Fett pad ambition är att föredra, minimalt invasiva och låg kostnad förhållningssätt jämfört med andra metoder för att upptäcka amyloid för diagnostik av systemisk amyloidos. Denna video artikeln visar en processuella disposition för att utföra fett pad aspiration med lämplig behandling av provet för den optimala diagnostiska resultatet.
Historiskt sett var hjärta, lever och njure biopsier för att visa amyloid insättningar i amyloidos. Eftersom den kliniska presentationen av denna sjukdom är så varierande och icke-specifika, riskerna för dessa biopsier är för stora för det diagnostiska utbytet. Andra webbplatser som har en lägre biopsi risk, såsom hud eller tandkött, är också relativt invasiva och dyrt. Dessutom kan dessa biopsier inte alltid har tillräckligt amyloid insättningar för att fastställa diagnosen. Fett pad aspiration har visat god klinisk korrelation med låga kostnader och minimal morbiditet. Det finns dock inga standardiserade protokoll för att utföra detta förfarande eller behandling av det aspirerade provet, vilket leder till varierande och nonreproducible resultat. Den mest frekvent utnyttjade modalitet för detektion av amyloid i vävnaden är ett äpple-gröna dubbelbrytning på kongorött färgade snitt med ett polariserande mikroskop. Denna teknik kräver förberedelse cell block av aspirerade materialet. Tyvärr patienter i tidigt skede av amyloidos har minimala mängder amyloid vilket kraftigt minskar känsligheten Kongo röda färgade snitt cell block av fett pad aspirat. Därför bör ultrastrukturella utvärdering av fett pad aspirat med elektronmikroskopi användas, med tanke på ökad känslighet för amyloid upptäckt. Denna artikel visar en enkel och reproducerbar metod för genomförande främre fett pad strävan för detektion av amyloid använda både Kongo rödfärgning av sektioner Cell Block och elektronmikroskopi för ultrastrukturella identifiering.
Diagnos av amyloidos uppnås vanligen med en vävnad biopsi av de drabbade organ såsom njurar, lever och / eller hjärtat. Denna metod har hög diagnostisk avkastning, dock är invasiv och kan vara förenat med komplikationer, inklusive blödning 2. Ändtarm, tandkött och benbiopsier benmärg var att föredra för diagnos som relativt sett mindre invasiv strategi i 1960 6,7,8. Bukfett pad aspiration har rapporterats i 1973 som en säker, minimalt invasiva, enkelt och billigare förfarande för vävnaden diagnosen systemisk amyloidos 1. Men det är detaljerna i förfarandet och förhållningssätt till behandling av de hämtade provet inte konsekvent rapporteras. Denna video och artikeln beskrivs det förfarande steg för steg.
Den metod för att upptäcka amyloid i fett pad aspiration, samma sätt är inte heller bra standardiserad med några studier som jämför och utvärderar olika angreppssätt 1,5,6,7,8. Utvärdering av främre fett pad aspirat med Kongo röda färgningen är mindre känslig med lägre interobserver reproducerbarhet särskilt i tidiga fall av amyloidos med knappa amyloid avlagringar 5. Immunohistokemi utföras på formalinfixerade fast paraffininbäddade Cell Block sektioner och kongorött fluorescens utförs på cytologi utstryk har rapporterats för att förbättra den diagnostiska sensitiviteten 9,10. Elektronmikroskopi förbättrar upptäckt och identifiering av knappa amyloidfibrerna i små väggar blodkärl i fibroadipose vävnaden i fett pad aspirat 4, 5. Baserat på denna information, beskriver denna artikel bearbetning av provet för att förbereda cell block (för utvärdering av kongorött färgade snitt cell block under polariserande mikroskop för diagnostik äppelgrön dubbelbrytning och även för immunhistokemi som anges) och för elektronmikroskopi. Men beroende på den strategi som valts för utvärdering av provet för amyloid, kan det bli föremål för cytologi smutskasta förberedelse, Cell Block förberedelse och bearbetning för elektronmikroskopi. Vissa laboratorier utför testerna på smetas förberedda från aspirerade fragment fibroadipose vävnad och färgas med kongorött att studera fluorescens 10.
Generellt i en sen amyloidos kan ljusmikroskopi med kongorött polariserande mikroskopi vara tillräcklig, men i tidiga skeden av sjukdomen kongorött färgning med polariserande mikroskopi på delar cell block är mindre känslig och tillförlitlig för fett pad aspirat 4,5,11 . Andra speciella fläckar inklusive Thioflavin T kan användas med samma begränsningar. Andra metoder för att upptäcka amyloid inkludera utvärdering av aspirera utstryk för amyloid med kongorött polariserande mikroskopi och fluorescens 10. Enligt vår erfarenhet här metoden är mindre reproducerbar. Utvärdering av blodkärl i fett pad för amyloid genom elektronmikroskopi övervinner dessa begränsningar 4,11. Ytterligare karakterisering av amyloid har rapporterats av immunoelectron mikroskopi 12, dock kan dessa metoder inte är tillgängliga i stor utsträckning i en icke-tertiär vårdmiljö.
Nålar som används för att utföra aspiration förfaranden kan kategoriseras enligt sin mäta storleken på böterna (21-25G), intermediära (18-20G), och stora (t.ex.-14G) 11. Anterior fett pad ambitioner har rapporterats utföras med variabel spårvidd från mellanliggande (18 till 20G) för fina (21 till 22 g) 2,10. Flesta av de stora skador är aspirerat med nålar finare mätare (t.ex. 25G) för att få bra cytologi fläckar tillsammans med ytterligare passerar med en bredare nål (t.ex. 18G) för att hämta ytterligare ett prov för cell block.
Under främre fett pad aspiration, inte aspirera sammanhållande fibroadipose vävnaden inte bra med finare nålar. Cell Block förberedelse och elektronmikroskopi är viktiga för bedömning av små blodkärlens väggar i fragment fibroadipose vävnad i fett aspirat. Bredare spårvidd nålar (såsom 18G) rekommenderas att ge diagnostiska lämpligt material 2,10. Eftersom förfarandet är jämförbart med den konventionella FNAB, är fett pad strävan kallas FNAB trots bredare spårvidd nålar kan användas för att utföra den 5.
The authors have nothing to disclose.
Vi tackar Ms Bonnie Phetteplace, RN för assistans under video grafritning det FNAB förfarande demonstrationen.
Alcohol swabs, gauze pads, marking pen, 10 mL syringes x2, 1% lidocaine (local anesthetic- If lidocaine is used alone, it causes an initial burning sensation after instillation. This can be prevented by using a 1:1 mixture of 1% lidocaine and 1% sodium-bi-carbonate), 18 gauge(G) 1 ½ inch needles x2 (for performing FNAB), 25G 1 ½ inch needle (for injecting local anesthetic), FNA syringe holder (“gun”), bandage, vial of glutaraldehyde (for electron microscopy), and biopsy container of 10% formalin.