プロトコルを提示大腸菌-lactococcal ・抗菌ペプチド ・ ナイシンに非正規アミノ酸類 (ncAAs) の選択的な圧力の取り込みをベースします。そのプロパティは、定義された成長媒体の目的の ncAAs で組換え発現を介して置換中に変更できます。結果として得られる活性変化は成長阻害アッセイ、蛍光顕微鏡でマップされます。
自然には、様々 な個々 のアミノ酸構成ブロックのシーケンスを変更することにより新しいタンパク質機能を作成する可能性があります。ただし、すべてのバリエーションは 20 標準的なアミノ酸 (cAAs) に基づいています。ポリペプチドに追加の物理化学的性質を導入する方法として非正規のアミノ酸類 (ncAAs) の取り込みはますますタンパク質工学で使用されます。彼らの比較的短い長さのため ncAAs による ribosomally 合成とファーストクリーニング変更されたペプチドの変更は特に魅力的です。新しい機能や化学処理は、アミノ酸残基の特定の変更によって生成できます。選択圧定款 (SPI) 方法は、化学的に定義された成長媒体で必須アミノ酸の奪われている栄養要求性ホスト系統を利用します。いくつかの化学的に構造的に類似したアミノ酸アナログ対応するアミノアシル tRNA 合成酵素によってをアクティブにすることができ、残基特異 cAA(s) → ncAA(s) 置換対象のペプチドや蛋白質の配列を提供します。とはいえ、SPI メソッドのコンテキストで ncAAs 組み込まれているホスト プロテオーム組換え遺伝子発現の段階で、セルのリソースの大部分は、ターゲット遺伝子の発現に割り当てられます。これにより効率的な残基特異 ncAAs しばしば変更されたターゲットの多量を伴って定款です。提示された作品は、抗菌ペプチド ナイシン、ラクトコッカス乳酸菌によって生成される自然ランチビオティックに六つのプロリン類縁体の体内取り込みをについて説明します。ナイシンの抗菌特性を変更してその発酵と栄養要求性大腸菌での発現の間にさらに拡大すること定義されている成長媒体の系統。それによって、cAAs ncAAs で特定の残基置換の効果は、抗菌活性と特異性に変更を配信できます。抗菌活性アッセイ、蛍光顕微鏡を使用してグラム陽性ラクトコッカス乳酸菌インジケーターひずみを成長阻害するナイシンの変種をテストします。質量分析法を使用して、生理活性ナイシンの変形 ncAA 定款を確認しました。
20 世紀における抗生物質の発見と有効な病原性微生物に対する新規抗菌剤の並行開発は、細菌感染症の治療を対象としました。しかし、メチシリン耐性Staphylococcusaureus (MRSA)、バンコマイシン耐性腸球菌 (VRE) などの多剤耐性の病原体の出現により MDR (多剤耐性)サルモネラファージ型 10 (DT10)、クレブシエラ、緊急新しい抗菌剤1を生成する必要があります。抗菌ペプチド (アンペア) は、物理化学的性質、柔軟性、サイズ、疎水性、およびアクション2のモードのおかげで新薬の開発のための有望な候補者は、汎用性の高い、多くの場合非常に特定の化合物です。アンプは、通常 7 100 アミノ酸からなる小さなペプチドです。多くの場合、逆3の電荷は、対象となる微生物細胞膜と相互作用する正荷電アルギニンとリジンの残余の豊富なカチオン性構造であること。アンプの特定のサブグループは、ribosomally 合成と posttranslationally 変更されたペプチド (RiPPs)4です。これらは菌類の王国と細菌のドメインから多くの生物によって生成されます。最もよく知られた、広く使用されている RiPPs の 1 つは、ナイシン、自然に乳酸菌ラクトコッカス乳酸菌(乳酸菌 l.) によって生成です。グラム陽性菌のパネルに対してアクティブ、ナイシンとして使用されています食品業界で biopreservative その抗菌特性と対象微生物系統5に進化した抵抗の不在のため 50 年以上。