-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
تقييم متشابك تعدد استخدام المشبك تصحيح كامل الخلية الكهربية
تقييم متشابك تعدد استخدام المشبك تصحيح كامل الخلية الكهربية
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Evaluation of Synaptic Multiplicity Using Whole-cell Patch-clamp Electrophysiology

تقييم متشابك تعدد استخدام المشبك تصحيح كامل الخلية الكهربية

Full Text
13,621 Views
10:52 min
April 23, 2019

DOI: 10.3791/59461-v

Julia K. Sunstrum1, Wataru Inoue1,2,3

1Neuroscience Program, Schulich School of Medicine and Dentistry,University of Western Ontario, 2Robarts Research Institute, Schulich School of Medicine and Dentistry,University of Western Ontario, 3Department of Physiology and Pharmacology, Schulich School of Medicine and Dentistry,University of Western Ontario

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for evaluating functional synaptic multiplicity in neurons using whole-cell patch clamp electrophysiology on acute brain slices. The approach allows researchers to estimate synaptic multiplicity across various species and brain areas, emphasizing the importance of obtaining high-quality recordings.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Electrophysiology
  • Synaptic mechanisms

Background

  • Understanding synaptic multiplicity is essential for deciphering neuronal communication.
  • Previous experiments have highlighted the complexity of studying synaptic contacts.
  • A reliable method is needed for gross estimation of synaptic multiplicity in various models.
  • This protocol utilizes whole-cell patch clamp techniques to provide insight into synaptic dynamics.

Purpose of Study

  • To develop a straightforward protocol for estimating synaptic multiplicity.
  • To facilitate the understanding of neurotransmitter release mechanisms.
  • To provide a method adaptable to different brain areas and species.

Methods Used

  • Whole-cell patch clamp electrophysiology on acute brain slices.
  • The model includes neuronal pairs across various brain regions.
  • Experiments include blocking action potentials and calcium-dependent vesicular release to assess multiplicity.
  • Critical procedures include maintaining stable access resistance and temperature controls during recordings.
  • Data analysis involves statistical comparisons of excitatory postsynaptic currents (EPSCs) under varying conditions.

Main Results

  • Identified methods to estimate synaptic multiplicity through changes in EPSC amplitude.
  • Demonstrated that interference with vesicular release alters postsynaptic current responses, confirming synaptic multiplicity.
  • Addressed multivesicular release implications for synaptic effectiveness and neurotransmitter concentration.
  • Validated the protocol across different experimental conditions, providing robust data on synaptic dynamics.

Conclusions

  • The study establishes a reliable protocol for assessing synaptic multiplicity in neuron pairs.
  • Findings enhance the understanding of synaptic transmission and its underlying mechanisms.
  • This method can be utilized in various neurobiological contexts to study synaptic behavior and plasticity.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using whole-cell patch clamp electrophysiology?
Whole-cell patch clamp provides detailed insights into neuronal excitability and synaptic responses, allowing for high-resolution data collection.
How is synaptic multiplicity assessed in this study?
Synaptic multiplicity is estimated by analyzing changes in the amplitude of spontaneous EPSCs in response to pharmacological interventions.
What types of data outcomes does the method yield?
The method yields electrophysiological data, specifically measurements of excitatory postsynaptic currents and their amplitudes under various conditions.
Can the protocol be adapted for different species?
Yes, the protocol is designed for versatility and can be applied to various species and brain regions for investigating synaptic dynamics.
What are some limitations to consider when using this method?
Challenges may arise in achieving stable access resistance and ensuring the quality of cell recordings, which are critical for accurate data interpretation.
How does the study contribute to understanding synaptic mechanisms?
By establishing a protocol to investigate synaptic multiplicity, the study advances knowledge on synaptic transmission and neuronal communication.

نقدم هنا، على بروتوكول لتقييم تعدد متشابك الوظيفية باستخدام التصحيح كامل الخلية الكهربية المشبك في شرائح الدماغ الحادة.

