The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
This translation into Spanish was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages
This article is a part of JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.
Recommend JoVE to Your LibrarianCurrent Access Through Your IP Address
Current Access Through Your Registered Email Address
Brent, J. R., Werner, K. M., McCabe, B. D. Drosophila Larval NMJ Dissection. J. Vis. Exp. (24), e1107, doi:10.3791/1107 (2009).
Antes de empezar
Disección de larvas
Fijación
Fijar cada animal en el 3,5% de formaldehído en HL3.1 durante 25 minutos. Lave al animal dos veces en HL3.1 durante 5 minutos.
Almacenamiento
Retire los pernos y la transferencia de las larvas a un tubo de 1.5 ml contiene 1X PBS. Si va a utilizar la imagen de la UNM fundido etiquetas fluorescentes, se debe la imagen de los animales en dos días. Puede almacenar las larvas disecadas de hasta una semana a 4 ° C.
Los resultados representativos
Hay varios componentes clave para una adecuada disección larvas de Drosophila. En primer lugar, hay que tener cuidado de no dañar los músculos, especialmente los músculos de 4, 6 y 7. Estos son los músculos más popular para el estudio y si se dañan descartar la preparación de filetes y diseccionar a otro animal. En segundo lugar, hay que asegurarse de que el animal está al máximo se extendía de manera que cada músculo y la UNM se pueden distinguir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
La técnica de disección se demuestra en este vídeo se puede utilizar para preparar a las larvas de Drosophila para una variedad de técnicas experimentales. Si las etiquetas fluorescentes de proteínas están presentes, las larvas pueden ser montados y la imagen de inmediato. De lo contrario, la inmunotinción se puede realizar con el fin de marca específica compartimentos sináptica. Además, la electrofisiología se puede realizar fácilmente en las larvas disecados para evaluar el funcionamiento de la neurotransmisión.
La NMJ de Drosophila ha ganado gran popularidad desde los primeros estudios que iluminó su estructura y las funciones básicas. 1.4 Muchas de las moléculas que han sido identificados en estudios del desarrollo de la Drosophila NMJ se conservan en los vertebrados. 4 Por lo tanto, muchos de los las ideas aprendidas a través de estudios de la Drosophila NMJ son aplicables a la biología sináptica en todos los seres vivos. Algunas aplicaciones posibles incluyen el estudio de moléculas implicadas en el direccionamiento del axón, la enfermedad de la neurona motora, el aprendizaje y la memoria.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Stereomicroscope “Stemi” 2000 | Carl Zeiss, Inc. | 495101-9804-000 | |
| Light Source KL 1500 LCD | Carl Zeiss, Inc. | 000000-1063-181 | |
| 3mm Vannas Spring Scissors | Fine Science Tools | 15000-0 | |
| Dumont SS Forceps | Fine Science Tools | 11200-33 | Long forceps |
| Dumont #5 Forceps | Fine Science Tools | 11252-20 | Short forceps |
| SylGard 182 Silicone Elastomer Kit | Dow Corning | 3097358-1004 | Used to make dissection plates |
| Formaldehyde | Sigma-Aldrich | 252549-25ML | |
| Stainless Steel Minutien Pins -0.1 MM Diameter | Fine Science Tools | 26002-10 | |
| HL3 Dissection Buffer: (in mM) 70 NaCl, 5 KCl, 0.2 CaCl2, 20 MgCl2, 10 NaHCO3, 5 trehalose, 115 sucrose, and 5 HEPES, pH 7.3. Sylgard Dissecting Plate: Mix gently (to avoid bubbles) 10:1in a beaker. Pour mixture into Petri dish (any size). Allow SylGard to cure overnight in 37C incubator. |
|||
Sylgard Dissecting Plate: Mix gently (to avoid bubbles) 10:1in a beaker. Pour mixture into Petri dish (any size). Allow SylGard to cure overnight in 37C incubator. |
|||
Sylgard Dissecting Plate: Mix gently (to avoid bubbles) 10:1in a beaker. Pour mixture into Petri dish (any size). Allow SylGard to cure overnight in 37C incubator. |
|||
| Sylgard Dissecting Plate: Mix gently (to avoid bubbles) 10:1in a beaker. Pour mixture into Petri dish (any size). Allow SylGard to cure overnight in 37C incubator. | |||
Hi. I wonder if the fixation using formaldehyde is fine for any ulterior immunohistochemistry assay. Have you any experience if there is necessities for performing the fixation with other fixative? I´m asking this regarding the preservation of cytoskeletal proteins
1
ReplyPosted by: Javier AmbrosioFebruary 13, 2009, 4:07 PM