-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
امتصاص / تأين الليزر بمساعدة المصفوفة المضان مع قياس الطيف الكتلي للتأين الناجم عن الليزر للخلايا...
امتصاص / تأين الليزر بمساعدة المصفوفة المضان مع قياس الطيف الكتلي للتأين الناجم عن الليزر للخلايا...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Fluorescence-Guided Matrix-assisted Laser Desorption/Ionization with Laser-Induced Postionization Mass Spectrometry of Individual Rat Neural Cells

امتصاص / تأين الليزر بمساعدة المصفوفة المضان مع قياس الطيف الكتلي للتأين الناجم عن الليزر للخلايا العصبية الفردية للفئران

Full Text
897 Views
08:48 min
May 23, 2025

DOI: 10.3791/68376-v

Seth W. Croslow*1,2, Timothy J. Trinklein*1, Siheun Lee1,3, Stanislav S. Rubakhin1,2, Jonathan V. Sweedler1,2,3,4

1Beckman Institute for Advanced Science and Technology,University of Illinois Urbana-Champaign, 2Department of Chemistry,University of Illinois Urbana-Champaign, 3Department of Molecular and Integrative Physiology,University of Illinois Urbana-Champaign, 4Neuroscience Program,University of Illinois Urbana-Champaign

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for using microMS for fluorescence-guided, single-cell MALDI-2 mass spectrometry, enhancing molecular profiling of primary rat neuronal cells. The research aims to address cellular heterogeneity and link molecular profiles to cellular identity and function within complex tissues.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Mass Spectrometry
  • Cellular Biology

Background

  • High-throughput image-guided workflows facilitate studies of cellular heterogeneity.
  • Advanced MALDI-2 mass spectrometry allows for spatially resolved analysis.
  • Current challenges include data analysis and sensitivity issues.
  • Robust computational tools are necessary for large datasets.

Purpose of Study

  • To improve high-throughput methods for analyzing individual cells.
  • To link molecular data with cellular identity and function.
  • To enhance insights into the biology of complex neural systems.

Methods Used

  • The protocol employs single-cell MALDI-2 mass spectrometry for analysis.
  • The primary model consists of primary rat neuronal cells.
  • Steps include slide preparation, sublimation of matrix, and blob analysis for cell detection.
  • Detailed microscopy image acquisition and computational registration are critical.
  • Data processing involves custom software for enhancing mass spectrometry results.

Main Results

  • Revealed lipid-based cellular heterogeneity across brain regions.
  • UMAP analysis successfully clustered cells by brain region.
  • Cluster-specific lipid signatures were identified, highlighting distinct cellular profiles.

Conclusions

  • This protocol enables rapid, targeted analysis of neuronal cells without extensive manipulation.
  • The findings enhance understanding of molecular and cellular biology in neuroscience.
  • Insights gained can inform future studies on cellular function in complex tissues.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using single-cell MALDI-2 mass spectrometry?
Single-cell MALDI-2 mass spectrometry offers enhanced sensitivity and spatial resolution compared to traditional methods, enabling detailed molecular profiling of individual cells.
How is the primary rat neuronal cell model implemented?
Originally isolated neuronal cells are used, allowing for the analysis of cellular profiles across different brain regions without the need for extensive manipulation.
What types of data can be obtained with this method?
This method provides molecular readouts of lipid profiles, allowing researchers to discern lipid-based cellular heterogeneity and functional insights across neuronal populations.
How can this method be applied to other biological systems?
The technique can potentially be adapted to analyze other cell types or tissues, providing insights into cellular interactions and molecular diversity in various biological contexts.
What are some limitations of this protocol?
Challenges include computational data analysis complexities and ensuring reproducibility among different samples, which are critical for accurate profile assessments.

يحدد هذا البروتوكول استخدام microMS لقياس الطيف الكتلي MALDI-2 أحادي الخلية الموجه بالفلورة ، مما يتيح التنميط الجزيئي المعزز للخلايا العصبية الأولية للفئران.

