The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
This article is a part of JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.
You do not have access to any JoVE content through your current IP address.
IP: 50.16.17.90, User IP: 50.16.17.90, User IP Hex: 839913818
Current Access Through Your Registered Email Address
You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please sign in or create an account with your institutional email address to access this content.
The JoVE video player is compatible with HTML5 and Adobe Flash. Older browsers that do not support HTML5 and the H.264 video codec will still use a Flash-based video player. We recommend downloading the newest version of Flash here, but we support all versions 10 and above.
Unable to load video. Please check your Internet connection and reload this page. If the problem continues, please let us know and we'll try to help.
An unexpected error occurred. Please check your Internet connection and reload this page. If the problem continues, please let us know and we'll try to help.
Ангиогенез представляет собой сложный многоступенчатый процесс, где в ответ на ангиогенных стимулы, новые суда создаются из существующих сосудов. Эти шаги включают в себя: деградации базальной мембраны, пролиферации и миграции (прорастание) эндотелиальных клеток (ЕК) в внеклеточного матрикса, выравнивания ЕС в шнуры, просвет образования, анастомоза, и формирование новой базальной мембраны. Многие в пробирке тесты были разработаны для изучения этого процесса, но большинство лишь имитируют определенные этапы ангиогенеза, и морфологически судов часто не похожи на судах в естественных условиях. Здесь мы показываем, оптимизированных в пробирке ангиогенеза анализа, который использует пупочной вены человека ЕС и фибробластов. Эта модель повторяет все ключевые ранней стадии ангиогенеза, и, что важно суда дисплей патент межклеточных люмен окруженной поляризованной ЕС. Суда могут быть легко наблюдать фазового контраста и покадровой микроскопии, а также взысканы в чистом виде для последующих применений.
Положите шнур на чистую площадку и промокните лишнюю кровь. Сделайте свежие порезы на обоих концах кабеля.
Вставьте 21 1 / 2 G иглу с иглы пластиковый чехол ON, в вену. (Вены является крупнейшим открытием; 2 небольших них артерий)
Зажим иглу в месте с кровоостанавливающего и приложите 20cc шприц Хэнкс на иглу.
Нажмите Хэнкс через вену с умеренным давлением. Сбор отходов в стакан с хлоркой. (Холдинг иглу и шнур с одной стороны, выдвигая помешает иглы выкатились из вены.) Если есть много крови в вене, мыть второй раз.
Положите шнур на площадку и зажим другой конец вены. Залейте несколько мл Хэнкс и проверить на наличие утечек вдоль шнура. Вывод 5 мл и отсоединить нижний зажим.
Отключите 20cc шприц. Удалите поршень из 10cc шприц. Прикрепить 10cc шприц иглой, заливают в 10 мл коллагеназы и заменить поршень. Нажмите коллагеназы в вену, пока не появится первая сумма выхода открытый конец. Re-зажим открытым концом и залейте коллагеназы, пока не будет умеренным вздутие вен. Слишком много растяжение приводит к загрязнению гладкие мышцы.
Массаж шнур мягко.
Инкубируйте мозга (с hemostats, игл и шприцев прилагается) в DPBS при температуре 37 ° С в течение 15 мин.
Хотя инкубации, продолжают шаги 1-8 с 2-го мозга.
После инкубации взять шнур из стакана и, удерживая шнур в течение 50 мл трубки вырезать конца выше нижнего зажима. Будьте уверены, чтобы собрать все, что в трубке. Нажмите оставшиеся коллагеназы через шнур, затем приложите 20cc шприц и нажмите Хэнкс через с умеренным давлением.
Если не гладкомышечных клеток необходимы, отказаться от мозга на этот раз. В противном случае, место же шнур во второй 50 мл трубки с ~ 5 мл коллагеназы и инкубировать при 37 ° С в течение 30-60 мин.
Держите трубку, пока все шнуры сделаны.
Спиновые труб при ~ 1200 оборотов в минуту в течение 5 мин.
Аспирируйте супернатант (за исключением ~ 1-2 мл). Ресуспендируют пеллет в 5mls PHEC + и пластины в T25.
Инкубировать при 37 ° C с 5% CO 2 за одну ночь.
На следующий день удалить супернатант и заменить свежей информации. Если Есть много эритроцитов, мыть один раз с M199, затем добавить PHEC +. Продолжить инкубации, как обычно, пока пластина сливной (1-4 дней). Разделить на желатинизированный T75.
После T75 является вырожденным, разделен на три T75s. Замораживание два флакона в колбу.
Примечание: эндотелиальных клеток (неактивированных) имеют вид булыжника. Эндотелиальных клетках иногда активирован (длинные и заостренные) сразу после изоляции, после нескольких проходов они обычно возвращаются в неактивное состояние.
Уборка
Очень осторожно, распоряжаться иглы в контейнере острых предметов.
Утилизация шприцев в большой контейнер для биологически опасных.
Положите все ткани в небольшой сумке биологической опасности. Закройте пакет и заморозить при -20 ° до сжигания.
Замочить всех инструментов в virucide по крайней мере 10 мин.
Добавить инкубации СМИ отходов / отбеливатель стакан. Дайте настояться в течение 10 мин.
Отменить скамейке прокладки в биологически опасных отходов.
Спрей вниз внутри и снаружи стаканы, настольный и крышка водяной бане с vircide. Дайте настояться 10 минут, затем протереть.
Промыть стаканы и приборы с теплой водой и повесить на стойку для сухой (пятно от инструментов, чтобы они не ржавеют).
Утилизация отходов дезактивации в раковину.
Возврат неиспользованных средств массовой информации в холодильник.
Утилизировать перчатки в биологически опасных отходов.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
hi
i have been using dispase to isolate cells. iam succeeding in getting the cells but they are not spreading properly . even after two days iam not able to see the typical cobble stone appearance. can you help.
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
From my experience working with HUVEC, a confluent T25 flask has about 400,000 to 600,000 million cells while a confluent T75 flask has approximately 2-4 millions cells. From this, you can probably roughly deduce how many cells are in a 90% confluent T25/T75 flask. I hope this help.
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
Hi,
I was a synthetic organic chemist and am trying to conduct a bio-organic project. I will be very thankful if you would share some info with me about how to lysate the HUVECs.
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
hi,
Very Intresting way, but I wonder how many passages they can be usefull?
Is there any difference between commercially available ones and freshly isolated ones(these ones)?
Thanks in advance:-)
may you tell me wath kind of collagenase do you use? thank you!
1
ReplyPosted by: loryMay 16, 2008, 5:47 AM