Summary
Aquí proporcionamos un protocolo detallado para llevar a cabo en vivo gene cardiaco edición en ratones usando Virus de Adeno-Associated recombinante (rAAV)-mediado entrega de CRISPR. Este protocolo ofrece una estrategia terapéutica prometedora para tratar cardiomiopatía distrófica en distrofia muscular de Duchenne y puede utilizarse para generar nocaut cardiaco específico en los ratones postnatales.
Abstract
Agrupado, regularmente otro, corto, palindrómico repetición (CRISPR) sistema ha facilitado enormemente ingeniería del genoma en células cultivadas y los organismos vivos de una gran variedad de especies. La tecnología CRISPR también se ha explorado como novela terapéutica para un número de enfermedades humanas. Datos de prueba de concepto son altamente alentadores ejemplificado por estudios recientes que demuestran la viabilidad y la eficacia del enfoque terapéutico basado en la edición de gene para la distrofia muscular de Duchenne (DMD) utilizando un modelo murino. En particular, intravenosa e intraperitoneal inyección de la rh.74 del serotipo del virus adeno-asociado recombinante (rAAV) (rAAVrh.74) ha permitido la entrega eficiente cardiaca de Staphylococcus aureus proteína CRISPR 9 (SaCas9) y dos Guía RNAs (gRNA) para eliminar una región genómica con un codón mutante en el exón 23 del gen Dmd de ratón. Este mismo método puede utilizarse también para noquear el gen de interés y estudiar su función cardiaca en ratones postnatales cuando el gRNA está diseñado para atacar la región codificante del gen. En este protocolo, se muestra en detalle cómo Ingeniero vector rAAVrh.74 CRISPR y cómo lograr el parto alta eficiencia cardiaca en ratones neonatales.
Introduction
El cluster regularmente otro corto palindrómico repetición (CRISPR) tecnología, representa el avance más reciente en la ingeniería del genoma y ha revolucionado la práctica actual de la genética en las células y organismos. La edición del genoma basado en CRISPR utiliza una guía única RNA (gRNA) para dirigir una endonucleasa asociada a CRISPR como proteína CRISPR 9 (Cas9) y Cpf1 con un objetivo de ADN genómico que es complementario en orden a la protospacer codificada por el gRNA con un protospacer específico motivo adyacente (PAM)1,2. El PAM varía dependiendo de la especie bacteriana del gen Cas9 o Cpf1. El más comúnmente utilizado nucleasa Cas9 derivado de Streptococcus pyogenes (SpCas9) reconoce una secuencia de PAM de NGG que en el ADN genómico, en la cadena de destino no se encuentra directamente aguas abajo de la secuencia de destino. En el sitio de destino, las proteínas Cas9 y Cpf1 generan una rotura de doble cadena (DSB), que entonces se repara vía intrínseca celular ADN mecanismos de reparación incluyendo final no homólogo a (NHEJ) y vías de reparación dirigido por homología (HDR)3, 4. En ausencia de una plantilla de ADN por recombinación homóloga, el OSD se repara sobre todo por la vía NHEJ propenso, que puede resultar en inserciones o deleciones (indels) de nucleótidos causando mutaciones del mutágeno ' frameshift ' si el OSD se crearon en la codificación región de un gen5,6. Así, el sistema CRISPR ha sido ampliamente utilizado para las mutaciones de pérdida de función en varios modelos de celulares y organismos enteros, con el fin de investigar la función de un gen. Por otra parte, el catalítico inactivo Cas9 Cpf1 transcripcionalmente se han desarrollado para y epigenéticamente modulan la expresión de genes de destino7,8.