يركز بحثنا على تطوير تدفقات عمل قياس الطيف الكتلي MALDI عالية الإنتاجية وموجهة بالصور وحيدة الخلية للكشف عن عدم التجانس الخلوي وربط الملامح الجزيئية بهوية الخلية ووظيفتها واستجابتها في الأنظمة المعقدة.

تتيح الأجهزة المتقدمة ، مثل MALDI-2 ومطياف الكتلة عالي الدقة المكانية ، التحليل المستهدف والمحلي للخلايا المفردة ، مما يعزز الحساسية ويوسع نطاق التنميط الجزيئي في الأنسجة المعقدة. تشمل التحديات الحالية الحساسية المحدودة وقابلية التكرار عبر العينات وتحليل البيانات المعقدة. غالبا ما تكون بيانات MALDI متناثرة ومجموعات بيانات كبيرة بها آلاف الخلايا ومئات الجزيئات تتطلب أدوات حسابية قوية.

يعالج هذا البروتوكول الفجوة في الأساليب عالية الإنتاجية لتحليل الخلايا الفردية وحتى العضيات ، مما يتيح إجراء دراسات مفصلة للغاية عن عدم التجانس واكتساب رؤى حول البيولوجيا والوظيفة الجزيئية والخلوية.

يسمح هذا البروتوكول بالتحليل السريع المستهدف للخلايا المنتشرة عبر الشريحة، مما يلغي الحاجة إلى معالجة الخلايا أو مسح المنطقة الكاملة وزيادة الإنتاجية بشكل كبير.

