-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Environment
Получение и испытание импеданса на основе струйного биочипов с RTgill-W1 Клетки для быстрой оценк...
Получение и испытание импеданса на основе струйного биочипов с RTgill-W1 Клетки для быстрой оценк...
JoVE Journal
Environment
This content is Free Access.
JoVE Journal Environment
Preparation and Testing of Impedance-based Fluidic Biochips with RTgill-W1 Cells for Rapid Evaluation of Drinking Water Samples for Toxicity

Получение и испытание импеданса на основе струйного биочипов с RTgill-W1 Клетки для быстрой оценки питьевой воды проб на токсичность

Full Text
9,480 Views
11:19 min
March 7, 2016

DOI: 10.3791/53555-v

Linda M. Brennan1, Mark W. Widder1, Michael K. McAleer2, Michael W. Mayo2, Alex P. Greis2, William H. van der Schalie1

1U.S. Army Center for Environmental Health Research, 2Nanohmics, Inc.

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

В этой рукописи описывается, как получить жидкостные биочипы с жаберными эпителиальными клетками радужной форели для использования в полевых портативных электрических датчиках импеданса между ячейками и субстратом. Также описан протокол проведения экспресс-теста на токсичность питьевой воды с помощью датчика.

Общая цель этой процедуры — продемонстрировать, как использовать биосенсор для оценки токсичности проб питьевой воды. Это достигается за счет создания биочипов, которые содержат монослой жаберных клеток радужной форели, а затем их использования в качестве части биосенсора, основанного на импедансе. Эта процедура позволяет быстро обнаруживать химическую токсичность в питьевой воде на уровнях, имеющих отношение к здоровью человека.

Основные преимущества этого метода заключаются в том, что биочипы можно использовать в полевых условиях, они могут храниться в холоде до девяти месяцев без какого-либо ухода или обслуживания клеток, а также в том, что они находятся в состоянии готовности к тестированию и могут быть использованы в любой момент после снятия с холодильника. Демонстрировать эту процедуру будет Джордан МакНэрн, студент бакалавриата нашей лаборатории. За день до посева клеток извлеките биочипы из упаковки и поместите их в стерилизованные пластиковые футляры для инструментов.

Присоедините к шприцу одну из трубок в сборе и наберите 20%-ный раствор отбеливателя в 20-миллилитровый шприц. Введите по два миллилитра раствора в каждый канал биочипа. Когда закончите, дайте биочипам постоять в течение одного часа с раствором отбеливателя.

Через час используйте стерильный одномиллилитровый шприц, оснащенный узлом Луэра с наружной резьбой, подключенным к вакуумной линии, чтобы отсасывать раствор отбеливателя из обоих каналов. После отсасывания отбеливателя из биочипа прикрепите к биочипу стерильную трубку в сборе с наружными скользящими люерами на каждом конце, чтобы использовать ее в качестве дренажа при промывке биочипов. Затем наберите стерильную воду в 20-миллилитровый шприц, и промойте каждый канал чипа пятью миллилитрами воды.

Вакуумируйте аспирацию воды, как и раньше. И поместите биочипы обратно в пластиковые корпуса для инструментов. Оставьте биочипы в биозащитном колпаке до следующего дня.

За час до посева биочипов введите два миллилитра раствора фибронектина с концентрацией 10 микрограммов на миллилитр в каждый канал биочипа. Инкубируйте биочипы в биозащитном колпаке в течение 60 минут, а затем вакуумируйте аспирацию раствора фибронектина. Наконец, поместите две стерильные трубки для биочипов на порты биочипов и отложите биочипы в сторону до тех пор, пока клетки не будут готовы к посеву.

Извлеките из инкубатора одну сливающуюся колбу Т-175, содержащую жаберные эпителиальные клетки радужной форели, и поместите ее в колпак биобезопасности. Одна конфлюирующая колба Т-175 сможет засеять примерно 16 биочипов. Отсасывайте среду из клеток.

Промойте их PBS и отасуньте PBS. А затем добавить в клеточный слой шесть миллилитров раствора Трипсин-ЭДТА. Выдерживайте колбу при комнатной температуре около пяти минут.

Затем добавьте 15 миллилитров полной среды для клеточных культур L-15 в каждую колбу, чтобы деактивировать трипсин. Возьмите небольшую аликвоту из клеточной суспензии и с помощью гемоцитометра измерьте концентрацию клеток. Рассматривайте клетки с помощью светлопольного микроскопа, оснащенного 10-кратным объективом.

