Back to chapter

6.8:

Le réplisome

JoVE Core
Molecular Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Core Molecular Biology
The Replisome

Languages

Share

La réplication de l’ADN est effectuée par un assemblage multiprotéique hautement coordonné, connu comme machine de réplication de l’ADN, ou réplisome, qui augmente l’efficacité de la réplication de l’ADN. Les principaux composants de la machine sont l’hélicase, les protéines de liaison de l’ADN simple brin, l’ADN primase, les pinces coulissantes, un chargeur de clamp, et plusieurs ADN polymérases, qui sont tous associés les uns aux autres près de la fourche de réplication. Les ADN polymérases réplicatives ont une processivité d’environ 10 nucléotides, qui est le nombre de nucléotides qu’elles peut ajouter au brin fille avant de se dissocier du brin modèle.Cela n’est pas assez efficace pour copier des génomes entiers dans un délai raisonnable, et ce problème est résolu à l’aide de protéines à pince coulissante. Lorsque l’ATP s’associe à la protéine chargeur de clamp, ils se lient et ouvrent la pince coulissante, de sorte que sa structure en anneau puisse entourer le complexe d’ADN amorce-matrice. Une fois lié, le chargeur de clamp hydrolyse l’ATP en ADP, ce qui provoque la disassociation du chargeur de clamp et la fermeture du clamp autour de l’ADN.L’ADN polymérase se lie ensuite aux protéines clamp. Et ensemble, ils glissent le long de l’ADN modèle, rattachant l’ADN polymérase au brin et augmentant sa processivité jusqu’à 1 000 nucléotides. Cette processivité accrue permet à l’ADN polymérase d’effectuer une réplication continue de l’ADN sur le brin avancé.Toutefois, sur le modèle brin retardé, une autre ADN polymérase effectue une réplication discontinue de l’ADN de manière à permettre aux molécules d’ADN polymérase de synthétiser simultanément les brins avancés et retardés. Ce processus est parfois décrit comme le modèle du trombone. Le brin retardé et son brin modèle forment une boucle lorsque l’ADN polymérase initie la synthèse de fragments Okazaki à partir d’un amorce d’ARN.La boucle d’ADN se développe dans les deux sens lorsque l’hélicase déroule l’ADN et que le brin retardé est synthétisé. Lorsque l’ADN polymérase rencontre l’amorce d’ARN suivante, elle se détache du brin modèle. Pendant ce temps, la primase ajoute une autre amorce au brin retardé.Et la boucle d’ADN en croissance est libérée. Les protéines clamp et chargeur de clamp permettent à l’ADN polymérase de se réassocier rapidement au modèle d’ADN amorcé. La formation et l’effondrement subséquent de la boucle d’ADN se répète avec la synthèse de chaque nouveau fragment d’Okazaki.

6.8:

Le réplisome

La réplication de l’ADN est réalisée par un grand complexe de protéines qui agissent de manière coordonnée pour obtenir une réplication de l’ADN haute fidélité. Ensemble, ce complexe est connu sous le nom de machinerie de réplication de l’ADN ou réplisome.

La synthèse des brins avancés et retardés est un processus hautement coordonné. Pour expliquer cela, le “modèle Trombone” a été proposé par Bruce Alberts en 1980. La formation de la boucle d’ADN commence lorsqu’une amorce est synthétisée sur le brin parent en retard. La boucle grandit avec la synthèse d’un fragment d’Okazaki et se dissout finalement lorsque la synthèse du fragment se termine. L’ADN polymérase se fixe ensuite à une autre amorce et le cycle entier, de la formation de la boucle à la dissociation, est répété. Le réplisome permet à toutes les activités d’être coordonnées comme un complexe de machine de réplication.

Composants du réplisome

Les hélicases déroulent et séparent l’ADN double brin  Ces enzymes sont présentes sous la forme d’un seul cycle hexamère chez les procaryotes et sous forme de double cycle hexamère chez les eucaryotes. Les hélicases eucaryotes dépendent de protéines supplémentaires, Cdc45 et GINS, pour fonctionner.  Les protéines de liaison à l’ADN simple brin (SSB) empêchent les brins d’ADN de se réhybrider.  Chez les procaryotes, les SSB sont constituées d’une seule sous-unité, tandis que chez les eucaryotes, il s’agit d’une protéine hétérotrimérique connue sous le nom de protéine de réplication A (RPA).

La primase ajoute une amorce d’ARN à l’origine de la synthèse d’ADN.  Chez les procaryotes, la primase est présente sous la forme d’une enzyme à sous-unité unique appelée DnaG, qui synthétise une amorce d’ARN d’environ 12 nucléotides.  Chez les eucaryotes, une enzyme à plusieurs sous-unités, l’ADN polymérase primase-α synthétise une amorce hybride ARN-ADN d’environ 25 nucléotides. En plus de la polymérase, la polymérase réplicative étendra l’ADN nouvellement synthétisé. Alors qu’un seul type de polymérase réplicative, l’ADN polymérase III, est présent chez les procaryotes, deux types différents de polymérases réplicatives, Pol ε et Pol δ, sont présents chez les eucaryotes, pour la synthèse des brins principaux et retardés, respectivement. 

Les protéines à pinces coulissantes (sliding clamp) maintiennent les polymérases attachées à la matrice d’ADN.  β-clamp, une protéine homodimérique, agit comme la pince chez les procaryotes. Chez les eucaryotes, la même tâche est réalisée par l’antigène nucléaire de prolifération cellulaire (PCNA), une protéine homotrimérique. Le pore central de la pince coulissante est chargé positivement, ce qui lui permet d’avoir des interactions électrostatiques avec le squelette phosphate chargé négativement de l’ADN. La pince est attachée à l’ADN par un chargeur de clamp. Ces protéines pentamères appartiennent à la classe AAA+ des ATPases. Le chargeur de clamp eucaryote est connu sous le nom de facteur de réplication C, tandis que le procaryote E. coli le chargeur clamp est connu sous le nom de complexe γ cependant, les protéines clamp et les chargeurs de clamp sont considérés comme des homologues évolutifs contrairement à de nombreux autres composants du réplisome.

Suggested Reading

  1. O’Donnell, Michael, Lance Langston, and Bruce Stillman. "Principles and concepts of DNA replication in bacteria, archaea, and eukarya." Cold Spring Harbor Perspectives in Biology 5, no. 7 (2013): a010108.
  2. Alberts, Bruce. "DNA replication and recombination." Nature 421, no. 6921 (2003): 431.
  3. Kelch, Brian A., Debora L. Makino, Mike O'Donnell, and John Kuriyan. "Clamp loader ATPases and the evolution of DNA replication machinery." BMC Biology 10, no. 1 (2012): 34.
  4. Hedglin, Mark, Ravindra Kumar, and Stephen J. Benkovic. "Replication clamps and clamp loaders." Cold Spring Harbor Perspectives in Biology 5, no. 4 (2013): a010165.
  5. Gardner, Andrew F., and Zvi Kelman. "The DNA Replication Machinery as Therapeutic Targets." Frontiers in Molecular Biosciences 6 (2019): 35.