+fascia%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Patch repair of deep wounds by mobilized fascia.</a> Nature. 576 (7786), 287-292 (2019).</li>
<li>Sen, C. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+wounds+and+its+burden%3A+An+updated+compendium+of+estimates%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Wound+Care%22%5BJournal%5D)">Human wounds and its burden: An updated compendium of estimates.</a> Advances in Wound Care. 8 (2), 39-48 (2019).</li>
<li>Rinkevich, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+isolation+of+a+dermal+lineage+with+intrinsic+fibrogenic+potential%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Identification and isolation of a dermal lineage with intrinsic fibrogenic potential.</a> Science. 348 (6232), 2151(2015).</li>
<li>Leavitt, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prrx1+fibroblasts+represent+a+pro-fibrotic+lineage+in+the+mouse+ventral+dermis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Prrx1 fibroblasts represent a pro-fibrotic lineage in the mouse ventral dermis.</a> Cell Reports. 33 (6), 108356(2020).</li>
<li>Driskell, R. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+fibroblast+lineages+determine+dermal+architecture+in+skin+development+and+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Distinct fibroblast lineages determine dermal architecture in skin development and repair.</a> Nature. 504 (7479), 277-281 (2013).</li>
<li>Walmsley, G. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+fibroblast+harvest+reveals+surface+marker+shift+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering.+Part+C%2C+Methods%22%5BJournal%5D)">Live fibroblast harvest reveals surface marker shift in vitro.</a> Tissue Engineering. Part C, Methods. 21 (3), 314-321 (2015).</li>
<li>Hakkinen, K. M., Harunaga, J. S., Doyle, A. D., Yamada, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+comparisons+of+the+morphology%2C+migration%2C+cell+adhesions%2C+and+actin+cytoskeleton+of+fibroblasts+in+four+different+three-dimensional+extracellular+matrices%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Direct comparisons of the morphology, migration, cell adhesions, and actin cytoskeleton of fibroblasts in four different three-dimensional extracellular matrices.</a> Tissue Engineering. Part A. 17 (5-6), 713-724 (2011).</li>
<li>Jiang, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Injury+triggers+fascia+fibroblast+collective+cell+migration+to+drive+scar+formation+through+N-cadherin%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Injury triggers fascia fibroblast collective cell migration to drive scar formation through N-cadherin.</a> Nature Communications. 11 (1), 5653(2020).</li>
<li>Wan, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Connexin43+gap+junction+drives+fascia+mobilization+and+repair+of+deep+skin+wounds%5BTitle%5D)+AND+%22Matrix+Biology%3A+Journal+of+the+International+Society+for+Matrix+Biology%22%5BJournal%5D)">Connexin43 gap junction drives fascia mobilization and repair of deep skin wounds.</a> Matrix Biology: Journal of the International Society for Matrix Biology. 97, 58-71 (2021).</li>
<li>Molbay, M., Kolabas, Z. I., Todorov, M. I., Ohn, T. -L., Ertürk, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+guidebook+for+DISCO+tissue+clearing%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Systems+Biology%22%5BJournal%5D)">A guidebook for DISCO tissue clearing.</a> Molecular Systems Biology. 17 (3), 9807(2021).</li>
<li>Ueda, H. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+clearing+and+its+applications+in+neuroscience%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Tissue clearing and its applications in neuroscience.</a> Nature Reviews Neuroscience. 21 (2), 61-79 (2020).</li>
<li>Ertürk, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+imaging+of+solvent-cleared+organs+using+3DISCO%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional imaging of solvent-cleared organs using 3DISCO.</a> Nature Protocols. 7 (11), 1983-1995 (2012).</li>
<li>Wilhelm, K. -P., Wilhelm, D., Bielfeldt, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Models+of+wound+healing%3A+an+emphasis+on+clinical+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Skin+Research+and+Technology%3A+Official+Journal+of+International+Society+for+Bioengineering+and+the+Skin+%28ISBS%29+%5Band%5D+International+Society+for+Digital+Imaging+of+Skin+%28ISDIS%29+%5Band%5D+International+Society+for+Skin+Imaging+%28ISSI%29%22%5BJournal%5D)">Models of wound healing: an emphasis on clinical studies.</a> Skin Research and Technology: Official Journal of International Society for Bioengineering and the Skin (ISBS) [and] International Society for Digital Imaging of Skin (ISDIS) [and] International Society for Skin Imaging (ISSI). 23 (1), 3-12 (2017).</li>
<li>Grada, A., Mervis, J., Falanga, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Research+techniques+made+simple%3A+Animal+models+of+wound+healing%29%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Investigative+Dermatology%22%5BJournal%5D)">Research techniques made simple: Animal models of wound healing).</a> The Journal of Investigative Dermatology. 138 (10), 2095-2105 (2018).</li>
</ol>