研究は、そのナイシンを不安定ベビーブーム、両方のグラム陽性およびグラム陰性の病原体6に対する抗菌活性につながる細菌の細胞膜に孔が生成されますを示しています。脂質 II に結合することにより細菌の細胞壁合成は抑制7です。ナイシンは、リーダーおよびコア ペプチド領域 (図 1) で構成されている線形前駆体ペプチドとして保安院によってエンコードされます。リボソーム合成後 prenisin は最初その脱水酵素によって変更されます。ここでは、prepeptide のコア領域のセリンやスレオニン残基が dehydroalanine (Dha) と dehydrobutyrine (Dhb)8にステータス退避。その後、脱水残渣、ランチオニン リングにシステインと結合 (したがってランチオニン リングを含む抗生物質の名前「ランチビオティック」) 酵素触媒のマイケル付加によって。この翻訳後修飾 (PTM) は、内閣官房酸シクラーゼにより触媒されます。L. 乳酸菌で変更された prenisin でトランスポーター NisT、セルから、運ばれて、リーダーのペプチッドは成熟しており、アクティブなナイシン フォーム9を解放する NisP, プロテイナーゼ切断します。責任あるリーダー ペプチダーゼ NisP は高い基質特異性、効率的にプロセスだけの変更ナイシンをそれ以来10。
一般に、アクティブな RiPPs は、リン酸化やメチル化糖鎖を介して例えば、アセチル化ペプチドの化学の領域を大幅に増やす PTM 酵素 (例えば NisBC) の行動から生じる。複雑さのこのレベルは ncAAs の直接結合によってさらに拡張できます。一方、多くの場合実現可能なアンプの化学合成はその構造の複雑さのための大規模な生産のための挑戦です。たとえば、ランチビオティック lactosin S 71 の反応段階での全化学合成はたった 0.00311,12の粗利回りナイシンの最終利回りは 10% で達成されました。したがって、生物生産は正しい stereocenters と高濃度生成のための現実的な選択肢を提供しています。
今日まで以上 150 ncAAs、例えば、フッ素またはアザイドを含む官能基を有するは、組換えタンパク質に組み込まれている、ncAA 変更アンペアのいくつかの例が報告された13,14をされています。 15,16。NcAAs の導入に伴い、従来の突然変異誘発と比較して新規の物理化学的性質を生成できます。おそらく新規抗生物質につながる既存のペプチドの多様性を増やすことができます。
NcAAs の組換えペプチドへの取り込み方法栄養細菌系統17の使用に基づいて選択的な圧力混入 (SPI) であります。これらの系統は、ncAA の対応する cAA アナログを合成することではありません。方法論は頻繁に観察されたリラックスした基質特異性、多くの自然のアミノアシル tRNA シンテターゼ (Aars)18の機能を使用しています。その自然の cAA 基板から離れて、これらの酵素は認識し目的の ncAA を有効にし、同種の tRNA(s) にそれを充電することができる多い。これは (すなわちcAA → ncAA 置換) 残基特異的ターゲット遺伝子産物に ncAA のリボソームの設立に します。もちろんのみ可能目的の ncAA は構造的に、化学的に標準的なアミノ酸に似ている場合、細胞生理学、翻訳機械およびターゲットのペプチドや蛋白質の配列を容認します。特定の実験のセットアップで栄養要求性ホスト セル置換するネイティブのアミノ酸の限界濃度に付属している培地で培養されます。細胞増殖や cAA 自由な媒体による交換は、cAA の細胞の枯渇に します。次の手順で、ncAA が追加され、ターゲット遺伝子の発現が誘導されます。必然的に、ncAAs 今も組み込まれますしない宿主細胞の他の多くのタンパク質ターゲット遺伝子発現のこの段階で。