Оптимизированный протокол для выделения стволовых клеток из мыши слюнной железы описана. Метод использует ферментативной и механической пищеварение, и позволяет изоляции salispheres содержащие клетки с характеристиками стволовых клеток.
Зрелые слюнных желез как человеческие, так и мышь происхождения составляют менее пяти типов клеток, каждый из которых обеспечивает производство и выделение слюны в полости рта. Серозный и клеток слизистой ацинарных являются белков и слизистых заводы железы, соответственно, и представляют происхождение выработку слюны. Как только синтезируется, различные ферментативные и другие белковые компоненты слюны выделяются через ряд протоков эпителиальных клеток, несущих типа морфологии, до возможной высылке слюной через один крупный канал в полость рта. Состав слюны также влияет протоков клеток во время этого процесса.
В проявлением таких заболеваний, как синдром Шегрена, а в некоторых клинических ситуациях, таких как лучевая терапия для лечения рака головы и шеи, слюны производства желез резко сокращается 1,2. В результате сухость во рту, субъективное ощущение сухости во рту, влияет не только на способности пациента глотать и говорить, но и способствует развитию кариеса зубов и может быть социально изнурительных для больного.
Восстановление выработку слюны в вышеупомянутых клинических состояний, следовательно, представляет неудовлетворенных клинической необходимости, и в этом качестве несколько исследований показали, регенеративная способность слюнных желез 3-5. В дополнение к изоляции стволовых клеток, как популяций клеток из различных тканей в мыши и человеческих тел, 6-8, мы показали, описанным способом, что стволовые клетки, выделенные из мыши слюнных желез могут быть использованы, чтобы спасти производство слюны при облучении слюнных желез 9,10. Это открытие открывает путь к развитию на основе стволовых клеток терапий для лечения xerostomic условиях в организме человека, а также для исследования слюнных желез, как микросреда, содержащих клетки с мультипотентные самообновлению возможностей.
Метод культуры тканей, описанные здесь представляет воспроизводимый протокол для выделения стволовых клеток, содержащих salispheres из слюнных желез мышей. Исследования с использованием клеток, выделенных таким образом выявили регенеративная способность слюнной железы стволовыми клетками 9. Трансплантация сто с-Kit + клетки, полученные из индуцированных salispheres функционального восстановления облученных мышей слюнных желез. Эти данные являются захватывающими и обеспечить отправную точку для исследования стволовых клеток для терапии, основанной на сухость во рту. Многие пути еще предстоит исследовать однако, в том числе полного маркера экспрессии белка профиля стволовых клеток, способность подчелюстной желез, чтобы спасти функции облученных околоушной слюнной железы, и наоборот, и характеристика предполагаемых в естественных условиях стволовые клетки ниши клеток. В конечном счете, перевод этот протокол для образцов человеческой ткани и последующем потенциал для лечения ксеростомии в человеческом пациентов с использованием изолированных клеток является самым захватывающим применения описанного метода.
The authors have nothing to disclose.
Material Name | Type | Company | Catalogue Number | Comment |
---|---|---|---|---|
Hyaluronidase | Sigma | H3506 | Store at – 20 °C | |
Collagenase II | Gibco | 17101-015 | Store at 4 °C | |
Epidermal Growth Factor-2 | Sigma | E9644 | Make a stock of 10 μg / mL in phosphate buffered saline (PBS). Store at – 20 °C in single use aliquots. | |
Fibroblast Growth Factor-2 | Sigma | F0291 | Make stock of 25 μg / mL in PBS. Store at – 20 °C in single use aliquots. | |
N2 supplement | Gibco | 17502-048 | As manufacturer instructions. | |
Insulin | Sigma | I6634 | Make stock of 2 mg / mL in tap water. Adjust water to pH 2-3 using glacial acetic acid prior to dissolving. | |
Dexamethasone | Sigma | D4902 | ||
100 μM pore-size sterile cell strainers | BD Falcon | 352360 | ||
Polystyrene round-bottomed tubes with cell strainer caps (50 μM pore size) | BD Falcon | 352235 |