JoVE   
You do not have subscription access to articles in this section. Learn more about access.

  JoVE Biology

  
You do not have subscription access to articles in this section. Learn more about access.

  JoVE Neuroscience

  
You do not have subscription access to articles in this section. Learn more about access.

  JoVE Immunology and Infection

  
You do not have subscription access to articles in this section. Learn more about access.

  JoVE Clinical and Translational Medicine

  
You do not have subscription access to articles in this section. Learn more about access.

  JoVE Bioengineering

  
You do not have subscription access to articles in this section. Learn more about access.

  JoVE Applied Physics

  
You do not have subscription access to articles in this section. Learn more about access.

  JoVE Chemistry

  
You do not have subscription access to articles in this section. Learn more about access.

  JoVE Behavior

  
You do not have subscription access to articles in this section. Learn more about access.

  JoVE Environment

|   

JoVE Science Education

General Laboratory Techniques

You do not have subscription access to videos in this collection. Learn more about access.

Basic Methods in Cellular and Molecular Biology

You do not have subscription access to videos in this collection. Learn more about access.

Model Organisms I

You do not have subscription access to videos in this collection. Learn more about access.

Model Organisms II

You do not have subscription access to videos in this collection. Learn more about access.

Automatic Translation

This translation into Russian was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE Biology

Выделение пупочной вены человека эндотелиальных клеток (HUVEC)

1, 1, 1

1Department of Molecular Biology and Biochemistry, University of California, Irvine (UCI)

Article
    Downloads Comments Metrics

    You must be subscribed to JoVE to access this content.

    This article is a part of   JoVE Biology. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.

    Recommend JoVE to Your Librarian

    Current Access Through Your IP Address

    You do not have access to any JoVE content through your current IP address.

    IP: 54.166.83.154, User IP: 54.166.83.154, User IP Hex: 916870042

    Current Access Through Your Registered Email Address

    You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please or create an account with your institutional email address to access this content.

     

    Summary

    Это видео показывает протокол изоляции и культуры пупочной вены человека эндотелиальных клеток (HUVEC) от человеческой пуповины. После выделения этих клеток могут быть использованы для экстракорпорального ангиогенеза анализы, как оптимизированная фибринового геля из бисера Анализ также свидетельствует лаборатории Hughes.

    Date Published: 4/28/2007, Issue 3; doi: 10.3791/183

    Cite this Article

    Davis, J., Crampton, S. P., Hughes, C. C. Isolation of Human Umbilical Vein Endothelial Cells (HUVEC). J. Vis. Exp. (3), e183, doi:10.3791/183 (2007).

    Abstract

    Ангиогенез представляет собой сложный многоступенчатый процесс, где в ответ на ангиогенных стимулы, новые суда создаются из существующих сосудов. Эти шаги включают в себя: деградации базальной мембраны, пролиферации и миграции (прорастание) эндотелиальных клеток (ЕК) в внеклеточного матрикса, выравнивания ЕС в шнуры, просвет образования, анастомоза, и формирование новой базальной мембраны. Многие в пробирке тесты были разработаны для изучения этого процесса, но большинство лишь имитируют определенные этапы ангиогенеза, и морфологически судов часто не похожи на судах в естественных условиях. Здесь мы показываем, оптимизированных в пробирке ангиогенеза анализа, который использует пупочной вены человека ЕС и фибробластов. Эта модель повторяет все ключевые ранней стадии ангиогенеза, и, что важно суда дисплей патент межклеточных люмен окруженной поляризованной ЕС. Суда могут быть легко наблюдать фазового контраста и покадровой микроскопии, а также взысканы в чистом виде для последующих применений.

