通过同步光刺激和视频录制评估功能性神经肌肉接头

0 次观看6:13 分钟 • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

从生物反应器开始,该反应器有一个肌肉室,其中包含支撑在腔室柱上的胶原蛋白嵌入的肌肉组织。

神经球通道包含胶原基质中的神经球。神经球的运动神经元表达光敏通道。

添加含有神经生长因子的分化培养基,刺激神经元扩展其投射。

定期更换培养基,确保神经元持续向肌肉组织延伸,形成神经肌肉接头。

在配备相机和蓝色光源的显微镜下观察生物反应器。

应用蓝光脉冲打开神经元中的光敏通道,使介质中的离子流动并刺激神经元产生电信号。

这些信号通过神经元投射传播到神经肌肉接头,将电信号传输到肌肉组织。

同时录制视频。肌纤维的逐渐收缩证实了功能性神经肌肉接头的发展。

制备每毫升 3 毫克胶原蛋白 I 和溶解基底膜基质的 4 比 1 混合物。然后,将成肌细胞重悬于这种新鲜制备的胶原蛋白混合物中。

接下来,将 15 微升这种细胞胶原蛋白悬浮液添加到生物反应器的每个肌肉室中,确保使用移液器吸头将悬浮液分布在两个柱子上。让细胞凝胶混合物在 37 摄氏度下聚合 30 分钟。然后,用 450 微升强直生长培养基填充每个生物反应器孔。

在运动神经元分化的第 11 天,将细胞和培养基转移到 50 毫升管中,并让神经球沉降到底部 5 分钟。吸出上清液并将细胞重悬于15毫升运动神经元悬浮培养基中,该培养基补充有每毫升20纳克的脑源性神经营养因子和每毫升10纳克的神经胶质细胞源性神经营养因子。

在分化方案的第 14 天,将运动神经元接种到平台中。制备每毫升 2 毫克胶原蛋白 I 和溶解基底膜基质的 4 比 1 凝胶混合物。使用400纳米细胞过滤器选择大的神经球,并将它们重悬于制备的凝胶混合物中。

小心地,从储液器和神经球中吸出培养基。然后,将 15 微升凝胶混合物添加到神经球通道中。将 10 微升移液器装入 10 微升凝胶,然后选择一个神经球。将神经球沉积到神经球通道中,确保它在腔室中。然后,缓慢抬起移液器,同时在神经球沉积后释放剩余的凝胶。

让凝胶在 37 摄氏度下聚合 30 分钟。然后,向储液器中加入 450 微升 NbActiv4,补充有每毫升 20 纳克脑源性神经营养因子和每毫升 10 纳克神经胶质细胞源性神经营养因子。

对于成像,使用倒置荧光显微镜和科学互补金属氧化物半导体相机软件。将合并设置为 2 x 2,曝光设置为 20 毫秒,打开卷帘快门,读出速率设置为 540 兆赫兹,动态范围设置为 12 位和增益 1,传感器模式重叠。在显微镜上使用2倍物镜对微组织进行成像,并将活细胞室连接到显微镜载物台上。

选择包含受支配骨骼组织的感兴趣区域,以最大限度地减少文件大小和处理时间。然后,在样品和成像物镜之间放置一个 594 纳米长通发射滤光片,以滤除来自相机的蓝光脉冲。接下来,将包含四个生物反应器的矩形四孔板放入活细胞室中。然后,单击实时取景,居中,并以所需的 ROI 聚焦图像。

从 GitHub 文件夹下载自定义宏代码以控制舞台位置、Arduino 板和视频采集。然后,将输出电影设置为day_tissuegroup_tissuename_experiment。ND2.在舞台上设置所需的 x 和 y 坐标运行宏代码,并以每秒 50 帧的速度获得 1,700 帧的快速延时延时摄影。

成像后,更换培养基并将样品返回培养箱。在图像采集会话之间至少留出 24 小时,以避免组织疲劳。

10:40

测量神经肌肉接头功能

相关视频

0 观看次数

08:39

全细胞贴片记录用于电泳生理测定通道视紫质中的离子选择性

相关视频

0 观看次数

06:01

从人类诱导多能干细胞诱导的体外神经肌肉结点

相关视频

0 观看次数

04:07

通过联合共聚焦和超分辨率显微镜表征小鼠神经肌肉接头

相关视频

0 观看次数

12:18

神经肌肉接头处:测量突触大小,碎片和改变突触蛋白密度利用共聚焦荧光显微镜

相关视频

0 观看次数

11:31

感觉和运动脑区与运动同步和肌电图监测功能近红外光谱在运动任务

相关视频

0 观看次数

07:53

神经肌肉功能的应用经皮神经电刺激评估

相关视频

0 观看次数

10:45

伸肌压钳条件下哺乳动物神经肌肉传输的检查准备

相关视频

0 观看次数

11:03

通过联合共聚焦和超分辨率显微镜表征小鼠的神经肌肉接头

相关视频

0 观看次数

11:07

人类神经肌肉接头光遗传学模型的工程和表征

相关视频

0 观看次数

最后更新:1 八月 2026