2010年8月11日
基因的功能,可以掩盖损失功能的实验中,如果有另一种基因的赔偿。斑马鱼模型提供了一个相对高通量的手段来揭示生活胚胎这样的功能冗余。
本实验的总体目标是确定两个基因在特定细胞谱系特化过程中是否具有功能冗余性。首先,通过将基因特异性的吗啉代寡核苷酸注入发育中的斑马鱼胚胎,分别明确每个基因的缺失功能表型,以此实现上述目标。实验的第二步是建立一种定量分析细胞谱系特化或分化的检测方法。
例如,使用报告基因鱼品系,正如我们在此展示的。该实验步骤的第三步是联合使用两种形态的 FENO,以同时靶向两个基因的功能缺失。实验步骤的最后一步是评估双基因敲低所引起的表型变化。
最终,通过检测谱系报告基因或分析谱系特异性标记物的表达,可以获得特定谱系细胞功能丧失或获得的结果。该技术相较于现有方法(如小鼠模型中的基因敲除组合)的主要优势在于,仅需在一个实验中联合使用经过验证的吗啉代寡核苷酸,即可在斑马鱼模型中同时靶向两个甚至三个基因。可在数天内完成对100多个胚胎的显微注射并评估其表型。
该方法有助于回答发育生物学中的关键问题,例如定义控制细胞命运的转录通路。关键调控通路通常由功能冗余的相关基因小家族代表,因此在小鼠基因敲除研究中,由于旁系同源基因的补偿作用,其功能并不明显。
尽管该模型可为斑马鱼胚胎发育提供研究线索,但由于相同的遗传程序在进化过程中通常高度保守,其结果也可应用于小鼠等其他系统。在注射胚胎前,需准备显微注射用培养皿。将约12毫升的2%琼脂糖溶于系统水中(即直接取自养鱼系统的洁净水),倒入直径100毫米培养皿的倒置皿盖中。
将两张显微镜载玻片以大约45度角插入盖子的两侧。当琼脂凝固后,轻轻将载玻片从盖子上取下,形成用于放置胚胎进行显微注射的凹槽。注射前,将吗啉代寡核苷酸(morpholino)储存液以1毫摩尔浓度溶于无菌蒸馏去离子水中,并在室温下保存。在使用前,将吗啉代寡核苷酸储存液于65摄氏度孵育5分钟,以确保其完全溶解。
让储备液冷却至室温。每种新设计的吗啉寡核苷酸均需通过实验验证其活性及对胚胎的耐受性。在微量离心管中,用去离子蒸馏水对储备液进行一倍至两倍的系列稀释,得到的工作浓度分别为1 mmol/L、0.5 mmol/L、0.25 mmol/L和0.125 mmol/L。
在解剖显微镜下,使用吸力将已连接至显微操作仪并准确定位的校准注射针前端装填。用大约一微升最低浓度的吗啡溶液装填注射针。使用移液器将受精的单细胞胚胎转移至显微注射板的槽中。
使用移液器吸除培养皿中多余的水分,使胚胎沉降至凹槽底部。将注射用培养皿置于显微镜下,将注射针穿过卵膜进入卵黄。在拔出针头并重新定位注射用培养皿以接触下一个胚胎之前,完成对每个胚胎的注射。
在学习注射技术时,使用活性染料有助于观察染料注入细胞的过程(如图所示),然后将胚胎转移回含有系统培养水的100毫米培养皿中,在28.5°C条件下进行培养。将针头中残留的吗啉代溶液排出,并用下一个较高浓度的吗啉代溶液填充针头,用于在适当发育阶段对下一批胚胎进行注射。在每个注射浓度下观察胚胎的表型变化。
每种形态型的阈值剂量是指能够产生明确且可靠表型的最低剂量。可能需要进行多轮滴定实验以确定准确的阈值。用于检测两个不同基因之间的遗传相互作用。
制备两种目标形态吗啉寡核苷酸(morpholino)的混合物,每种均处于其相应的阈值浓度。需要注意的是,胚胎可能无法耐受每次注射超过20纳克的总形态吗啉量。以与之前相同的方式注射胚胎。
实验组与对照组的注射体积应保持一致,对照组需包括在解剖显微镜下单独注射每种吗啉寡核苷酸(morpholino)的样本。注射后应立即观察注射胚胎,并在当天内多次监测;使用移液管及时移除死亡或濒死的胚胎。因为这些死亡胚胎可能影响其余胚胎的存活率,故可在任何时间使用移液管移走已麻醉或已处死的胚胎。
指向凹面载玻片以进行观察。如需拍照,请使用尖头镊子在必要时去除卵壳。
将胚胎稳定在含有3%甲基纤维素的液滴中,筛选胚胎以观察特定表型,该表型特异于多种吗啉寡聚物(morpholino)组合,而非单一吗啉寡聚物表型的更高外显率。以下是使用阈值剂量的吗啉寡聚物注射后的若干野生型胚胎。对于gata5,典型表型为心脏分裂(cardia bifida),即出现两个心脏,原因是心脏前体细胞未能在中线处融合。
注意箭头所示的GFP阳性心肌细胞。六种吗啉表型表现为心脏形态异常,且无法正常环化。这些胚胎也会发育出GFP阳性心肌细胞。
然而,此处显示的胚胎在同时注射 gata five 和 gata six 形态后,表现出心肌细胞发育的完全丧失,表明心肌细胞的发育必须表达 gata five 或 gata six 中的至少一个。这两个基因在心肌细胞特化过程中具有功能上的冗余性。
在尝试此操作时,首先必须充分验证您的形态学结果,并尽可能确定其确实代表了单个基因靶点的敲低。在此操作之后,还可通过其他方法(如结合条件性小鼠无效等位基因)来证明该基因在哺乳动物中的功能同样如此。
观看视频后,您应该能够充分理解如何在胚胎发生过程中确定两个基因是否具有功能冗余性。
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本研究探讨了斑马鱼胚胎中基因的功能冗余性,这种冗余性可能在功能缺失实验中掩盖基因的真实功能。通过采用高通量模型,研究人员能够揭示基因之间的补偿机制。
基因家族中的功能冗余可能掩盖早期发现阶段的靶点验证,导致表型筛选中出现假阴性结果。这种基于斑马鱼的反向遗传学方法能够高通量地探究补偿性机制,提高靶点可信度,并降低先导化合物鉴定的风险。通过亚阈值共敲降揭示遗传相互作用,该方法可支持对脊椎动物系统中基因必需性的预测建模。
该方法适用于早期发现阶段,可在先导化合物识别之前验证靶点并降低假设风险,尤其适用于具有补偿性成员的基因家族。