Todos os autores declaram que não há interesses concorrentes.

Vários modelos já foram desenvolvidos para entender a formação da cicatriz após lesão. Embora muitos avanços tenham sido apresentados a este respeito, mas, os mecanismos reais ainda não estão claros. Em contraste com a técnica anterior, o modelo SCAD incorpora todos os tipos de células e camadas cutâneas, mantendo assim a complexidade da pele nativa 18,19. Essa metodologia é capaz de gerar conjuntos de dados fundamentais que são importantes na compreensão de meca...

A cicatrização de feridas é um processo de restauração de feridas violadas. Lesões teciduais em invertebrados resultam em regeneração parcial ou completa. Em contraste, os mamíferos respondem a ferimentos profundos por cicatrizes, um processo adaptado para selar rapidamente feridas com densas fibras matriciais que minimizam a área rompida e, ao mesmo tempo, deformam permanentemente o localferido 1,2,3. Queimaduras de pele grandes ou feridas profundas abertas em mamíferos resultam em fenótipos patológicos, como cicatrizes hipertróficas ou queloides 4,5. Essas cicatrizes exuberantes causam um enorme fardo nos sistemas de saúde clínicos e globais. Só nos EUA, a gestão de cicatrizes custa cerca de US$ 10 bilhões por ano 6,7. Portanto, o desenvolvimento de metodologias relevantes é necessário para entender melhor os processos e mecanismos de fundemental envolvidos na formação de cicatrizes.
Nos últimos anos, uma ampla gama de estudos em camundongos revelou populações fibroblastos heterogêneas com potências funcionais distintas com base em suas origens em certos locais de pele 8,9,10. Na pele traseira, Rinkevich et al., 2015, identificaram que uma população específica de fibroblasto com uma expressão embrionária precoce de Engrailed-1 (En1), denominada EPF (Engrailed positive fibroblast) contribui para cicatrizes cutâneas ao ferir. Por outro lado, outra linhagem fibroblasto sem histórico de expressão engrida, o fibroblasto negativo Engrailed (ENF), não contribui para a formação da cicatriz8. O mapeamento do destino dessas linhagens En1 usando linhas de mouse transgênicas orientadas por Cre cruzadas para linhas de mouse repórter fluorescência, como R26mTmG (En1Cre x R26mTmG) permite a visualização de populações de EPF e ENF.
Estudar a migração do fibroblasto in vivo ao longo de vários dias é limitado por restrições éticas e técnicas. Além disso, telas de biblioteca de anticorpos compostos, virais e neutralizantes para modular caminhos envolvidos em cicatrizes é tecnicamente desafiador. Modelos in vitro ou ex vivo anteriormente utilizados não têm a capacidade de visualizar a migração de fibroblastos e a formação de cicatrizes em microambientes genuínos da pele, uniformidade no desenvolvimento de cicatrizes, bem como complexidade tecidual que emula ambientes de pele in vivo 11,12. Para superar as limitações acima, desenvolvemos um ensaio de cicatrização ex vivo denominado SCAD (tecido semelhante a SCar em Um Prato)13,14. Este ensaio simples pode ser realizado excisando a pele de 2 mm de espessura total contendo a epiderme, a derme e as regiões de fáscia subcutânea e culturando-as em mídia DMSO suplementada por soro por até 5 dias. Cicatrizes geradas a partir de SCAD replicam de forma confiável marcas transcriômicas e proteômicas de cicatrizes in vivo. Além disso, SCADs gerados a partir de linhas de camundongos transgênicos relevantes (por exemplo, ratos En1) cruzadas com linhas de mouse repórter fluorescente permitem a visualização da dinâmica de migração do fibroblasto e desenvolvimento de cicatrizes em uma resolução sem precedentes. Além disso, este modelo pode ser facilmente adaptado para quaisquer aplicações de alto rendimento (por exemplo, biblioteca composta, biblioteca de anticorpos ou triagem viral)13,14. Neste artigo, descrevemos um protocolo otimizado para gerar SCADs e subsequentes aplicações de processamento a jusante para estudar a dinâmica celular e matricial no desenvolvimento de cicatrizes.