[الراوي] للبدء ، اشطف كل شريحة بملليلترين إلى ثلاثة ملليلترات من أسيتات الأمونيوم 150 ملليمولار لإزالة بلورات الجلسرين والملح التي يمكن أن تتداخل مع الفحص المجهري وتطبيق مصفوفة MALDI ، ثم جفف الشرائح تحت تيار لطيف من النيتروجين أو اتركها تجف تماما في الهواء. قم بتحميل الشريحة المجففة في مرحلة المجهر. قم بتركيز المجهر باستخدام 10 نقاط دعم على الأقل موزعة بالتساوي عبر الشريحة بأكملها. باستخدام مرشحات مناسبة ل DAPI والتصوير بالمجال الساطع ، احصل على صورة مضان مبلطة للشريحة بأكملها بتكبير 5x إلى 10x ، مما يضمن التقاط العلامات الائتمانية على شرائح الفحص المجهري بوضوح في الصورة. قم بتجميع الصور المبلطة باستخدام برنامج الفحص المجهري ، مثل ZEN ZEISS. تحقق من عدم إزاحة الإطارات المتجانبة المتجاورة رأسيا. قم بمعالجة وتصدير كل صورة مخيطة كملف BigTIFF باستخدام برنامج الفحص المجهري أو كملف TIFF قياسي إذا كان حجم الصورة النهائي أقل من غيغابايت. قم بإذابة 20 ملليغرام من 2,5-ثنائي هيدروكسي أسيتوفينون في 1.5 مل من الأسيتون. ضع الشرائح في حامل غرفة التسامي ، ثم ضع الحامل في جهاز التسامي. قم بوضع محلول المصفوفة المذاب على رقاقة السيراميك واسمح للأسيتون بالتبخر تماما ، ثم أغلق غرفة التسامي لإغلاقها. املأ غرفة التبريد بطين من الماء المثلج وضعها بإحكام فوق غرفة التسامي. قم بتشغيل مضخة التفريغ والسماح للنظام بالتوازن لمدة خمس دقائق. ابدأ التسامي بتسخين الغرفة إلى 200 درجة مئوية لمدة خمس دقائق. بعد خمس دقائق ، قم بإزالة حمام الماء المثلج من الغرفة. اقلب درجة الحرارة إلى 25 درجة مئوية وضع المشتت الحراري فوق الغرفة. قم بالتنفيس ببطء عن غرفة التسامي لتحرير الضغط. افتح الغرفة وقم بإزالة الشرائح بعناية. افتح MicroMS وقم بإزالة صور الفحص المجهري BigTIFF باستخدام خيار مجموعة الصور لاستيعاب كل من قنوات المجال الساطع والفلورة. انتقل إلى أداة خيارات الكائن الثنائي كبير الحجم واضبط الحد الأقصى والحد الأدنى لحجم الكائن الثنائي كبير الحجم لتحديد نطاق حجم الكائن الثنائي كبير الحجم المقبول. قم بتعيين عتبة قناة التألق لاكتشاف الكائن الثنائي كبير الحجم. حدد قيمة التدوير لتحديد مدى الدائرية التي يجب أن تكون الخلايا المحددة للنظر فيها ، واختر اللون. استخدم خيار البحث عن الكائن الثنائي كبير الحجم للكشف عن الكائنات الثنائية كبيرة الحجم. عند المطالبة، احفظ قائمة الكائن الثنائي كبير الحجم تحت الاسم المطلوب. استخدم أداة Distance Filter لتعيين الحد الأدنى للمسافة بين كل خلية. اختبر الخطأ عبر نقاط الاختبار لتحديد خطأ الإزاحة بدقة. قم بتحميل الشرائح في الجهاز باستخدام محول الشريحة MTP II. بعد العودة إلى الكمبيوتر باستخدام MicroMS ، قم بالوصول إلى كمبيوتر مطياف الكتلة عبر تطبيق سطح المكتب البعيد. إذا كنت تستخدم الأداة لأول مرة، فتحقق من موضعها بالانتقال إلى الأدوات، متبوعا بإعدادات الأداة. في النافذة المنبثقة، اعرض مجموعة الإحداثيات مع موضعيها X وY وحدد كل نقطة من هذه النقاط المحددة في هندسة محول الشرائح II. قم بتحديث مواضع X و Y في نافذة MicroMS. باستخدام كاميرا مقياس الطيف الكتلي وعناصر التحكم في المسرح ، انتقل إلى موقع يمكن التعرف عليه بسهولة على الشريحة وانسخ إحداثيات الأداة. في MicroMS ، حدد نفس الموضع في صورة المجهر ، وانقر بزر الماوس الأيمن ، وأدخل الإحداثيات في النافذة المنبثقة. قم بتقريب الإحداثيات إلى أقرب الأعداد الصحيحة وافصلها بمسافة. بعد إضافة ثلاث نقاط تسجيل ، ستتحول إحدى الدوائر إلى اللون الأحمر ، مما يشير إلى أنها الموضع الأكثر انبعادا من التسجيل. احذف نقطة التسجيل باستخدام Control + انقر بزر الماوس الأيمن وحاول مرة أخرى. ضمن ملف، انتقل إلى حفظ ثم التسجيل لحفظ ملف التسجيل. مع ظهور الكائنات الثنائية كبيرة الحجم على الشريحة، انتقل إلى ملف وحفظ ثم مواضع الأداة لحفظ ملف موضع الأداة، ثم باستخدام برنامج سطح المكتب البعيد، انقل هذا الملف إلى كمبيوتر الأجهزة. افتح ملف XEO المخصص وانسخ محتوياته إلى محول شرائح MTP II . XEO على كمبيوتر الجهاز. احفظ الملف لتحديث هذا الملف الهندسي بمواقع الخلايا. انقر فوق علامة التبويب التنفيذ التلقائي وحدد جديد لإنشاء تشغيل تلقائي جديد. اسحب عبر منطقة العينة المعروضة لتحديد الخلايا وانقر بزر الماوس الأيمن لإضافتها إلى قائمة التحليل. احفظ التشغيل التلقائي وانقر فوق بدء التشغيل التلقائي لبدء الاستحواذ. يوضح هذا الشكل كيف يكشف توصيف قياس الطيف الكتلي MALDI-2 أحادي الخلية عن عدم التجانس الخلوي القائم على الدهون عبر وداخل مناطق الدماغ المتميزة. تقريب وإسقاط متشعب موحد ، أو تحليل UMAP ، يفصل الخلايا حسب منطقة الدماغ ، ويشكل مجموعات مميزة للمخطط والحصين والقشرة. كشفت تجميع لايدن عن أربع مجموعات سكانية فرعية للخلايا القائمة على الدهون. بالإضافة إلى ذلك ، لوحظت توقيعات دهنية خاصة بالكتلة ، مع ملامح كثافة مميزة عبر الدهون المشروحة. أظهرت الأطياف الكتلية من ست خلايا قشرية أيضا اكتشافا ثابتا للدهون عبر الشرائح. علاوة على ذلك ، أظهرت الخلايا القشرية من شرائح مختلفة توزيعات UMAP متداخلة ، مما يشير إلى الحد الأدنى من تأثيرات الدفعات.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