それにもかかわらず、エシェリヒア属大腸菌(E. 大腸菌) ひずみと強力なプロモーターの制御下でターゲット遺伝子を運ぶプラスミッド変換されますので、低レベルで SPI セットアップの毒性がされます (一般競争力の高い T7 プロモーター/RNA ポリメラーゼ システム)19。誘導 (通常時 cAA が使い果たされる)、細胞が成長を停止するホストおよびその細胞質酵素からくり後すぐにプラスミドを用いた対象遺伝子の発現に主に使用されます。サイト指示された突然変異誘発は、ターゲット遺伝子20残基特異 ncAA インストールのサイトを定義する使用できます。
NcAAs の定款モデル ペプチドとしてラダーポリマー アンプ ナイシン A が選ばれました。34 アミノ酸長くがあり、コア ペプチド シーケンス (図 1) にのみ単一のプロリン残基を持ちます。サチライシン、ericin A と S、epidermin 同様ナイシン Z とナイシン Q のようのように活動9,21のために不可欠の保存のプロリンがようです。CAA プロリン プロリン アミド回転および二次構造の安定化に特に重要な役割を果たしています。側鎖の立体構造のリング (exo 遠藤シームパッカ リング/) アミド結合の熱力学的安定化を担当します。折りたたみの安定性、足場の剛性、多くの生物学的構造22の機能 (アントシアン、fluorinations、メチル化) など対象の化学修飾プロリルたたんのしばしば批判的に影響を与えます。したがって、それはもっともらしい Pro→ プロリン アナログ置換が小説と珍しい特性リング B、ナイシンの 2 番目のリングが授けるされますを期待します。
ここでは、プロリン栄養組換えナイシン生産大腸菌の菌株を使用しました。Prepeptide 遺伝子保安院として修飾酵素遺伝子nisBCの式が必要です。遺伝的コード化ペプチド製品は、アフィニ ティー ・ クロマトグラフィーによる精製の N 末端タグ付きの彼リーダーを運ぶ。活性測定L. 乳酸菌を表現し、NisPT の分泌がエシェリヒア属大腸菌のセル lysates または精製ペプチドのサンプル (図 1) から組換えナイシンのバリエーションを有効に使用されます。成熟したアンプは、NisP によってリーダーの胸の谷間の後解放されます。この寒天平板拡散法でアンプ サンプルは固体成長する媒体に拡散し、グラム陽性菌の成長を抑制することができます。インキュベーション後、これは成長阻害ハローによって視覚的に観察することができます。L. 乳酸菌指標として、ほかの亜種ナイシン腸球菌、セレウス菌、黄色ブドウ球菌乳酸菌摂取に対する抗菌活性を示した21,23。
RiPPs の ncAAs を組み込むことの代替とは異なる実験的メソッドは停止コドン抑制 (SCS)24です。これは、直交 tRNA のアミノアシル tRNA 合成酵素 (aaRS) のペアが対応する ncAA のため必要。理想的には、すべてのこれらの 3 つのコンポーネントは、bioorthogonal、すなわち、彼らは内因性の Trna と Aars と対話しないが。NcAA 固有 aaRS は、変異シンテ25の遺伝子ライブラリのスクリーニングおよび酵素活性部位の修正によって生成できます。さらに、ncAA の導入では、コドンが再割り当てされ、cAA をエンコードしませんが必要です。一般的には、アンバー終止コドンは使用される24,26です。
最近では、SPI は、α chloroacetamide を含むとクリック-化学-互換性の ncAAs の定款の保安院27に設立されました。たとえば、 Nε– alloc リジンはルテニウム触媒を用いたオレフィンメタセシス28 によって部位特異的 (SCS) と残基特異 (SPI) 設立方法とその後変更された体外なげなわペプチド captistruin に編入されました。.SPI と比較して直交 tRNA から SCS メソッドはより複雑/aaRS ペアが共発現します。日には、プロリンの取り込みの o 組は開発29をされているが、我々 の知識の限り、プロリン アナログ定款例は報告されていません。