في الدماغ، زوج من الخلايا العصبية غالبا ما تشكل اتصالات متشابكة متعددة، وهو ما يسمى تعدد متشابك. ومع ذلك، يتطلب الفحص الدقيق للتعدد المتشابك تجارب صعبة من الناحية الفنية. يصف هذا البروتوكول طريقة بسيطة لتقدير إجمالي تعدد متشابك باستخدام الخلايا الكاملة التصحيح المشبك الكهربائية الفيزيولوجيا.

ويمكن تطبيق هذه الطريقة على أي نوع ومنطقة الدماغ للتحقيق في تعدد متشابك. هذه الطريقة تتطلب المهارات الأساسية في خلية كاملة التصحيح- المشبك الكهربائية الفيزيولوجيا. الحصول على تسجيلات عالية الجودة مع مقاومة وصول منخفضة ومستقرة أمر بالغ الأهمية للتفسير الدقيق للبيانات.

للحصول على تكوين الخلية الكاملة، ضع ماصة التسجيل فوق الشريحة وتيار الإزاحة في وضع المشبك الجهد. تطبيق ضغط إيجابي طفيف على ماصة، وقفل stopcock. بعد ذلك، حدد خلية سليمة مع غشاء سليم، والاقتراب من الأنسجة مع ماصة.

وينبغي أن يسبب الضغط الإيجابي اضطرابا طفيفا على الأنسجة. ببطء جعل ماصة أقرب إلى الخلية في حركة قطرية حتى يتم تشكيل غمل صغير على سطح الخلية. ثم، الافراج عن قفل الضغط الإيجابي.

ستبدأ الخلية في تشكيل ختم، وسوف تزيد المقاومة فوق غيغا و في المشبك الجهد، عقد الخلية في ناقص 68 millivolts. في وقت لاحق، سحب قليلا من الماصات بعيدا عن الخلية قطريا لإزالة الضغط الزائد.

تعويض عن السعة الماصة السريعة والبطيء. تطبيق شفط قصيرة من خلال أنبوب متصل إلى حامل ماصة لاختراق الخلية والحصول على تكوين الخلية الكاملة. ثم، التحول إلى وضع الخلية على نافذة اختبار الغشاء في الحصول على البيانات الكهربائية وتحليل البرمجيات.

الحفاظ على درجة حرارة حمام التسجيل عند 27 إلى 30 درجة مئوية ومعدل التدفق عند 1.5 إلى 2 ملليلتر في الدقيقة للتجارب اللاحقة. في المشبك المتعدد، عمل المحتملة مزامنة إطلاق الناقل العصبي ويولد أكبر ما بعد ينابتيك الحالية. منع العمل المحتملة والطلقات التي تعتمد على الكالسيوم مع TTX والكادميوم يمنع الجمع ما بعد المينابتية الحالية ويقلل من السعة.

عندما لا يكون هناك تعدد، حظر العمل المحتملة لن يغير السعة. في التجربة الأولى، لتقدير التعدد، اضغط على الخلية عند ناقص 68 ملليفولت بينما تضخها بـ aCSF منخفض الكالسيوم. سجل مراكز EPSCs التلقائية لمدة خمس دقائق على الأقل لضمان خط أساس مستقر.

بعد ذلك ، إضافة 30 micromolars 4-AP إلى ACSF لزيادة الأحداث التي تعتمد على العمل ، وتسجيل EPSCs التلقائية لمدة 10 دقائق على الأقل للحصول على تأثير الدواء الكامل. ثم، إضافة 0.5 micromolars TTX و 10 ميكرومولار الكادميوم إلى ACSF مع 4-AP، وتسجيل EPSCs مصغرة لمدة 10 دقائق على الأقل. للتحليل غير متصل، استخدم آخر دقيقة من خط الأساس مباشرة قبل تطبيق 4-AP، و10ث من تطبيق 4-AP، والدقيقة 10 من تطبيق TTX.

في هذه التجربة، يتم استبدال الكالسيوم خارج الخلية مع السترونتيوم لتم اإفخاض إطلاق من vesicles متشابك. لذلك، إذا كان التعدد موجوداً، فإن هذا ينبغي أن يقلل من سعة التيارات بعد التمثيل. في التجربة الثانية، سجل EPSCs عفوية لمدة خمس دقائق على الأقل في حين ضخ الخلية مع aCSF الكالسيوم العادي.