Más recientemente, SpCas9 y SaCas9 (derivado de estafilococo áureo) han sido empaquetados en vectores de virus adeno-asociado recombinante (rAAV) para la corrección del gen postnatal en modelos animales de enfermedades humanas, en particular, Duchenne distrofia muscular (DMD)9,10,11,12,13,14,la15. DMD es una enfermedad recesiva x-ligada fatal causada por mutaciones en el gen DMD , que codifica la distrofina proteína16,17, que afecta a aproximadamente uno en 3500 nacimientos masculinos según evaluación del recién nacido18 , 19. se caracteriza por debilidad muscular progresiva y pérdida. Los pacientes DMD suelen perder la habilidad de caminar entre 10 y 12 años de edad y mueren de insuficiencia respiratoria o cardiaca a la edad de 20-30 años20. En particular, la miocardiopatía se convierte en > 90% de los pacientes DMD y representa la causa principal de muerte en pacientes DMD21,22. Aunque Deflazacort (una droga antiinflamatoria) y Eteplirsen (un exón que salta medicina para salto de exón 51) se han aprobado recientemente para DMD por alimentos y drogas (FDA)23,24, ninguno de estos tratamientos corregir el defecto genético en el nivel genomic de la DNA. El ratón mdx, que lleva una mutación de punto en el exón 23 del gene del dystrophin, ha sido ampliamente utilizado como un modelo DMD25. Además, previamente demostramos que la expresión de distrofina funcional fue restablecida por la eliminación en el marco de la DNA genomic que abarca exones 21, 22 y 23 en los músculos esqueléticos de ratones mdx con entrega de Ad-SpCas9/gRNA intramuscular9 y en los músculos del corazón de mdx/utrophin+- ratones con entrega rAAVrh.74-SaCas9/gRNA intravenosa e intraperitoneales26.
En este protocolo, describimos en detalle cada paso en la edición de postnatal gen cardiaca para restaurar distrofina en mdx/utrophin+- ratones utilizando vectores de rAAVrh.74-SaCas9/gRNA, de gRNA diseño análisis de distrofina en las secciones de músculo de corazón.
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Protocol
Los animales utilizados en el presente Protocolo se mantuvieron en recursos de animales de laboratorio de estado de Ohio la Universidad conforme a las directrices de uso de animales. Todos los estudios en animales fueron autorizados por el institucional Animal cuidado, uso y Comité de revisión de la Universidad Estatal de Ohio.
1. diseño y reproducción de gRNAs en el Vector CRISPR
- Seleccione 2 gRNAs a distrofina intrón 20 y del intrón 23 (i20 y i23) para SaCas9: i20: 5'-GGGCGTTGAAATTCTCATTAC CAGAGT y i23: 5'-CACCGATGAGAGGGAAAGGTC CTGAAT (la secuencia de PAM es subrayada y en cursiva).
Nota: Los sitios de destino para el i20 y i23 son aproximadamente 23 kilo pares (kbp) lejos. Para interrumpir un gen de codificación, la secuencia de dos gRNAs a los exones comunes con el PAM NNGRRT para SaCas9 (preferiblemente NNGAAT, NNGGGT y NNGAGT) y se recomienda distancia dentro 20 kbp. - Utilice los siguientes parámetros PCR a Recueza la gRNA oligos (100 μmol/L) en el 1 x de buffer de recocido (5 x recocido existencias contiene 0,5 mol/L de acetato de K, 150 mmol/L HEPES-KOH, 10 mmol/L de acetato de magnesio, pH7.4): 95 ° C 10 min, 90 ciclos de 95 a 59 ° C, con un 0,4 ° C disminuye por ciclo de 20 s, 90 ciclos de 59 a 32 ° C con una disminución de 0.3 ° C por ciclo de 20 s, 20 ciclos de 32 a 26 ° C con una disminución de 0.3 ° C por ciclo de 20 s.
- Ligar los oligos gRNA recocido en el pX601-CMV-SaCas9-mPA-U6-gRNA con BsaI y T4 ADN ligasa en una reacción (1 μl 50 ng/μl pX601-CMV-SaCas9-mPA-U6-gRNA 1 μl recocido oligos, 1,5 μl 10 x T4 ADN ligasa de tampón, 0,5 μl T4 ADN ligasa, 1 μl BsaI, 10 μl ddH2O ), con la condición siguiente de la reacción en un ciclador PCR: 5 ciclos de 37 ° C 5 min y 16 ° C 10 min]; 37 º C 20 min; 80 ° C 5 min.