それは、SPI の手法を使用していないすべての ncAAs を組み込むことができます注意してください。まず、細胞質に ncAAs の取り込みは、大腸菌のようなグラム陰性菌の内膜は、細胞の膜に埋め込まれている輸送蛋白質の多数によって調整されます。通常、大腸菌は構造的に側鎖を有する細胞にアミノ酸酸類縁体の広い範囲を運ぶことができる、標準的なアミノ酸に化学的に類似。第二に、多くの化学反応性や不安定の ncAAs 彼らは有毒な代謝とホストの生理学細胞30細胞成長に向けた阻害剤として動作可能性があります。したがって、吸収および本番ホストの ncAA の毒性は事前テストする必要があります。天然のアミノ酸を組み込む修飾酵素 (例えば、nisBC) に副作用として PTM 機械の不活化を避けるためには、遺伝子の表現を厳密にコントロール セットアップを使用できます、ターゲット遺伝子 (に ncAA例えば、保安院)。これは、特別に設計された SPI プロトコル31に示すように 2 つの異なるプロモーターとターゲット遺伝子発現の誘導を使用して実現できます。上記のとおり、SPI 法は ncAA アクティベーションと同種の tRNA を充電可能にする Aar のリラックスした基質特異性に依存します。その後、tRNA はリボソームのアミド結合形成が続くし、ターゲット (ポリ) ペプチドのフォールディングに配信されます。このプロセスでは、校正と編集のメカニズムが関連する32になることがあります。これらの理由から、それはターゲットが存在する非常に重要なの ncAA cAA に化学的に構造的に似ています。その他の重要なポイントは、十分な安定性 (成長媒体の両方と細胞代謝にさらされて) および ncAA の溶解度。さらに、それは利用可能な商業的または化学的に合成されやすいはずです。
ここでは、SPI、組換え RiPPs に ncAAs の残基特異結合を許可するためのプロトコルについて述べる.特に、異なったプロリン類縁体の抗菌ペプチド ・ ナイシン A に組み込まれているホストの有機体として大腸菌を用いたします。質量分析法はアミノ酸置換を確認する使用され、ペプチド製品を成長阻害アッセイおよび微生物指標菌を使用して蛍光顕微鏡を用いた生体活性の分析します。
定義された ncAAs で成功した組換えナイシン式の基本的な要件が必要です適切なプロリン栄養要求性大腸菌。この栄養要求株、プロアならない機能不全、遺伝子のノックアウトによって例えば達成。細胞内のプロの生合成の細胞が完全に奪われた (すなわち、削除proABC) 安定した欠復帰の可能性なし。広く使われている遺伝子ノックアウト法、ファージ伝達または Datsenko ・ ワナーは33によると単一遺伝子ノックアウトです。さらに、プロアノックアウト系統は Addgene 級将校や慶應義塾コレクションなどの公開リポジトリから入手できます。組換えnisABC式は、T7 の促進者の使用に依存しているので、式のホスト株は T7 RNA ポリメラーゼの誘引可能な遺伝子を運ぶため持っています。これは、たとえば市販のキットを使用して、ホストのゲノムに λDE3 (64) の導入によって実現できます。また、上記のように栄養、BL21(DE3) などの緊張は作成できます。