<table><tbody><tr><td>10% Tween 20, Detergente não iônico</td><td>Biorad Laboratories</td><td>1610781</td><td></td></tr><tr><td>Albumina de soro bovino, Fract de etanol frio</td><td>Sigma</td><td>A4503-50G</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F-12, HEPES, sem vermelho de fenol-500 mL</td><td>LIFE Technologies</td><td>11039021</td><td></td></tr><tr><td>DPBS, sem cálcio, sem magnésio</td><td>Gibco</td><td>14190169</td><td></td></tr><tr><td>Epredia Cryostar NX70 Cryostat Thermo</td><td> Lâminas de Adesão Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Epredia SuperFrost Plus</td><td>Lâminas de Adesão Fisher scientific</td><td>J1800AMNZ</td><td></td></tr><tr><td>Soro Fetal Bovino, qualificado, inativado por calor, aprovado pela UE, Origem da América do Sul-500 mL</td><td>LIFE Technologies</td><td>&nbsp; </td><td></td>10500064</tr><tr><td>Fluoromount-G com DAPI</td><td>Life Technologies</td><td>00 4959 52</td><td>Meio de montagem com pinça DAPI</td></tr><tr><td>curvada com pontas finas com pino-guiaaço inoxidável (pinças)</td><td>Fisher Scientific</td><td>12381369</td><td></td></tr><tr><td>Gelatina de pele suína</td><td>Sigma</td><td>G2500-100G</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX Supplement-100 mL</td><td>LIFE Technologies</td><td>35050038</td><td></td></tr><tr><td>HBSS, cálcio, magnésio, sem vermelho de fenol-500 mL</td> Sistema de incubação <td>de gás LIFE Technologies</td><td>14025092</td><td></td></tr><tr><td>Ibidi para CO2 e O2</td><td>Ibidi</td><td>11922</td><td></td></tr><tr><td>Sistema de aquecimento Ibidi</td><td>Ibidi</td><td>10915</td><td></td></tr><tr><td>Microscópio vertical Leica SP8 - Excitação multifotônica 680&ndash; 1300 nm</td><td>Leica</td><td></td><td>Equipado com uma objetiva de imersão em água de 25x (HC IRAPO L 25x/1.00&thinsp; W) em combinação com um laser sintonizável (Spectra-Physics, InSight DS&thinsp;+&thinsp; Único)</td></tr> <tr><td>Aminoácidos Não Essenciais</td><td>LIFE Technologies</td><td>11140035</td><td></td></tr><tr><td>NuSieve GTG Agarose, 25 g</td><td>Biozym /Lonza</td><td>859081</td><td></td></tr><tr><td>OCT Matriz de Incorporação</td><td>Carlroth</td><td>6478.1</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldeído, 16% P/V AQ. 10 x10 mL</td><td>VWR International</td><td>43368.9M</td><td></td></tr><tr><td>Pen-Strep</td><td>Gibco</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>Stiefel Biopsy-Punch 2 mm</td><td>Stiefel</td><td>270130</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura de Dissecção Reta Afiada/Afiada 11.4 cm</td><td>Fisher Scientific</td><td>15654444</td><td></td></tr><tr><td>Thimerosal Bioxtra, 97%&ndash; 101%</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>T8784-1G</td><td></td></tr><tr><td>Zeiss Axioimager M2 microscópio vertical</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

visualizando o desenvolvimento da cicatriz usando o ensaio scad - um ensaio de cicatrização de pele ex-situ