- Transformar el 15 μl del producto de la ligadura en células competentes de 30 μL, placa las células en placa de agar con 100 μg/mL de ampicilina y cultura a 37 ° C durante 24 h.
- Recoger 5-10 colonias y cultivo en medio LB con ampicilina de 100 μg/mL a 37 ° C, 250 rpm en un Incubador agitador para 3-4 h.
- Las colonias por PCR de la pantalla: 10 μl 2 x master mix PCR 8 μl ddH2O cultura de e. Coli de 1 μl, 1 μl 10 μmol/L U6-adelante la cartilla, cartilla reversa del gRNA i20 o i23 1 μl. Los parámetros del ciclo de PCR: 95 ° C 5 min, 35 ciclos de 95 ° C 30 s, 61 ° C 30 s, 72 ° C 30 s.
- Preparar la cultura de 5 mL de los clones positivos agregando 4 mL fresco LB containing100 medio μg/mL ampicilina y cultura durante la noche a 37 ° C, 250 rpm.
- Purificar el plásmido DNA usando el kit de extracción de plásmidos apropiados y verificar el plásmido por Sanger secuenciación con el primer avance de U6.
- Cultura células C2C12 en DMEM suplementado con 10% FBS y 1% Pen-Strep hasta llegar a la confluencia de ~ 70% para el gene de la eficacia de la plásmidos de la edición de la prueba.
- Electroporate un total de 5 μg SaCas9/gRNA mezcla de plásmido en relación molar 1:1 en las células 1 x 106 C2C12 según protocolo del fabricante.
- Transfección después de 48 h, después de cosechar las células C2C12 y extraer la DNA de genomic.
- Uso 100 ng ADN genómico como plantilla para realizar la reacción de PCR para locus de distrofina de ratón: avance primer 5'-GGCCAAAGCAAACTCTGGTA (1 μl de 10 μmol/L), reverse primer 5'-TTTAATCCCACGTCATGCAA (1 μl de 10 μmol/L), 10 μl 2 x el verde PCR master mix, 7 μl ddH2O, (ADN genómico) 1 μl 100 ng). Uso de PCR ciclismo condiciones 95 ° c 5 min, 35 ciclos [95 ° C 30 s, 61 ° C 30 s, 72 ° C 30 s], 72 ° C 2 min.
2. producción de rAAV
- Para la cultura las células, las células de AD293 en 20 a 40 de platos de 15 cm de la semilla y mantener en DMEM suplementado con 10% FBS y 1% Pen-Strep hasta llegar a la confluencia de ~ 90% para la transfección.
- Diluir 3 plásmidos con 200 μL reducción medio de suero (por plato): 1) 10 μg pHelper; 2) 5 μg pXR (rh.74 u otros serotipos) y 3) un total de 5 μg de pX601-i20 y pX601-i23 mezcla (proporción 1:1). Realizar la transfección polietilenimina (PEI) mezclando con 80 μl PEI e incubar a temperatura ambiente durante 10 minutos agregar la mezcla a los cultivos de células AD293 en forma de gota a gota.
- Para la producción de AAV virus, después de transfección de 72 h post, use un raspador celular para recoger los medios de comunicación y los pellets de células AD293 por centrifugación a 1100 x g durante 10 minutos.
- Vuelva a suspender los pellets de células en tampón de lisis de rAAV 15 mL (50 mmol/L de Tris Base, 150 mmol/L de NaCl, pH 8,5) seguidos de 3 ciclos de congelación y descongelación con alternancia de incubación en nitrógeno líquido y un baño de agua de 42 ° C. Almacenar los lysates de la célula de-80 ° C para el procesamiento futuro si ellos no se procesan inmediatamente.
- Filtro de los medios de cultivo con un filtro de 0,45 μm y un 40% PEG8000 en 2,5 mol/L NaCl a una concentración final de 8%. Incubar la mezcla a 4 ° C por 1 h y centrifugar a 1100 x g durante 15 minutos.