プロリン類縁体の挿入の SPI を使用して、ターゲットを絞ったナイシン構造を大幅に変更一意のシーケンスの組み合わせや化学的性質を持つ新規ペプチドのバリアントを作成します。この方法で、20 cAAs の側鎖の化学的性質に制限する、古典的な遺伝子工学の基本制限を回避できます。生体内で化学の多様化ナイシン上記例示としては、自然の Ptm を補完するために、RiPPs の化学空間を劇的に向上させる一般的な方法を示します。アンプの特に偉大な約束を保持自然アミノ酸のレパートリーを拡大すると考えています。タンパク質の立体構造の 20 cAAs の定義された配置で機能の途方もない範囲が実現できます。長さ3にのみ 7 100 aa、cAAs を介してのみこのような構造の機能を実現する方法はアンプの限られたでしょう。それはこうして一般的 RiPPs の形で自然なアンプに広くファーストクリーニング修正4驚くべきことではないです。同じ方法では、代替のビルディング ブロックとして ncAAs は (バウマンら201735および参照をそこに見る)、薬力学及び薬物動態学的パラメーターを改善するために偉大な約束を保持します。
比較的簡単な実験のセットアップ、単純明快な実行と再現性の高いこの仕事の利点で使用される SPI 方法。グローバル置換対象ペプチドにマルチサイトの ncAA の設立も可能です。その一方で、メソッドは、ターゲット遺伝子産物の頻発のアミノ酸置換の適切でないかもしれません。原則として、サイト指示された突然変異誘発、望ましくない位置を変更できますが、これら追加の変更も構造と生物活性を含むいくつかのアンプ プロパティに影響を与える可能性があります。生産の栄養要求性の歪みがあり、一度は、遺伝子レベルの大幅な変更を必要とせずいくつかの ncAAs をテストできます。また、メソッドは栄養要求性大腸菌に限定しない系統しますが、自然な生産のホストを使用して実行できます。たとえば、周らは新規 RiPPs の生産のための SPI もで動作することを示した、当然 Trp auxotroph L. 乳酸菌: メディアを定義を使用して、3 つトリプトファン類縁体は、ナイシン50で 4 つのポジションで組み込まれました。
SPI 法選択のグローバル交換につながるので ncAA によって cAA、それはターゲットのペプチッドおよび蛋白質の広い範囲に一般に適用できます。範囲栄養要求性大腸菌の系統が利用できます (手順 1 を参照)、各 ncAAs で交換をテストするいくつかの cAAs を許可します。メタを使って組み込む類縁体に会った-欠損株 (例えば、 B834(DE3)) 採用が最も一般的。Isostructural Met 類縁体の例では、azidohomoalanine (Aha) と homopropargylglycine (Hpg)、市販の ncAAs 効率的に組み込むことができます。両方は、添付ファイルの互換性のあるアルキンまたはアジ化機能をそれぞれ運ぶ分子の bioorthogonal ハンドルをご紹介します。蛍光染料、またはポリエチレング リコール (PEG) 部分を銅 (I) により取り付けることがたとえば、-51アジ化物アルキンの環化付加反応 (CuAAC) を触媒。
両方遺伝子組換え ncAA 設立方法 (SPI と SCS) 通常十分な目標量を達成するため、対応するペプチッドおよび蛋白質の野生型生産基準利回りは頻繁に減る。純度は、多くの場合生産効率との相関、追加精製ステップ低豊富な種の特に必要かもしれません。組換えナイシン生産のこの特定のケースでセル lysates から選択的濃縮によってリーダーの彼の付けられたシーケンスはリップ浄化を大幅簡素化されます。このプロトコルに示すように精製純度とナイシン、濃度を向上しますが、しばしばアンプ純度収量および特定のアクティビティを決定するのに十分なを生成しません。高速液体クロマトグラフィー、クロマトグラフィー イオン交換 (IEC)、沈殿物、IMAC 以外にも一般的に使用されるアンプの浄化方法が含まれます (などアセトンまたはトリクロロ酢酸 (TCA) を使用して) または混合物 – 多段階浄化方式52 の結果。.注意すべきこと、ポリカチオン自然が IEC の浄化を促進する一般的。凍結乾燥はよく精製されたアンプを格納する使用されます。