Затем рассчитайте текущую концентрацию клеток и отрегулируйте клеточную суспензию до концентрации четверти миллиона клеток на миллилитр. Далее с помощью стерильного шприца объемом 20 миллилитров введите по 2,5 миллилитра клеточной суспензии во внешний порт каждого канала биочипа. Дайте суспензии с дополнительными ячейками вытечь из трубки в контейнер для отходов.

Затем создайте замкнутый контур для каждого канала биочипа, вставив свободный конец шланга с фитингом Люэра во внешний порт для каждого канала. Затем смочите бумажное полотенце с 70% этанолом и используйте его, чтобы стереть излишки среды с замкнутых контуров. Затем поместите биочипы обратно в пластиковую коробку.

На четвертый и седьмой день извлеките биочипы из инкубатора. И замените среду в биочипах на сбалансированную по температуре полную среду для клеточных культур L-15. После седьмого дня кормления снимите и откиньте шланги от чипов и вставьте сливные пробки автоклава в биочипы.

Поместите биочипы в коробку в инкубаторе с температурой шести градусов Цельсия до тех пор, пока они не будут использованы для тестирования. Извлеките тестовый считыватель ECIS и расходные материалы из чехла для переноски, а затем включите считыватель. Также достаньте один из подготовленных биочипов из шестиградусного инкубатора и поместите его на бумажное полотенце.

С помощью шприца объемом 10 миллилитров налейте 10 миллилитров контрольной воды в прозрачную пластиковую банку объемом 0,5 унции. Обязательно удалите пузырьки для точного измерения. Затем используйте отдельный шприц и налейте 10 миллилитров тестового образца в прозрачную пластиковую банку объемом 0,5 унции.

Далее извлеките два порошкообразных флакона со средой. Откройте один из порошкообразных пробирок и вылейте все содержимое одного флакона в банку с контрольной водой, опустив весь флакон в раствор. Повторите эту процедуру с тестовой банкой.

Затем закупорьте и встряхните банки, чтобы убедиться, что порошок полностью растворился. Наполните синий шприц объемом 10 миллилитров девятью миллилитрами контрольного раствора. И красный 10-миллилитровый шприц с девятью миллилитрами тестового раствора из соответствующих флаконов.

Удалите из шприцев все имеющиеся пузырьки воздуха. Далее снимаем заглушки с портов биочипа и прикрепляем слив. Поместите биочип в съемный пластиковый лоток в считывателе ECIS, закройте крышку, а затем прикрепите заполненные шприцы к внешним портам биочипа.

Наконец, прикрепите поршни шприца. На главном экране устройства чтения нажмите кнопку Далее, чтобы начать предварительный тест. Затем программное обеспечение проверит начальные импедансы.

Если импедансы находятся в пределах допустимого диапазона, на экране появится сообщение «Картридж пройден» и пользователю будет предложено выбрать «Далее». Затем введите сведения о образце с помощью виртуальной клавиатуры, а затем нажмите кнопку Принять, когда закончите. На этом этапе данные о импедансе будут собраны за две минуты со вставленного биочипа, а экранный таймер будет отсчитывать время.

Через две минуты нажмите кнопку «Далее». Когда мигающим зеленым прямоугольником будет предложено ввести образцы сейчас, введите контрольную и тестовую среду из подключенных шприцев одновременно в каналы биочипа. По окончании оставьте шприцы на месте на биочипах.

Если программное обеспечение считывателя ECIS определит, что канал обработки статистически отличается от контрольного канала в любой момент испытания, на экране появится указание на то, что образец загрязнен. В противном случае это будет означать, что в конце периода мониторинга загрязнение не обнаружено. Запишите результаты теста как «Загрязненные» или «Не загрязненные» для каждого образца.

По окончании тестового прогона извлеките и выбросьте биочип. Промойте и высушите на воздухе шприцы, тестовые флаконы и съемный пластиковый лоток, в котором размещался биочип во время испытаний. 13 химических веществ, представленных на снимке, были отобраны для тестирования в качестве представителей широкого спектра токсичных промышленных соединений, которые могут быть возможными загрязнителями питьевой воды.

Во время тестирования девять из 13 были обнаружены с помощью измерения импеданса подложки электрического элемента в течение часа в концентрациях, которые имеют отношение к здоровью человека. Здесь показаны типичные выходы, которые можно увидеть после испытания на измерение импеданса подложки электрической ячейки. Загрязненные образцы в конечном итоге имеют значительно более низкие уровни импеданса по сравнению с контрольными пробами чистой воды.