- Resuspender el pellet en buffer de lisis de rAAV y combina con los lysates de la célula en el paso 2.3, seguida por el tratamiento de benzonase (50 U/mL) a 37 ° C durante 1 hora.
- Centrifugue el rAAV benzonase tratada que contenga mezcla 1100 x g durante 15 min a 4 ° C y guarde el sobrenadante (la preparación del crudo rAAV).
3. rAAV purificación y concentración
- Cargar la preparación rAAV crudo en un gradiente de iodixanol en un tubo de ultracentrífuga en el siguiente orden desde arriba hacia abajo: crudo AAV lisado (~ 15 mL), 8 mL 15% Iodixanol, 6 mL 25% Iodixanol, 5 mL 40% Iodixanol, 5 mL 58% Iodixanol. Llenar el restante volumen vacío del tubo a la parte superior utilizando 1 x DPBS.
- Centrifugar las muestras a 230.000 x g en un rotor de ultracentrífuga durante 120 min a 10 º C y recolectar 3-4 mL de la fracción de gradiente de 40% que contiene las partículas de rAAV con una aguja de 18 G.
- Diluir las partículas rAAV con 1 x DPBS y centrifugar utilizando la unidad de filtración centrífugas (MWCO 100 kDa). Repita este paso para el 3 - 5 veces y finalmente la preparación de rAAV a 300-500 μl.
4. rAAV Titering
- Extraer el ADN genómico de 2 μl concentrado rAAV, precipitado con 3 NaOAc M en etanol y resuspender en 20 μl ddH2O.
- Obtener la curva estándar para cuantificación de rAAV por dilución seriada del plásmido pX601: 1 x 109, 1 x 108,1 x 107, 1 x 106, 1 x 105 copias en cada 10 μl ddH2O. diluir el rAAV tratados con ADNasa muestras 1:10, 1:50, 1: 100 y 1: 1000.
- Determinar titulación rAAV por PCR cuantitativa en tiempo real (qPCR) utilizando qPCR Kit según instrucciones del fabricante en un sistema de PCR en tiempo real: 1 μl de 10 μmol/L de cada primer (5'-GGATTTCCAAGTCTCCACCC y 5'-TCCCACCGT ACACGCCTAC), 5 μl de 2 x master mix PCR, 1 μl diluidas muestras de rAAV y 2 μl ddH2O. ejecutan la reacción con los siguientes parámetros ciclismo: 95 ° C 3 min, 45 ciclos de 95 ° C 5 seg y 61 ° C 20 seg].
5. vía intravenosa y la inyección Intraperitoneal de rAAVrh.74-CRISPR en Neonatal mdx/utrophin+- ratones
- Inmovilizar los mdx/utrophin+- cachorros ratón (día 3) colocando en hielo durante 1 minuto y luego administrar con 1 x 1012 partículas virales en 50 μL por ratón sistémicamente a través de un enfoque de retro-orbital o una inyección intraperitoneal.
- Permitir que los ratones recuperar y poner en sus jaulas hogar. A las diez semanas después de la administración de rAAV, eutanasia los ratones por exposición a CO2 para la recolección de tejido.
- Snap-congelar tejidos para extracción de DNA y RNA genómico y uso isopentano en nitrógeno líquido para congelar tejidos con temperatura óptima de corte para cryosectioning de refrigeración.
6. análisis del Gene de la blanco edición los resultados
-
Análisis de PCR de ADN genómico
- Aislar el total de ADN genómico de los tejidos del corazón de ratones mdx/utrophin+- tratado con o sin rAAV.
- Utilizar el mismo protocolo en paso 1.12 para análisis de PCR.
-
Análisis de RT-PCR de la expresión de distrofina
- Extracto de RNA total de los tejidos del corazón con el kit de extracción de RNA siguiendo el manual del fabricante.