理想的には、アンプに組み込むのための ncAAs は手頃な価格で市販する必要があります。 または、簡単にシンプルで再現性のある化学合成プロトコルによって生成されます。SPI 法の均等に重要な前提条件は、ncAA が認識、活性化および内因性や共発現 Aar によって同種の tRNA に充電します。これはテスト体外アミノ酸活性化または tRNA アミノアシル化アッセイ53でできます。簡単な代わりに、緑色蛍光タンパク質 (GFP) などのタンパク質モデルの SPI テスト式の存在の両方を行い ncAA 補充の不在で実行できます。さらに、成長中と細胞透過性と化学的安定性の溶解度は、重要な要因を構成します。
この例では抗菌作用はグラム陽性インジケーターひずみを使用して上映されました。リーダー ペプチダーゼ NisP を表して、ナイシン成熟の最終段階を触媒です。リーダー配列の除去 (彼のタグ付き浄化用) することも行われた体外精製 NisP50またはトリプシン54処理による。この仕事の範囲を超えて病原体と多剤耐性菌テストできます静菌や殺菌を阻害する同様の方法論を使用してアンプで。MRSA、MDR結核菌、VRE、アシネトバクター、肺炎球菌、緑膿菌、肺炎桿菌、臨床的に関連性の高いターゲット種が含まれます。寒天平板拡散ほかアッセイ表示ここでは、成長抑制は細菌種を接種した、アンプと補われた適切な液体のメディアを使用しても実行できます。スープの希釈方法を使用して、最小発育阻止濃度 (MIC) は純粋なペプチド55を使用して決定します。ここで紹介する作業の試金を生物活性と参照化合物、たとえば市販ナイシンを基準にしてアンプを含むソリューションの潜在的能力を推定する使用もできます。
RiPPs 組換え生産は多くの場合実現可能な39、よく PTM 遺伝子の共発現を含むです。生産ひずみが適した ncAA を含む化学的に定義されたまたは合成最小媒体に転送される、すぐに対応する cAA の特定の残基置換が行われます。したがって、組換え生産が可能で、ncAA の定款と PTM が対象製品の十分な量を得られる条件を見つけることができます、他の RiPPs を同じ手法で製作可能します。ホスト細胞プロテオームほかペプチド PTM 機械もなれると ncAA 変更 SPI の中に注意してください。その結果、ターゲット式誘導のタイミングと次の潜伏期間の長さは、最適化を要求できます。NcAA 混入 PTM 酵素に安定性と活動に影響する、ため加工リップの生産原則に影響を受けます。十分な PTM 酵素効果は、MS と生体活性アッセイによって検出された加工プレペプチドの形成によって示されます。PTM を生成するために、上記で紹介した異なる誘導性プロモーターを用いることができる ncAA の存在で続いて前駆体ペプチド遺伝子の誘導の最初 (ncAA の不在) の遺伝子。一般的には、前駆体遺伝子の厳しい弾圧が必要な理由である ncAA の加算の前に cAA を含むターゲット ペプチドの生産を抑制すること。このプロトコルでは、これは成長媒体にグルコースの添加による異化作用の抑圧によって実現されます。組換え生産はまだされていない場合、対応する遺伝子の発現温度とコドン使用が最適化を要求できます prepeptide 処理に必要な PTM 酵素が遺伝的に遠いホストと通常属しますので特に設立。NisBC や NisP は、原則として、プレペプチドの ncAAs の存在に認識とナイシンの場合、PTM の酵素の処理と干渉できます。アンプに ncAA 定款、適切な式の条件および AMP 活性測定法の信頼性を識別するために最初の小規模式実験を行うことはこうして勧めします。
The authors have nothing to disclose.