Visualizing Scar Development Using SCAD Assay - An Ex-situ Skin Scarring Assay

A resposta global dos mamíferos à vedação de feridas profundas de tecido é através da formação de cicatrizes e contração tecidual, mediada por fibroblastos especializados de fáscia. Apesar da significância clínica da formação da cicatriz e da cicatrização prejudicada da ferida, nossa compreensão da dinâmica do fibroblasto de fáscia na cicatrização das feridas é superficial devido à falta de ensaios relevantes que possibilitem a visualização direta da coreografia e dinâmica do fibroblasto em ambientes complexos, como nas feridas da pele. Este artigo apresenta um protocolo para gerar cicatrizes de pele ex-situ usando SCAD ou "Tecido semelhante a SCar em Um Prato" que emulam o ambiente complexo de feridas cutâneas. Neste ensaio, a pele de 2 mm de espessura total é extirpada e cultivada de cabeça para baixo na mídia por 5 dias, durante os quais cicatrizes e contraturas de pele se desenvolvem uniformemente. Essa metodologia, aliada aos modelos específicos de camundongos transgênicos da linhagem do fibroblasto, permite a visualização de linhagens individuais de fibroblasto em todo o processo de reparação da ferida. No geral, esse protocolo auxilia os pesquisadores na compreensão de processos fundamentais e mecanismos de reparação de feridas, explorando diretamente os efeitos dos moduladores nos desfechos de cicatrização de feridas.

A geração de SCADs pode ser separada em três etapas essenciais: a colheita da pele de volta de camundongos P0-P1, gerando socos de biópsia de espessura total, e cultura subsequente de scads individuais até 5 dias em placas de 96 poços. Como leitura, este ensaio pode ser aplicado ainda para analisar os aspectos espaciais e temporais das cicatrizes. A análise espacial utiliza rotulagem imune 2D e 3D de tecidos para estudar a localização espacial de componentes celulares e maticiais dentro do tecido cicatricial em desenvolv...

Este protocolo descreve a geração de uma explanta de fáscia de pele chamada "SCar like tissue in A Dish" ou SCAD. Este modelo permite uma visualização sem precedentes de fibroblastos únicos durante a formação da cicatriz.

Visualizando o desenvolvimento da cicatriz usando o ensaio SCAD - Um ensaio de cicatrização de pele ex-situ

The mammalian global response to sealing deep tissue wounds is through scar formation and tissue contraction, mediated by specialized fascia fibroblasts. ...