- Para reversa de la transcripción, tratamiento previo del RNA total con un libre de Rnasa DNasa y 5 μg de RNA tratado como plantilla para síntesis de cDNA de primera línea con el kit de transcripción inversa.
- Utilizar el producto de la transcripción reversa para análisis de RT-PCR de la expresión de distrofina con los iniciadores de ADNc de distrofina: GGCTAGAGTATCAAACCAACATCAT 5' y 5'-TGGAGGCTTACGGTTTTATCC.
-
Estimar el gene de la eficacia de edición por análisis de qPCR
- Estimar el gen edición eficacia por RT-PCR cuantitativa para detectar la reducción de las transcripciones que contienen 22 exón mediante el primer avance (exón 21): 5'-TTGTCAGCTCTTCAGCCTCAAA y el cebador reverso (exón 23): 5'-AAACTCTCCTTCACAGTGTCACT. Uso de Gapdh como un gen de referencia con el primer avance: 5'-AGGTTGTCTCCTGCGACTTC y el cebador reverso: 5'-GGTGGTCCAGGGTTTCTTACT.
- Ejecutar la PCR cuantitativa en tiempo real (qPCR) usando qPCR Kit según instrucciones del fabricante en un sistema de PCR en tiempo real y las condiciones de reacción 2-paso: 95 ° C 3 min, 45 ciclos de 95 ° C 5 s y 61 ° C 30 seg.
-
Inmunofluorescencia que manchaba para analizar la expresión de distrofina
- Cortar los tejidos congelados con un criostato en un espesor de 10 μm. fijar las secciones congeladas con paraformaldehído al 4% a temperatura ambiente durante 15 minutos.
- Lavado x 2 con PBS e incubar con solución (10% de suero de caballo) de bloqueo durante 1 hora.
- Incubar el anticuerpo primario anti-distrofina, a 4 ° C durante la noche.
- Lavar los portaobjetos con PBS 3 veces, 5 minutos y se incuba con anticuerpos fluorescentes secundarios (1: 500) a temperatura ambiente durante 1 h.
- Montar las diapositivas usando el medio de montaje con DAPI y proyección de imagen con un microscopio confocal invertido.
7. objetivo análisis T7E1 análisis
- Predecir los sitios potenciales de objetivo utilizando el CRISPR en línea herramientas de diseño tales como < http://crispr.mit.edu>.
- Amplificar las regiones genómicas que cubre la parte superior sitios de fuera de objetivo potencial 5-10 por PCR: genomic DNA 200 ng, 1 μl alta fidelidad polimerasa de la DNA, 5 μl 10 x PCR Buffer mezclar, 1,5 μl 10 μmol/L de site-specific primers hacia adelantados y hacia atrás, ajuste el volumen total de 50 μL con ddH2O.
- Ejecutar los productos PCR por electroforesis, extraer y purificar el ADN utilizando un kit de extracción de gel. Medir la concentración mediante espectrofotometría.
- Promover la formación del heterodúplex por desnaturalización y volver a recocer los amplicones purificados lentamente en el 2.1 de búfer utiliza a un ciclador PCR. Utilice las mismas condiciones de ciclismo como se detalla en el paso 1.2.
- Digerir los productos re-recocidos durante 30 min a 37 ° C con la enzima de T7E1 de 0,5 μl y analizar la reacción por electroforesis en gel de agarosa al 1-2%.
Nota: Los amplicones también pueden ser analizadas mediante secuenciación profunda dirigida.
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Representative Results
Debe evaluarse la eficacia de los gRNAs para inducir la supresión de la región Diana de ADN genómica en cultivos celulares antes de empaquetar a rAAV para estudios in vivo. Con este fin, los gRNAs y construcciones expresando SaCas9 eran electroporated en las células C2C12 y el ADN genómico se analizó por PCR con los cebadores que flanquean los sitios de destino (figura 1). Un producto PCR de ~ 500 bp indica eliminación exitosa de la DNA genomic de destino resultante de gene edición mientras que las células control no deben generar una banda debido al gran tamaño de la DNA genomic.