J.H.N.、結核と M.B. は、EU FW7 プログラム (SYNPEPTIDE) によって資金を認めます。F. j. s. およびタスクフォースオニオン連邦教育省 (BMBF プログラム「HSP 2020」、TU WIMIplus プロジェクト SynTUBio) 科学とドイツ研究振興協会 (クラスターのエクセレンス「Unifying 触媒概念」) で資金調達を認めます。
sodium chloride | Carl Roth, Germany | P029 | |
guanidine hydrochloride | Carl Roth, Germany | 0035.2 | |
dipotassium hydrogen phosphate | Carl Roth, Germany | P749.3 | |
potassium dihydrogen phosphate | Carl Roth, Germany | 3904.3 | |
sodium dihydrogen phosphate monohydrate | Carl Roth, Germany | K300.2 | |
disodium hydrogen phosphate | Carl Roth, Germany | P030.2 | |
L-alanine | Carl Roth, Germany | 3076.2 | |
L-arginine | Carl Roth, Germany | 3144.3 | |
L-asparagine monohydrate | Carl Roth, Germany | HN23.1 | |
L-aspartic acid | Carl Roth, Germany | T202.1 | |
L-cysteine | Carl Roth, Germany | 3467.3 | |
L-glutamine | Carl Roth, Germany | 3772.1 | |
L-glutamic acid | Carl Roth, Germany | 3774.1 | |
L-glycine | Carl Roth, Germany | 3187.3 | |
L-histidine | Carl Roth, Germany | 3852.3 | |
L-isoleucine | Carl Roth, Germany | 3922.3 | |
L-leucine | Carl Roth, Germany | 3984.3 | |
L-lysine monohydrate | Carl Roth, Germany | 4207.2 | |
L-methionine | Carl Roth, Germany | 9359.4 | |
L-phenylalanine | Carl Roth, Germany | 4491.2 | |
L-proline | Carl Roth, Germany | T205.3 | |
L-serine | Carl Roth, Germany | 4682.4 | |
L-threonine | Carl Roth, Germany | T206.2 | |
L-tryptophan | Carl Roth, Germany | 4858.2 | |
L-tyrosine | Carl Roth, Germany | T207.2 | |
L-valine | Carl Roth, Germany | 4879.4 | |
ammonium sulfate | Carl Roth, Germany | 3746.3 | |
magnesium sulfate | Carl Roth, Germany | 0261.2 | |
D-glucose | Carl Roth, Germany | 6780 | prepare a 20% (w/v) solution for addition into molten agar |
calcium chloride | Carl Roth, Germany | PN93.2 | |
iron(II) chloride | Sigma-Aldrich, Germany | 372870 | |
thiamine hydrochloride | Sigma-Aldrich, Germany | T1270 | |
biotin | Carl Roth, Germany | 3822.2 | |
copper(II) sulfate | Merck, Germany | 102792 | |
manganese(II) chloride | Carl Roth, Germany | KK36.2 | |
zinc chloride | Merck, Germany | 108816 | |
immonium orthomolybdate | Sigma-Aldrich, Germany | 277908 | |
glycerol | Carl Roth, Germany | 7533.3 | |
isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside | Sigma-Aldrich, Germany | I6758 | |
ampicillin sodium salt | Carl Roth, Germany | K029.5 | working concentration 100 µg/mL for E. coli, prepare 100 mg/mL stock in ddH2O |
kanamycin sulfate | Carl Roth, Germany | T832.2 | working concentration 50 µg/mL for E. coli, prepare 50 mg/mL stock in ddH2O |
chloramphenicol | Carl Roth, Germany | 3886.1 | working concentration 5 µg/mL for L. lactis, prepare 37 mg/mL stock in ethanol |
(4S)-fluoroproline | Bachem, Switzerland | F-3970 | |
(4R)-fluoroproline | Bachem, Switzerland | F-3975 | |
(4S)-hydroxyproline | Bachem, Switzerland | F-1395 | |
(4R)-hydroxyproline | Bachem, Switzerland | F-2980 | |
(4S)-methanoproline | chemically synthesized | ||
(4R)-methanoproline | chemically synthesized | ||
hydrochloric acid (HCl) | Carl Roth, Germany | P074.4 | |
ethanol | VWR, Germany | 20825.324 | |