لdynchronize الافراج عن vesicle ، والبدء في ضخ الخلية مع aCSF السترونتيوم ، وتسجيل EPSCs عفوية. لتحليل دون اتصال، لتحديد ما إذا كانت الاتساع كبيرة EPSCs عفوية بسبب الإفراج المتزامن من الفويصلات، قارن الدقيقة الأخيرة من خط الأساس إلى الدقيقة 10 من تطبيق السترونتيوم ACSF. يمكن أن ينطوي على التعدد إطلاق متعددة الناحية، مما يؤدي إلى تركيز أعلى العصبي في الشق متشابك.

إضافة غاما-DGG، وهو خصم مستقبلات AMPA منخفضة التقارب، يؤدي إلى تثبيط أقل فعالية من multiquantal أكبر مقارنة مع التيارات ما بعد أحادية أحادية أصغر. بدون إطلاق متعدد المستويات، سيكون gamma-DGG فعالًا بنفس القدر على التيارات التيارات التي تتم بعد السنوات. في التجربة الثالثة، لاختبار إطلاق متعدد القطاعات، سجل EPSCs التلقائي في aCSF منخفضة الكالسيوم لمدة خمس دقائق على الأقل.

إضافة 30 ميكروموللار 4-AP إلى ACSF من خلال نظام الضخ. سجل EPSCs عفوية لمدة 10 دقيقة على الأقل. ثم، إضافة 200 micromolars غاما-DGG إلى ACSF مع 4-AP، وتسجيل EPSCs عفوية لمدة 10 دقائق على الأقل.

كتجربة تحكم في خلية منفصلة، كرر الإجراءات، ولكن تطبيق تركيز منخفض من DNQX بدلاً من غاما-DGG. لتحليل دون اتصال، وتحليل اللحظة الأخيرة من كل تطبيق المخدرات. رشقات نارية من النشاط متشابك يمكن أن تزيد بشكل عابر من إطلاق العمل العفوي المحتملة واحتمال الإفراج عن afferents حفز.

إذا أظهرت الخلايا العصبية تعدد, زيادة في إمكانات العمل ينبغي أن يسبب زيادة عابرة في سعة التيارات بعد تينابتيك. في التجربة الرابعة، سجل EPSCs عفوية في الكالسيوم aCSF العادي. لزيادة إطلاق العمل المحتملة، وتحفيز afferents باستخدام القطب الزجاجي monopolar مليئة ACSF بمعدل 20 هرتز لمدة ثانيتين، وتكرار 10 مرات مع فاصل بين انفجار 20 ثانية.

للتحليل، استخدم 5000 مللي ثانية من وحدات EPSCs التلقائية قبل التحفيز الأول كخط أساس وقارنها بـ 10 إلى 300 مللي ثانية من EPSCs التلقائية بعد التحفيز النهائي. ثم، تأخذ السعة متوسط وتواتر التغيير أكثر من 10 التجارب. تحليل EPSCs التلقائية و EPSCs مصغرة باستخدام برنامج يكشف ويحلل التيارات متشابك.

استخدام المعلمات الكشف المقترحة ووظيفة التحليل دون توقف للكشف عن EPSCs مستقبلات AMPA بوساطة. تفحص يدويا كل تسجيل للتأكد من أن البرنامج هو الكشف بدقة كل حدث. تصدير بيانات الحدث عن طريق نسخها إلى الحافظة، ولصقها في برنامج إدارة بيانات.

بعد ذلك، حساب متوسط التردد والسعة لكل علاج المخدرات، وإجراء التحليلات الإحصائية ذات الصلة. في مثال هو مبين هنا، 4-AP يزيد من كل من السعة وتواتر من EPSCs عفوية. التطبيق اللاحق من TTX والكادميوم يقلل من كل من السعة والتردد.

هنا هو توزيع عفوية EPSC السعة من التسجيل. في الخلايا العصبية المهوّسة التي تم فحصها هنا، فإن سعة وتواتر شروط خط الأساس وTTX هي نفسها، مما يشير إلى أن مراكز EPSCs التلقائية الأساسية تحتوي على عدد قليل جدًا من مراكز EPSCs التي تعتمد على العمل. وبناء على ذلك، يمكن للتجارب اللاحقة أن تقارن الفرق بين خط الأساس و 4-ا ف ب لقياس التعدد.