Confirmando la eficacia de los gRNAs en cultivos celulares, puede ser empacados en rAAVrh.74 u otros serotipos (tales como AAV6, 8 o 9, entrega de robusto gene cardiaco mostrando todos) mediante el uso de la transfección de tres plásmidos Co en las células AAV293. Encontramos que no es necesario hacer dos de rAAV individuales de preparación para los dos gRNAs, en cambio, mezcla las dos construcciones de gRNA en una relación molar igual y había producido una preparación de rAAV solo. Las partículas virales de rAAV se purificaron usando ultracentrifugación de gradiente de densidad y la pureza se analizó por SDS-PAGE. La preparación altamente purificada de rAAV produciría sólo tres bandas correspondientes a las proteínas de la cápside VP1, VP2 y VP3, respectivamente, en SDS-PAGE como se muestra en la figura 2.
Las partículas virales purificadas rAAVrh.74 fueron inyectadas en día 1-3 recién nacidos de ratones mdx/utrophin+- vía la inyección retro-orbital o intraperitoneal. Encontramos dos métodos funcionados bien para cardiaco entrega de rAAVrh.74-CRISPR. Los ratones inyectados pueden ser analizados para la expresión de distrofina por inmunofluorescencia, tinción (figura 3) en 10 semanas de edad.
Figura 1: validación de los gRNAs para la edición de SaCas9-mediado del gene en células C2C12. La electroforesis del gel de agarosa representante mostró los productos de la polimerización en cadena de la DNA genomic extraída de electroporated C2C12 con o sin SaCas9/gRNAs. La flecha indica que el producto PCR resultó de edición génica. GAPDH sirve como referencia. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 2: Análisis de partículas rAAVrh.74 por SDS-PAGE. Partículas virales purificadas rAAVrh.74 correr de SDS-PAGE mostraron tres bandas, correspondientes a las tres proteínas de la cápsida de AAV, VP1 (87 kDa), VP2 (72 kDa) y VP3 (62 kDa), respectivamente. La presencia de estas 3 bandas de sólo indica la pureza de la preparación de rAAV sin contaminar otras proteínas celulares. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 3: Tinción de inmunofluorescencia de las secciones de corazón de ratones mdx/utrophin+- a 10 semanas después del tratamiento de AAV-SaCas9/gRNAs. Las imágenes representativas de la inmunofluorescencia demostraron la expresión de distrofina (rojo) y caveolina-3 (verde) en las secciones corazón de WT, mdx/utrophin+/- y mdx/utrophin+- ratones trataron con 1 x 1012 vg AAV-SaCas9/gRNA sistémicamente. DAPI fue utilizado para etiquetar los núcleos (azul). Barra de escala: 100 μm. haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
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Discussion
En este protocolo, detallamos todos los pasos necesarios para lograr en vivo gene cardiaco edición en ratones postnatales con entrega mediada por el rAAVrh.74 de SaCas9 y dos gRNAs. Como se señaló anteriormente, este enfoque puede utilizarse para restaurar la expresión de distrofina en ratones distróficos como se describe en nuestro trabajo27, pero también podría permitir estudios de genética reversa rápida de genes relacionados con cardiaco en ratones sin el largo proceso de la enfoque tradicional nocaut generan y reproducen modelos de ratón knockout.
Para lograr el gen alta eficiencia en el tejido diana de la edición, hay varios pasos críticos a tener en cuenta: 1) la eficacia de la SaCas9/gRNA para inducir la supresión de la DNA genomic específica debe validarse utilizando líneas de celulares adecuados; 2) es muy importante seleccionar un serotipo AAV apropiado que puede mediar un alto nivel de la transducción de genes en el tejido diana y 3) determinar la ruta óptima de la entrega de los vectores AAV para transferencia de genes en el tejido deseado.
