ديسمبر 25, 2016
يصف هذا البروتوكول مشرط التحميل الفلورسنت صبغة تقنية نقل الذي يقيس الاتصالات بين الخلايا من خلال القنوات الفجوة تقاطع. فجوة الاتصال بين الخلايا وصلي هو عملية الخلوية الرئيسية التي يتم من خلالها الحفاظ على توازن الأنسجة وتعطيل هذه الإشارات الخلوية له تأثيرات صحية سلبية.
الهدف العام هو توفير اختبار بسيط لقياس الاتصال بين الخلايا الوصلية للفجوة من خلال مجموعة من خلايا الثدييات التي يمكن أن تخدم مجموعة واسعة من الاحتياجات الدوائية والسمية في المختبر. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية في مجال علم السموم ، مثل ما إذا كان المركب يؤثر على نمو الأنسجة أو الحفاظ عليها ، عن طريق تنظيم الاتصال بين الخلايا الوصلي للفجوة. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنها تقدم تقييما بسيطا وسريعا لوظيفة تقاطع الفجوة في عدد كبير من الخلايا استجابة للمواد السامة والسموم.
ستظهر الإجراء أجنا أوزوني ، مساعدة باحثة جامعية من مختبري. لبدء التجربة ، قم بالبذور ثلاث مرات 10 إلى الخلايا الظهارية الخامسة WB-F344 لكبد الفئران على ألواح استزراع قطرها 35 ملم تحتوي على وسط النسر المعدل بالإضافة إلى 5٪ مصل الجنين البقري. استزراع الخلايا في حاضنة حتى تصل إلى التقاء 100٪ وتستمر في العلاج التجريبي للخلايا.
لمواصلة تجارب الاستجابة للجرعة ، أضف 10 ميكرولتر و 20 ميكرولترا من محلول مخزون محضر مسبقا ، اثنين من المليمولار من الفينانثرين في 100٪ أسيتونيتريل ، وأربعة ميكرولتر ، وستة ميكرولتر ، وثمانية ميكرولترات من محلول مخزون 20 مليمولار من الفينانثرين في 100٪ أسيتونيتريل إلى ثلاثة لوحات من الخلايا تحتوي على ملليلترين من وسط النمو لكل حجم إضافي من محلول المخزون. بعد ذلك ، أضف أربعة ميكرولتر ، وستة ميكرولتر ، وثمانية ميكرولتر ، و 10 ميكرولترات ، و 20 ميكرولترا من محلول 100٪ من الأسيتونيتريل إلى ثلاثة ألواح من الخلايا تحتوي على ملليلترين من وسط النمو لكل حجم إضافي من محلول الأسيتونيتريل ليكون بمثابة التحكم في السيارة. بعد إضافة الأسيتونيتريل ، احتضن الألواح.
لإجراء تجارب الاستجابة للوقت ، أضف سبعة ميكرولترات من محلول مخزون 20 ملليمولار من الفينانثرين في 100٪ أسيتونيتريل إلى ثلاثة ألواح من الخلايا ، تحتوي على ملليلترين من وسط النمو لكل نقطة زمنية. بعد ذلك ، أضف سبعة ميكرولترات من الأسيتونيتريل بنسبة 100٪ إلى ثلاث ألواح من الخلايا ، تحتوي على ملليلترين من وسط النمو لكل نقطة زمنية ، لتكون بمثابة التحكم في السيارة. احتضان اللوحات لكل نقطة زمنية محددة.
تخلص من وسط الثقافة عن طريق سكب الوسط برفق. شطف الخلايا بثلاثة ملليلتر من PBS ، وإما صب أو شفط بين الشطف. ماصة واحدة مليلتر واحد من مليغرام واحد لكل مليلتر صبغة صفراء لوسيفر مذابة في PBS في كل لوحة خلية.
قم بتحميل الصبغة مسبقا في الخلايا عن طريق الضغط على المشرط بين السبابة والإبهام. ضع المشرط بشكل عمودي على حافة لوحة الاستزراع وخمسة ملليمترات منها ثم استخدم الجاذبية للسماح للمشرط بالتدحرج برفق من هذه الزاوية العمودية إلى زاوية 15 درجة. قم بلف الشفرة عبر مجموعة من الخلايا في ثلاث مناطق مختلفة من اللوحة الإجمالية.
بعد ذلك ، احتضان الخلايا بمحلول LY لمدة ثلاث دقائق في درجة حرارة الغرفة. صب أو شفط LY وشطف الخلايا لإزالة كل الصبغة خارج الخلية والقضاء على مضان الخلفية الخلوية الزائدة. ثم أضف 0.5 مل من محلول الفورمالين المخزن 4٪ من الفوسفات لإصلاح الخلايا.
اعرض الخلايا الثابتة باستخدام مجهر التألق عند تكبير 200 ضعف. قم بمحاذاة جميع اللوحات بحيث يكون خط المسافة البادئة موازيا لمجال الرؤية الأفقي. تم إنشاء سلسلة من صور SL-DT للخلايا الظهارية لكبد الفئران WB-F344 المعالجة بجرعات متزايدة من الفينانثرين.
يحدث الانخفاض في هجرة صبغة الفلورسنت الصفراء لوسيفر بسبب زيادة جرعات الفينانثرين ، مما يدل على زيادة التثبيط الناجم عن المواد السامة للاتصال بين الخلايا الوصلية الفجوة ، أو GJIC. تم حساب متوسط جزء التحكم ، أو قيم FOC ، التي تم الحصول عليها من صور SL-DT ، وتحليلها إحصائيا ، ثم رسمها بيانيا. باتباع هذا الإجراء ، يمكن إجراء طرق أخرى مثل البقع الغربية لبروتينات النقل المفردة من أجل الإجابة على أسئلة إضافية.
مثل ، هل هذه المركبات تنشط الأحداث الانقسامية لثقب الخلية؟
اعرض النص الكامل واحصل على الوصول إلى آلاف الفيديوهات العلمية
يصف هذا البروتوكول تقنية نقل صبغات فلورية محملة على مشرط تقيس التواصل بين الخلايا من خلال قنوات الفجوات. توفر هذه الطريقة فحصًا بسيطًا لتقييم التواصل بين الخلايا عبر قنوات الفجوات في خلايا الثدييات، وهو أمر بالغ الأهمية لفهم توازن الأنسجة.
Gap junctional intercellular communication (GJIC) serves as a functional biomarker for assessing tissue homeostasis disruption by toxicants and evaluating protective effects of natural products. The scalpel loading-fluorescent dye transfer (SL-DT) technique enables rapid, population-level assessment of GJIC inhibition, supporting mechanistic de-risking in early discovery. This assay provides predictive confidence for prioritizing compounds based on their impact on cellular communication pathways critical to organ function.
The SL-DT assay functions as a discovery-stage tool for mechanistic insight, positioned before lead optimization to filter compounds with high tissue disruption risk.