M17-broth | Sigmal-Aldrich, Germany | 56156 | commercial product, see Terzaghi BE & Sandine WE, Appl Microbiol., 1975, 29(6):807-13 for contents and preparation |
agar-agar | Carl Roth, Germany | 5210.5 | |
Nisin from Lactococcus lactis | Sigma-Aldrich, Germany | N5764 | commercial product, can be used as reference for bioactivity |
dimethyl sulfoxide (DMSO) | Carl Roth, Germany | A994.1 | |
imidazole | Carl Roth, Germany | 3899.3 | |
1.5 mL autosampler vial for LC-MS | Sigma-Aldrich, Germany | Supelco 854165 | |
acetonitrile | VWR, Germany | HiPerSolv CHROMANORM ULTRA for LC-MS, 83642 | LC-MS grade required |
formic acid | VWR, Germany | HiPerSolv CHROMANORM for LC-MS, 84865 | LC-MS grade required |
1 mL Ni-NTA IMAC column, e.g. HisTrap FF Crude | GE Healthcare, UK | 29-0486-31 | different manufacturers and resins available for IMAC |
0.45 µm bottle top filter unit | VWR, Germany | 10040-470 | sterile filtration of solutions using a vacuum pump |
0.45 µm syringe filter PVDF membrane | Carl Roth, Germany | CCY1.1 | sterile filtration of solutions using a syringe and to remove particles from cell lysates |
luer-lock syringe, PP, 50 ml | Carl Roth, Germany | T552.2 | sterile filtration of solutions |
1.5 mL Eppendorf tubes | Eppendorf, Germany | 30120086 | |
petri dishes (polystyrene, sterile) | Carl Roth, Germany | TA19 | |
Nile red | Sigma-Aldrich, Germany | 72485 | |
E. coli ΔproA strain | CGSC, Keio collection | JW0233-2 | proline-auxotrophic E. coli K-12 strain |
E. coli B834(DE3) | Novagen (Merck), Germany | 69041 | methionine-auxotrophic E. coli B strain |
λDE3 Lysogenization Kit | Novagen (Merck), Germany | 69734-3 | |
Lactococcus lactis NZ9000 pNG nisPT | bacterial indicator strain, see Khusainov R & Kuipers OP, PLoS One, 8 (9), e74890 | ||
benchtop centrifuge for 1.5 mL Eppendorf tubes | Eppendorf, Germany | 5427 R | |
peristaltic pump | GE Healthcare, UK | P1 | |
FPLC system | GE Healthcare, UK | Äkta Purifier 10 or the like | |
inverted microscope | Nikon | TI Eclipse wide-field fluorescence microscope with 100x (N.A. 1.4) objective and Mercury Lamp | example setup for fluorescence microscopy |
electron multiplying CCD (EMCCD) camera | Andor Technologies, UK | Andor Luca | example setup for fluorescence microscopy |
fluorescence excitation filter | Thorlabs, USA | Dichroic cube (TLV-U-MF2-TRITC) | example setup for fluorescence microscopy |
fluorescence emission filter | AHF Analysentechnik, Germany | T 560 LPXR | example setup for fluorescence microscopy |
cover slip 24 x 60 mm | Carl Roth, Germany | LH26.1 | example setup for fluorescence microscopy |
Immersion Oil | Carl Zeiss, Germany | Immersol 518 F | example setup for fluorescence microscopy |
probe sonicator | Bandelin, Germany | Sonopuls HD3200 with sonotrode MS-72 | 200 W maximum HF output |
C5 HPLC column (2.1×100 mm, 3 µm particle size) | Sigma-Aldrich, Germany | 567227-U | example setup for mass spectrometry |
ESI-TOF coupled to HPLC system | Agilent, USA | Agilent 6530 Accurate Mass QTOF with 1260 HPLC | example setup for mass spectrometry |