En el protocolo actual, el SaCas9/gRNAs diseñados fueron empaquetados en AAVrh.74 que previamente reportados AAV8 AAV9 editar Dmd gene12,28. AAVrh.74 exhibe aproximadamente el 93% homología a AAV829 y se ha demostrado para ser no patógeno y eficaz transducción de músculo esquelético aislado del siguiente miembro entrega29,30,31. En este protocolo, utilizamos retro orbital y intraperitoneal inyección de rh.74 en ratones neonatales para la transferencia de genes cardíacos. Se encontró que la administración del recién nacido de rAAVrh.74 es muy eficiente para la restauración de la expresión de distrofina en cerca de 30-40% de cardiomiocitos en los ratones recibiendo una dosis alta de rAAVrh.74 (1 x 1012 vg). Curiosamente, encontramos que la expresión de distrofina muscular esquelético efectivamente no fue rescatada. Esto es probablemente debido al tropismo muscular esquelético bajo del serotipo rh.74 cuando se administra vía la inyección intravenosa o intraperitoneal, aunque estudios previos mostraron que entrega de extremidad aislada de rAAVrh.74 puede transducir eficazmente ratón y mono esquelético músculo29,30,31. También, cuando el rAAVrh.74 fue administrado en ratones adultos, observamos muy poca eficacia en la restauración de la expresión de distrofina. Sería interesante determinar la dosis mínima que es necesaria para lograr el rescate más alto de distrofina. Además, otros serotipos y métodos de la entrega pueden ser probados y comparados para lograr óptima gene cardiaco edición.
Eliminación exitosa de un pedazo grande de la DNA genomic requiere la entrega simultánea de dos gRNAs. Encontramos que no es necesario hacer dos preparaciones de rAAV separado para entregar dos gRNAs. En este protocolo, simplemente mezclamos la dos plásmidos gRNA en una cantidad igual durante la transfección para la producción de rAAV, y esta producción combinada de rAAV fue encontrada para ser eficaz en la entrega de ambos gRNAs. Este enfoque combinado es, por tanto, ahorro de costes y mano de obra y se recomienda cuando se requiere la entrega simultánea de dos gRNAs.
En muchos casos, puede ser necesario analizar el gene de la eficacia de edición por enfoques genéticos cuando un buen anticuerpo no está disponible para el producto del gene blanco. Sin embargo, es técnicamente difícil cuantificar con precisión el gen eficacia de edición con dos gRNAs a mismo lugar geométrico puesto que los productos del gene edición incluiría blanco secuencia borrado, inversión de secuencia de objetivos y indels pequeña en un único objetivo sitio. En cambio, es más significativa y factible para cuantificar la eficiencia de la eliminación de la secuencia específica deseada como en nuestro caso donde puede cuantificarse la reducción de las transcripciones que contienen exones 21-23 por RT-PCR en tiempo real.
En este protocolo, también Describimos el uso de T7E1 análisis y predicción computacional para analizar la potencial actividad de objetivo. Para que el ensayo a trabajar bien, es necesario utilizar una DNA polimerasa de alta fidelidad. Además, siempre es una buena idea para preparar un experimento de control negativo (productos de control de DNA amplificado de células/tejidos sin editar del gene y tratados del mismo modo que las muestras de prueba) y un experimento de control positivo (por ejemplo, una muestra conocida con genes bien caracterizados de edición). Sin embargo, es de nota que el límite de detección de la T7E1 análisis es sobre 5%32y así puede no ser detectable por el ensayo de T7E1 si la actividad fuera del objetivo es inferior a 5%. Guía-seq33 puede utilizarse unbiasedly analizar la actividad objetivo de la edición SaCas9/gRNA-mediated gene. Los sitios objetivo identificados de T7E1 análisis, predicción computacional o manual-seq enfoques pueden cuantificarse más para las frecuencias de indel siguiendo en vivo gene edición por secuenciación de alto rendimiento.
Tomados en conjunto, hemos proporcionado un enfoque edición optimizada gene cardiaco usando rAAVrh.74. Este protocolo establecido se puede probar más aplicaciones terapéuticas y estudios genéticos inversos.
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Disclosures
No existe ningún conflicto de intereses.