    Protocol

    Процедура

    1. Положите шнур на чистую площадку и промокните лишнюю кровь. Сделайте свежие порезы на обоих концах кабеля.
    2. Вставьте 21 1 / 2 G иглу с иглы пластиковый чехол ON, в вену. (Вены является крупнейшим открытием; 2 небольших них артерий)
    3. Зажим иглу в месте с кровоостанавливающего и приложите 20cc шприц Хэнкс на иглу.
    4. Нажмите Хэнкс через вену с умеренным давлением. Сбор отходов в стакан с хлоркой. (Холдинг иглу и шнур с одной стороны, выдвигая помешает иглы выкатились из вены.) Если есть много крови в вене, мыть второй раз.
    5. Положите шнур на площадку и зажим другой конец вены. Залейте несколько мл Хэнкс и проверить на наличие утечек вдоль шнура. Вывод 5 мл и отсоединить нижний зажим.
    6. Отключите 20cc шприц. Удалите поршень из 10cc шприц. Прикрепить 10cc шприц иглой, заливают в 10 мл коллагеназы и заменить поршень. Нажмите коллагеназы в вену, пока не появится первая сумма выхода открытый конец. Re-зажим открытым концом и залейте коллагеназы, пока не будет умеренным вздутие вен. Слишком много растяжение приводит к загрязнению гладкие мышцы.
    7. Массаж шнур мягко.
    8. Инкубируйте мозга (с hemostats, игл и шприцев прилагается) в DPBS при температуре 37 ° С в течение 15 мин.
    9. Хотя инкубации, продолжают шаги 1-8 с 2-го мозга.
    10. После инкубации взять шнур из стакана и, удерживая шнур в течение 50 мл трубки вырезать конца выше нижнего зажима. Будьте уверены, чтобы собрать все, что в трубке. Нажмите оставшиеся коллагеназы через шнур, затем приложите 20cc шприц и нажмите Хэнкс через с умеренным давлением.
    11. Если не гладкомышечных клеток необходимы, отказаться от мозга на этот раз. В противном случае, место же шнур во второй 50 мл трубки с ~ 5 мл коллагеназы и инкубировать при 37 ° С в течение 30-60 мин.
    12. Держите трубку, пока все шнуры сделаны.
    13. Спиновые труб при ~ 1200 оборотов в минуту в течение 5 мин.
    14. Аспирируйте супернатант (за исключением ~ 1-2 мл). Ресуспендируют пеллет в 5mls PHEC + и пластины в T25
    15. Инкубировать при 37 ° C с 5% CO 2 за одну ночь.
    16. На следующий день удалить супернатант и заменить свежей информации. Если Есть много эритроцитов, мыть один раз с M199, затем добавить PHEC +. Продолжить инкубации, как обычно, пока пластина сливной (1-4 дней). Разделить на желатинизированный T75.
    17. После T75 является вырожденным, разделен на три T75s. Замораживание два флакона в колбу.

    Примечание: эндотелиальных клеток (неактивированных) имеют вид булыжника. Эндотелиальных клетках иногда активирован (длинные и заостренные) сразу после изоляции, после нескольких проходов они обычно возвращаются в неактивное состояние.

    Уборка

    1. Очень осторожно, распоряжаться иглы в контейнере острых предметов.
    2. Утилизация шприцев в большой контейнер для биологически опасных.
    3. Положите все ткани в небольшой сумке биологической опасности. Закройте пакет и заморозить при -20 ° до сжигания.
    4. Замочить всех инструментов в virucide по крайней мере 10 мин.
    5. Добавить инкубации СМИ отходов / отбеливатель стакан. Дайте настояться в течение 10 мин.
    6. Отменить скамейке прокладки в биологически опасных отходов.
    7. Спрей вниз внутри и снаружи стаканы, настольный и крышка водяной бане с vircide. Дайте настояться 10 минут, затем протереть.
    8. Промыть стаканы и приборы с теплой водой и повесить на стойку для сухой (пятно от инструментов, чтобы они не ржавеют).
    9. Утилизация отходов дезактивации в раковину.
    10. Возврат неиспользованных средств массовой информации в холодильник.
    11. Утилизировать перчатки в биологически опасных отходов.

    Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

    Disclosures

    Materials

    Name Company Catalog Number Comments
    0.1% Collagenase 10ml per cord, warmed to 37°C
    Tissue culture flasks T75, one per cord.
    Hanks medium
    scissors sterile
    beaker sterile
    50 ml tubes

    Comments

    10 Comments

    may you tell me wath kind of collagenase do you use? thank you!
    Reply

    Posted by: AnonymousMay 16, 2008, 5:47 AM

    hi   i have been using dispase to isolate cells. iam succeeding in getting the cells but they are not spreading properly . even after two days iam not able to see  the typical cobble stone appearance. can you help.  Rathna  
    Reply

    Posted by: AnonymousJune 1, 2008, 11:25 AM

    hallo,can you tell me what's the  PHEC+ ?thank you !
    Reply

    Posted by: AnonymousDecember 15, 2008, 6:27 AM

    Hi, do you have any idea how many cells I can get from a 90% confluent flask (²5 or 75 qcm)? Many thanks in advance, Karin
    Reply

    Posted by: AnonymousAugust 26, 2009, 8:06 AM

    From my experience working with HUVEC, a confluent T²5 flask has about 400,000 to 600,000 million cells while a confluent T75 flask has approximately ²-4 millions cells. From this, you can probably roughly deduce how many cells are in a 90% confluent T²5/T75 flask. I hope this help.
    Reply

    Posted by: AnonymousSeptember 8, 2009, 5:45 AM

    hi
    how to i prepare collagenase for HUVEC isolation
    Reply

    Posted by: swati s.October 22, 2009, 1:45 PM

    Hi,

    I was a synthetic organic chemist and am trying to conduct a bio-organic project. I will be very thankful if you would share some info with me about how to lysate the HUVECs.

    Ge
    Reply

    Posted by: Ge Z.January 11, 2010, 6:56 PM

    To answer Ge's question, our lab lysate the HUVEC by adding lysate buffer 1x either in DPBS or water.
    Reply

    Posted by: AnonymousJanuary 20, 2010, 2:54 PM

    hi,

    Very Intresting way, but I wonder how many passages they can be usefull?
    Is there any difference between commercially available ones and freshly isolated ones(these ones)?
    Thanks in advance:-)
    Reply

    Posted by: AnonymousAugust 3, 2012, 11:57 AM

    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Metrics

    Waiting
    simple hit counter