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从对照组和恐惧条件化大鼠脑部的侧杏仁核中收集亚细胞核和突触组分开始。
每种亚细胞组分中含有不同浓度的20S蛋白酶体,即蛋白酶体复合物的催化核心,负责降解细胞内不需要的蛋白质。
向样品中加入含有ATP和荧光肽底物的检测缓冲液,并进行孵育。
在 ATP 存在的情况下,蛋白酶体切割荧光肽,释放出游离的荧光分子。
使用酶标仪,定期测量荧光强度。
通过将荧光强度与已知标准浓度的荧光生色分子进行比较,来定量荧光。
荧光强度与样品中蛋白酶体的活性成正比。
恐惧条件化大鼠核组分中蛋白酶体活性升高提示与记忆相关的基因表达发生变化,而突触组分中活性降低则表明突触蛋白表达发生改变,这种改变对于长期记忆的维持是必需的。
为建立该检测,将酶标仪预热至37摄氏度,并在运行过程中保持此温度。设置激发波长为360纳米,发射波长为460纳米。若使用的96孔板为透明板,将光学检测位置设为底部;若使用黑色96孔板,则将光学检测位置设为顶部。设定一个持续2小时的动力学检测程序,每30分钟读数一次。
用13.5毫升超纯水重悬试剂盒中提供的20秒10倍检测缓冲液。向现已成为1倍浓度的缓冲液中加入14微升100毫摩尔ATP。这将显著增强样品中的蛋白酶体活性,并提高检测的可靠性。用100微升DMSO重悬试剂盒中提供的AMC标准品。由于该标准品对光敏感,操作AMC标准品时应在避光或低光照条件下进行。
使用一系列从高到低的AMC浓度绘制AMC标准曲线。该曲线将用于酶标仪的校准以及对匀浆样品中蛋白酶体活性的分析。将试剂盒中提供的蛋白酶体底物用65微升DMSO重新溶解。此步骤也需在避光或低光照条件下进行,因为该底物对光敏感。
然后在新的 1.5 毫升微量离心管中,使用 20 S 测定缓冲液对蛋白酶体底物进行 1 比 20 的稀释。将等量的待测样品加入 96 孔板中,每个样品设置复孔。所需样品量根据组织制备方式的不同而有所变化。通常情况下,任何亚细胞组分使用 10 至 20 微克即可满足要求。
用超纯水将样品孔的体积补至 80 µL。所加水量取决于所加样品的体积。在另外两个独立的孔中,各加入 80 µL 水。这些孔将作为检测空白孔。向每个孔(包括检测空白孔)中加入 10 µL 20 S 检测缓冲液。使用多通道移液器或自动移液器,以确保各孔中检测体积的一致性。
关闭灯光或进入暗室。使用新的孔板,每种稀释后的AMC标准品各取100微升加入单独的孔中。在暗处,使用多通道移液器或自动移液器向含有样品和检测空白的孔中加入10微升稀释的蛋白酶体底物,但不要加入AMC标准品孔中。将板放入酶标仪中,并启动动力学检测程序。