Modelos in vitro ou ex vivo anteriormente não possuem componentes celulares dérmicos e complexidade do tecido da pele. Este ensaio ex situ SCAD supera uma limitação definida e permite estudar o desenvolvimento de cicatrizes fora do animal ferido. O ensaio SCAD permite a visualização da migração do fibroblasto e da formação de cicatrizes em microambientes de pele.Permite que bibliotecas de ativadores ou inibidores entendam a base mecanicista da formação de cicatrizes. Ensaios de triagem de alto rendimento de bibliotecas planas usando o modelo SCAD na compreensão do processo fundamental e do curso de moléculas envolvidos no reparo de feridas. O ensaio SCAD é fácil de realizar usando as explantas da pele.Para uma cicatriz consistente, recomenda-se selecionar a pele do dia zero ou dia de pós-natal. Depois de sacrificar o dia zero ou o dia de um filhote recém-nascido pós-natal, use um bisturi cirúrgico estéril para extirpar cuidadosamente 1,5 por 1,5 centímetros de espessura total dorsal da pele dorsal até a camada muscular esquelética. Descasque a pele usando fórceps curvados estéreis, garantindo que a fáscia superficial esteja intacta com o músculo carnosus panniculus subjacente.Lave o tecido excisado com 50 a 100 mililitros de meio DMEM F-12 frio para remover sangue contaminante. Em seguida, lave o tecido com hanks solução de sal equilibrado para manter a viabilidade tecidual e celular. Coloque a pele de cabeça para baixo com fáscia superficial por cima em uma placa de Petri de 10 centímetros contendo meio DMEM F-12.Em seguida, usando um ponche de biópsia descartável de dois milímetros, extirpar pedaços redondos de pele de espessura total para gerar tecidos comcadidos, garantindo que a fáscia superficial esteja intacta com o músculo carnosus panniculus subjacente até a epiderme. Adicione 200 microliters de MMEM F-12 completos sem fenol vermelho em cada poço de uma placa de 96 poços. Usando fórceps estéreis, transfira e submergir totalmente tecido carnado individual de cabeça para baixo para os poços de uma placa de 96 poços.Transfira a placa para uma incubadora de cultura celular mantida em condições padrão. Nos dias dois e quatro da cultura, remova o meio deixando 10 microliters no poço e adicione o meio completo DMEM F-12 pré-aquecido fresco, juntamente com os compostos de tratamento para manter as condições contínuas de viabilidade celular e tecido. Para imagens ao vivo de SCADs, prepare 30 mililitros de solução de 2 a 3% de baixa fusão em PBS em uma garrafa de vidro aquecendo em um micro-ondas.Depois de ferver, transfira imediatamente a garrafa e esfrie a solução de agarose líquida em um banho de água de 40 graus Celsius. Em seguida, transfira o tecido SCAD com fáscia ou cicatriz voltada para o centro de uma antena de 35 milímetros. Em seguida, incorpore o SCAD à temperatura ambiente, derramando lentamente 40 graus Celsius líquido surgido no tecido usando uma ponta de pipeta de 1000 microliter.Agarose polimeriza em dois minutos. Após a polimerização, adicione dois mililitros de meio completo DMEM F-12 pré-aquecido. Em seguida, usando um microscópio confocal ou multifotônio equipado com sistemas de incubação adequados explicados no manuscrito, adquira imagens de lapso de tempo do dia zero ao primeiro dia.Para a colheita de tecidos, lave os tecidos em pontos de tempo relevantes, substituindo a mídia por PBS estéril. Usando fórceps estéreis, transfira cada SCAD para um tubo de microcentrífuga de 1,5 mililitro contendo 500 microliters de 2% paraformaldeído para fixar os tecidos durante a noite a quatro graus Celsius. No dia seguinte, lave os tecidos três vezes com PBS antes de proceder à coloração de imunofluorescência bi ou tridimensional, conforme descrito no manuscrito do texto.As imagens representativas de campo brilhante de SCADs nos dias zero e cinco são mostradas aqui. A coloração tricrômica do Masson de seções de tecido vertical revela assinaturas de cicatrizes teciduais, contração tecidual e acúmulo de matriz extracelular no núcleo da cicatriz nos dias zero e cinco. A coloração da imunofluorescência de SCADs nos dias zero e cinco são mostradas.A partir da cicatriz do estágio inicial e tardio, o fibroblasto positivo arraigado é mostrado em verde e o fibroblasto negativo arraigado em vermelho. Para imagens tridimensionais, os tecidos foram incorporados na solução agarose e cobertos com PBSGT. As imagens representativas demonstram localização exclusiva da proteína N-cadherin no local da cicatriz de um SCAD de cinco dias.A configuração de imagem tridimensional de lapso de tempo equipada com uma câmara de incubação exibiu os primeiros eventos de progressão dos enxames de fibroblastos durante as primeiras 12 horas ou estágios iniciais de desenvolvimento da cicatriz. A representação gráfica de trajetórias celulares rastreadas por células únicas de fibroblastos individuais sobre o desenvolvimento de cicatrizes é apresentada aqui. É crucial colocar o tecido SCAD de cabeça para baixo dentro da placa do poço para que a fáscia fique virada para cima.O não cumprimento resultaria em variações inevitáveis nos padrões migratórios. Este procedimento permite examinar camadas dérmicas para tratamentos ou cultura usando moduladores químicos, anticorpos neutralizantes ou métodos virais. Isso ajuda na avaliação das respostas fibrológicas patológicas em diversos ambientes médicos.Mostramos a expressão da connexin-43 e N-cadherin como moléculas-chave envolvidas na mobilização da fáscia ao ferir. A metodologia SCAD permite identificar novas estratégias terapêuticas para reduzir cicatrizes e fibrose.

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Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

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