RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/3281-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Быстрый и доступный способ извлечения паразита малярии качества и векторной ДНК из образцов комаров описано. Опираясь на свойства хелатирующие смолы Chelex, простой метод позволяет генотипирования малярийных паразитов в комара средней кишки и слюнных желез фаз, а также молекулярная идентификация
Общая цель этой процедуры заключается в извлечении ДНК малярии, паразитов и комаров из участков средней кишки и слюнных желез аномалий, образцов. Это достигается путем предварительного разрезания комара точно в месте стыка между брюшной полостью и грудной клеткой, тем самым отделяя среднюю кишку от участка слюнных желез. Далее каждая секция измельчается отдельно в деионизированной воде.
Затем тканевую суспензию ложат и промывают и восстанавливают клеточную гранулу. Наконец, клеточную гранулу восстанавливают и кипятят, а ДНК извлекают. В конечном счете, могут быть получены результаты, показывающие высокое качество ДНК комаров и малярийных паразитов, пригодных для использования в качестве матрицы для идентификации аномалий, видов переносчиков и генотипов малярийных инфекций с помощью ПЦР и переваривания аллель-специфических ферментов рестрикции.
Таким образом, основное преимущество этого очень простого метода перед существующими, такими как методы органической экстракции и сортировки, заключается в том, что он использует очень мало безопасных и легкодоступных реагентов, а также гораздо меньше времени на обработку. Чтобы начать препарирование комара, поместите его на небольшой кусочек параформы и установите его на препарирующий микроскоп. Покройте его каплей деионизированной воды.
Чтобы размягчить ткани в размерах, тушку комара располагают точно в месте соединения между грудной клеткой и брюшной полостью. Таким образом, отрезаются голова и грудная клетка от брюшной полости. Переложите каждый препарированный срез комара в чистую автоклавную микроцентрифугу объемом 1,5 миллилитра, предварительно помеченную идентификационным номером комара и срезом тела, выбросьте парапленку и с помощью 70% смоченной спиртом салфетки Кима тщательно протрите столик микроскопа перед обработкой следующего комара для извлечения ДНК комара первой пипеткой 20 микролитров деионизированной воды в пробирку для образца.
И с помощью наконечника пипетки измельчите погруженную секцию комара в однородную суспензию. Добавьте 100 микролитров автоклава, один XPBS 1%-ный раствор сапонина в образец гомогенат и аккуратно перемешайте. Инкубируйте образец при комнатной температуре в течение 20 минут.
Затем центрифугируйте при 20 000 G в течение двух минут и выбросьте надосадочную жидкость. Повторно суспендируйте гранулу в 100 микролитрах одного XPBS. Затем повторите спин.
Добавьте 75 микролитров стерильной деионизированной воды и 25 микролитров 20% веса на объем. Смола Cellex 100 суспензируется в деионизированной воде и мягко вихревая суспендирует гранулу с помощью стерильной иглы для подкожных инъекций 23 калибра, подожженной в горелке Бунзена. Проткните отверстие в крышке пробирки с образцом.
Прокипятить образец суспензии в нагревательном блоке в течение 10 минут. Центрифугируйте при 20 000 G в течение одной минуты и перенесите раствор ДНК в предварительно помеченный флакон для хранения для использования в качестве матрицы в ПЦР-реакциях для проверки качества экстрагированной ДНК, амплифицируйте область гена субъединицы 4 митохондриальной никотинамидаденунитриндегидрогеназы членистоногих, которая, как ожидается, продуцирует фрагмент 400 пары оснований. Далее, чтобы дифференцировать виды Ananais Gambia, амплифицируйте область, фланкирующую SNP в области межгенного спейсера, которая, как ожидается, будет производить размеры 390 пар оснований для Ananais Gambia Sens Stricto и 315 пар оснований для Ananais api.
Ansis затем к генотипу p falciparum антифолиевой лекарственной устойчивости полиморфизмов. Проводят вложенную ПЦР для амплификации области, фланкирующей кодоны аминокислот 16, 51, 59, 108 и 164. У паразитов ген дигидрофолитередуктазы осуществляет аллель-специфическое расщепление ампликона для выявления устойчивости к антифолатным препаратам.
Ассоциированные полиморфизмы. Проверьте реакцию на гелевый тест 2%AROS. Примеры результатов ПЦР-анализов на качество ДНК комаров Analis RABIS молекулярная идентификация и генотипирование p falciparum показывают, что упрощенный метод Kelex дает результаты, аналогичные стандартному протоколу высаивания, несмотря на меньшее количество этапов и менее чем в четыре раза чаще с сопоставимым качеством ДНК в соответствующих экстрактах, неудивительно, что показатели положительности образцов в отношении аномалий, Виды братьев и сестер в Гамбии, а также частота заражения паразитами статистически не отличались на основе критерия хи-квадрат Макнира.
Добавление БСА в реакционные смеси приводит к общему увеличению положительных результатов ПЦР из-за удаления ингибиторов ПЦР как по упрощенному протоколу kelex, так и по протоколу регулярного высоливания. Тем не менее, это увеличение не было статистически значимым, за исключением качества ДНК в экстрактах келекса. Расщепление аллель-специфического фермента рестрикции P. falciparum amplicon позволяет генотипировать малярийные инфекции средней кишки и слюнных желез по аллелям лекарственной устойчивости после освоения.
Эта техника должна быть выполнена примерно за 37 минут при правильном выполнении.
Related Videos
15:14
Related Videos
30.2K Views
13:47
Related Videos
25.9K Views
09:00
Related Videos
26.3K Views
11:42
Related Videos
10.4K Views
14:29
Related Videos
14.8K Views
09:57
Related Videos
10.8K Views
07:56
Related Videos
18.9K Views
05:34
Related Videos
7.1K Views
05:51
Related Videos
4K Views
06:40
Related Videos
6.1K Views