После просмотра этого видео вы должны хорошо понимать, как получить биочип с монослоем жаберных эпителиальных клеток радужной форели и впоследствии использовать этот биочип в тесте на токсичность на основе импеданса для оценки токсичности питьевой воды. Пытаясь выполнить эту процедуру, важно помнить об асептической работе при подготовке биочипов, а также хранить биочипы в холодильнике до тех пор, пока они не будут использованы. Каждый биочип может быть использован только один раз, а затем должен быть утилизирован.

После освоения биочипа подготовка может быть выполнена примерно за 10 минут. Это оценка, потому что чипсы готовятся партиями. Испытание импеданса образца, включая подготовку образца, занимает около одного часа 10 минут, если оно выполнено правильно.

После этой процедуры другие методы, такие как аналитическая химия, могут быть применены к образцу, который дал загрязненный результат, чтобы идентифицировать подозреваемое химическое вещество или химические вещества. Разработка этого метода открывает путь для исследователей, заинтересованных в определении токсичности воды, к использованию технологии с использованием эпителиальных эпителиальных клеток радужной форели и импедансного зондирования. Мы надеемся, что вы найдете эти методы полезными, и с нетерпением ждем будущих инноваций, которые эти новые возможности могут помочь облегчить.

Спасибо и хорошего дня.

Explore More Videos

Науки об окружающей среде выпуск 109 Рыба-клетки импеданс датчики биочип токсичность воды ECIS монослой полевые переносные

Related Videos

Метод на основе микрофлюидных чипов для экспресс-анализа хемотаксиса нейтрофилов с использованием цельной крови

03:54

Метод на основе микрофлюидных чипов для экспресс-анализа хемотаксиса нейтрофилов с использованием цельной крови

Related Videos

604 Views

Микрофлюидных Чип для Универсальный химического анализа отдельных клеток

15:41

Микрофлюидных Чип для Универсальный химического анализа отдельных клеток

Related Videos

15.5K Views

Микрожидкостных основе Электрохимический Биочип для этикеток без анализа ДНК-гибридизации

14:53

Микрожидкостных основе Электрохимический Биочип для этикеток без анализа ДНК-гибридизации

Related Videos

17.9K Views

Проектирование микрожидком устройств для исследования клеточных реакций по разовым или сосуществующих Chemical / Electrical / касательное напряжение раздражители

10:35

Проектирование микрожидком устройств для исследования клеточных реакций по разовым или сосуществующих Chemical / Electrical / касательное напряжение раздражители

Related Videos

9.4K Views

Сухой пленки фоторезиста на основе электрохимический биодатчик Microfluidic платформа: Изготовление устройств, на чипе Assay подготовка и работы системы

13:42

Сухой пленки фоторезиста на основе электрохимический биодатчик Microfluidic платформа: Изготовление устройств, на чипе Assay подготовка и работы системы

Related Videos

12.5K Views

Регенерация выстроились золото микроэлектродов, оборудованных для анализатора в реальном времени ячейки

12:47

Регенерация выстроились золото микроэлектродов, оборудованных для анализатора в реальном времени ячейки

Related Videos

7.6K Views

Изготовления и проверки системы орган на чипе с интегрированной электроды непосредственно поддается трансэндотелиальной электрическое сопротивление

10:51

Изготовления и проверки системы орган на чипе с интегрированной электроды непосредственно поддается трансэндотелиальной электрическое сопротивление

Related Videos

17.1K Views

Простой подход к выполнению измерений TEER с использованием самодельного Вольт-Ампереметра с программируемой частотой вывода

07:43

Простой подход к выполнению измерений TEER с использованием самодельного Вольт-Ампереметра с программируемой частотой вывода

Related Videos

23.7K Views

Электроуттинг на основе цифровой микрофлюидной платформы для автоматизированного фермента связанных Иммуносорбент Ассей

08:22

Электроуттинг на основе цифровой микрофлюидной платформы для автоматизированного фермента связанных Иммуносорбент Ассей

Related Videos

10.3K Views

Электрическое зондирование ячейки-подложки для оценки токсикологических профилей металлоорганического каркаса в режиме реального времени

04:53

Электрическое зондирование ячейки-подложки для оценки токсикологических профилей металлоорганического каркаса в режиме реального времени

Related Videos

1.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code