هذا الشهر في JoVE العدد 219

Related Videos

MALDI الطيف الكتلي التصوير من نيوروببتيد في مرض باركنسون

16:57

MALDI الطيف الكتلي التصوير من نيوروببتيد في مرض باركنسون

Related Videos

26.9K Views

تسليخ مجهري ليزر لقطة من السكان المخصب من الخلايا العصبية أو الخلايا العصبية واحدة لتحليل التعبير الجيني بعد إصابات في الدماغ

13:32

تسليخ مجهري ليزر لقطة من السكان المخصب من الخلايا العصبية أو الخلايا العصبية واحدة لتحليل التعبير الجيني بعد إصابات في الدماغ

Related Videos

21.6K Views

رصد Juxtacellular وتوطين واحدة الخلايا العصبية داخل الدماغ الهياكل الفرعية القشرية للتنبيه، الجرذان-ضبط النفس رئيس

08:41

رصد Juxtacellular وتوطين واحدة الخلايا العصبية داخل الدماغ الهياكل الفرعية القشرية للتنبيه، الجرذان-ضبط النفس رئيس

Related Videos

11.9K Views

رابيد التنميط الجيني للحيوانات تلاه إنشاء الثقافات الأولية من الخلايا العصبية في الدماغ

09:51

رابيد التنميط الجيني للحيوانات تلاه إنشاء الثقافات الأولية من الخلايا العصبية في الدماغ

Related Videos

16.7K Views

الليزر التقاط تسليخ مجهري - تظاهرة لعزل الخلايا العصبية الدوبامين الفردية ومنطقة بطني السقيفية بكل

08:29

الليزر التقاط تسليخ مجهري - تظاهرة لعزل الخلايا العصبية الدوبامين الفردية ومنطقة بطني السقيفية بكل

Related Videos

24.5K Views

عزل الحمض النووي الريبي من خلية مجموعات سكانية فرعية محددة عن طريق الليزر والتقاط تسليخ مجهري جنبا إلى جنب مع رابيد Immunolabeling

07:01

عزل الحمض النووي الريبي من خلية مجموعات سكانية فرعية محددة عن طريق الليزر والتقاط تسليخ مجهري جنبا إلى جنب مع رابيد Immunolabeling

Related Videos

12.9K Views

باستخدام الإسفار خلية المنشط الفرز لفحص الخلية من نوع محدد التعبير الجيني في الأنسجة دماغ الفئران

08:37

باستخدام الإسفار خلية المنشط الفرز لفحص الخلية من نوع محدد التعبير الجيني في الأنسجة دماغ الفئران

Related Videos

17.4K Views

موجهة بالليزر العصبية للبحث عن المفقودين في إإكسبلنتس الدماغ

06:40

موجهة بالليزر العصبية للبحث عن المفقودين في إإكسبلنتس الدماغ

Related Videos

9.3K Views

التسامي DAN مصفوفة للكشف والتخيل من Gangliosides في الجرذ أنسجة المخ لMALDI التصوير قياس الطيف الكتلي

08:36

التسامي DAN مصفوفة للكشف والتخيل من Gangliosides في الجرذ أنسجة المخ لMALDI التصوير قياس الطيف الكتلي

Related Videos

11.4K Views

جهاز لاسلكي، واجهة ثنائية الاتجاه للتسجيل في فيفو وحفز النشاط العصبي في التصرف بحرية الفئران

10:41

جهاز لاسلكي، واجهة ثنائية الاتجاه للتسجيل في فيفو وحفز النشاط العصبي في التصرف بحرية الفئران

Related Videos

14K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code