قوة انتقال متشابك يمكن أن يزيد بشكل عابر من رشقات نارية من النشاط متشابك. للتحقيق في تعدد تحت ظروف أكثر فسيولوجية، يمكن استخدام التحفيز afferent لزيادة احتمال إطلاق النار واحتمال إطلاق. وفيما يلي ملخصات من التردد EPSC التلقائي والتغيرات السعة بعد التحفيز متشابك.

التسجيلات المستقرة ضرورية لتفسير دقيق للبيانات. وصف البيانات إذا تغيرت مقاومة الوصول بأكثر من 20٪ أثناء التسجيل، لأن هذا قد يربك التحليل. يقدم هذا البروتوكول طريقة بسيطة لتقدير التعدد متشابك، وهو محدد رئيسي للفعالية متشابك ولدونته في الظروف الفسيولوجية والفيزيولوجية المختلفة.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

علم الأعصاب 146 المسألة كامل الخلية التصحيح-المشبك الكهربية السابقين فيفو انتقال متشابك كسب متشابك تعدد بارافينتريكولار نواة تحت المهاد وإطلاق سراح كورتيكوتروبين هرمون تحت المهاد

Related Videos

الفيزيولوجيا الكهربية لمشبك التصحيح للخلية الكاملة: طريقة لدراسة الخصائص الكهربائية للخلايا العصبية

03:42

الفيزيولوجيا الكهربية لمشبك التصحيح للخلية الكاملة: طريقة لدراسة الخصائص الكهربائية للخلايا العصبية

Related Videos

5.9K Views

دراسة استثارة الخلايا العصبية الفلورية باستخدام مشبك التصحيح للخلية الكاملة

03:06

دراسة استثارة الخلايا العصبية الفلورية باستخدام مشبك التصحيح للخلية الكاملة

Related Videos

549 Views

إنشاء تكوين مشبك جهد خلية كاملة للتسجيلات الفيزيولوجية الكهربية في شرائح الدماغ

02:42

إنشاء تكوين مشبك جهد خلية كاملة للتسجيلات الفيزيولوجية الكهربية في شرائح الدماغ

Related Videos

722 Views

تسجيل مشبك رقعة الخلية الكاملة في خلية عصبية جيلاتينية جوهرية لشريحة من الحبل الشوكي

03:45

تسجيل مشبك رقعة الخلية الكاملة في خلية عصبية جيلاتينية جوهرية لشريحة من الحبل الشوكي

Related Videos

643 Views

A-متعدد القطب نظام التصحيح، المشبك بمساعدة الحاسوب

11:01

A-متعدد القطب نظام التصحيح، المشبك بمساعدة الحاسوب

Related Videos

14.5K Views

خلية كاملة تسجيلات التصحيح، المشبك من Morphologically- وحددت Neurochemically-الحصين Interneurons

14:37

خلية كاملة تسجيلات التصحيح، المشبك من Morphologically- وحددت Neurochemically-الحصين Interneurons

Related Videos

25.2K Views

تقرن تسجيلات خلية كاملة في عضوي شرائح الحصين

09:23

تقرن تسجيلات خلية كاملة في عضوي شرائح الحصين

Related Videos

15.3K Views

الكهربية والمورفولوجية توصيف العصبية الحادة رقائق في الدماغ عن طريق شرائح الموثوقة التصحيح، المشبك التسجيلات

10:24

الكهربية والمورفولوجية توصيف العصبية الحادة رقائق في الدماغ عن طريق شرائح الموثوقة التصحيح، المشبك التسجيلات

Related Videos

17.8K Views

تسجيلات خلية كاملة التصحيح، المشبك في الدماغ شرائح

07:23

تسجيلات خلية كاملة التصحيح، المشبك في الدماغ شرائح

Related Videos

62.1K Views

تصحيح شريحة المشبك تقنية لتحليل اللدونة المستحثة بالتعلم

11:56

تصحيح شريحة المشبك تقنية لتحليل اللدونة المستحثة بالتعلم

Related Videos

16.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code