Acknowledgments
H.R. es apoyado por los E.E.U.U. institutos nacionales de salud subvenciones (R01HL116546 R01 AR064241).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Alexa Fluor 555 goat anti-rabbit IgG | Thermo Fisher Scientific | A-21428 | |
| Benzonase Nuclease | Sigma-Aldrich | E1014 | |
| Bio Safety Cabinets | Thermo Fisher Scientific | 1347 | 1300 Series A2 Class II, Type A2 |
| BsaI | New England BioLabs Inc | RO535S | |
| Competent cells | Agilent Technologies | 200314 | |
| Cell culture dishes, 150mm | Nest Scientific USA | 715001 | |
| Cryostat | Leica Biosystems | Leica CM3050S | |
| DMEM | Thermo Fisher Scientific | MT10017CV | Corning cellgro |
| Dystrophin antibody | Spring Bioscience | E2660 | |
| Fast-Ion Midi Plasmdi Kits | IBI Scientific | IB47111 | |
| FBS | Thermo Fisher Scientific | 26-140-079 | |
| Filter Unit, 0.45μm | Thermo Fisher Scientific | 166-0045 | |
| GoTaq Master Mixes | Promega | M7122 | |
| High-speed plasmid mini kit | IBI Scientific | IB47102 | |
| Horse serum | Abcam | ab139501 | |
| Isotemp 2239 Water Bath | Thermo Fisher Scientific | 15-460-11Q | |
| Isotemp Heat Block | Thermo Fisher Scientific | 11-718 | |
| Inverted confocal microscope | Carl Zeiss Microscopy, LLC | LSM 780 | |
| LightCycler 480 instrument | Roche | 5015243001 | LightCycler 480 Instrument II |
| Large Capacity Centrifuge | Thermo Fisher Scientific | 46-910 | Thermo Scientific Sorvall RC 6 Plus |
| Microcentrifuge | Thermo Fisher Scientific | 75002445 | Sorvall Legend Micro 21R |
| Nanodrop spectrophotometers | Thermo Scientific | ND2000CLAPTOP | NanoDrop™ 2000/2000c |
| Oligos for i20-F | Integrated DNA Technologies | CACCgGGCGT TGAAATTCTCATTAC |
|
| Oligos for i20-R | Integrated DNA Technologies | AAAC GTAATGAGAATTTCAACGCCc; | |
| Oligos for i23-F | Integrated DNA Technologies | CACCgCACCGATGAGAGGG AAAGGTC |
|
| Oligos for i23-R | Integrated DNA Technologies | GACCTTTCCCTCTCATCGGTGc | |
| Oligos | Integrated DNA Technologies | ||
| OptiPrep Density Gradient Medium | Sigma-Aldrich | D1556-250ML | |
| OptiMEM | Thermo Fisher Scientific | 31985070 | |
| PEG8000 | Sigma-Aldrich | 89510-1kg-F | |
| Polyethylenimine | Polysciences | 23966 | |
| Proteinase K | Sigma-Aldrich | P2308 | |
| Quick-Seal centrifuge tube | Beckman Coulter Inc | 342414 | |
| QIAquick Gel Extraction kit | Qiagen | 28704 | |
| Radiant SYBR Green Hi-ROX qPCR Kits | Alkali Scientific | QS2005 | |
| RevertAid RT Reverse Transcription Kit | Thermo Fisher Scientific | K1691 | |
| Rotor | Beckman Coulter Inc | 337922 | Type 70Ti |
| T4 DNA ligase | New England BioLabs Inc | M0202S | |
| Thermal Cycler | Bio-rad | 1861096 | |
| TRIzol Reagent | Thermo Fisher Scientific | 15596026 | |
| Ultracentrifuge | Beckman Coulter Inc | 8043-30-1192 | Optima le-80k |
| Ultra centrifugal filter unit | MilliporeSigma | UFC510096 | |
| VECTASHIELD Mounting Medium with DAPI | Vector Laboratories, Inc | H-1200 |
References
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