Name: 一种新的显微模型异位，整块胸壁，胸腺，和心脏移植小鼠 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-01-23T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 24 s
Description: 学习小鼠异位整块胸壁、胸腺和心脏联合移植模型，用于研究血管化骨髓与胸腺对免疫耐受及移植物长期存活的影响机制。该模型为重建移植与实体器官移植领域提供新研究平台。

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本工作由American Association of Plastic Surgeons 2014年度学术学者奖资助。

所有手术操作均按照约翰斯·霍普金斯大学以及美国农业部和公共卫生服务部的要求完成。本方案遵循约翰斯·霍普金斯大学动物护理和使用委员会（机构审查委员会）批准的指南（方案编号 M013M490）。以下所述手术的最终存活数据均已记录。&#160;供体和受体动物均在手术前一小时接受剂量为0.1 mg/kg、皮下注射的布托啡诺进行预先镇痛；在受体动物中，移植术后以相同剂量再次给予布托啡诺，并在术后前48小时内根据需要重复给药。&#160;
1. 供体异体移植物的获取
注意：移植手术的供体部分应在40分钟时开始&#160;早于受体移植操作，以缩短受体的麻醉时间，并便于使供体操作结束时间与受体准备结束时间同步或略早于后者。
<ol>
	<li>使用标准的无菌显微外科器械和无菌手套进行操作。本实验室采用高压灭菌法对显微外科器械进行灭菌。</li>
	<li>使用4%异氟烷诱导蒸发器对供体小鼠（雄性）进行麻醉。使用无创机械剪毛器去除颈部、胸部和腹部区域的毛发。将动物置于仰卧位，并通过鼻罩维持1-2%异氟烷麻醉。通过定期评估脚趾夹捏回缩反射，确保整个操作过程中麻醉充分。</li>
	<li>在皮肤切口前，使用无菌棉签先涂抹聚维酮碘消毒剂，再用异丙醇广泛准备手术区域。</li>
	<li>首先，使用剪刀在颈部和腹部皮肤做横向的浅表切口。然后，沿两侧腋中线将这两个切口连接起来。</li>
	<li>使用显微外科镊子双侧解剖颈部，以6-0丝线结扎并剪断颈外静脉。随后使用电凝刀切断双侧胸锁乳突肌，暴露颈内静脉和颈总动脉。以6-0丝线分别在左侧和右侧将颈总动脉与颈内静脉一并穿过并绕线。 
	注意：稍后将在步骤 1.9 中进行结扎和分割。</li>
	<li>使用剪刀锐性分离位于气管前方的带状肌及相关的疏松蜂窝组织，以松解颈部区域的剩余附着结构。</li>
	<li>使用双极电凝和锐性分离，切开胸大肌和锁骨以暴露锁骨下血管，并近端结扎（6-0 丝线）后切断。</li>
	<li>接下来，轻柔地抓住并拉出动物的阴茎。沿阴茎背侧观察阴茎背静脉，用异丙醇对该区域进行消毒。使用30 G针头，通过阴茎背静脉注射30,000单位肝素，然后让阴茎回缩至原始位置。肝素溶液可能部分渗漏至周围组织中。&#160;</li>
	<li>使用先前放置于颈总动脉和颈内静脉周围的粗线，双侧结扎并切断这些结构。</li>
	<li>接下来使用剪刀进行横向腹腔切口。取出肠管以暴露肝下腔静脉，向肝下腔静脉注入2 ml冷Euro-Collins停跳液。通过观察肝脏变色及心跳停止，确认注射到位后，再进行下一步操作。 
	注意：Euro-Collins 溶液由本实验室配制，详见特定试剂与仪器表。</li>
	<li>使用剪刀从暴露的腹部经双侧膈肌切口进入胸腔。将切口通过肋间肌和肋骨向头侧延伸。将胸壁向外翻折，暴露心脏、胸腺和大血管，同时确保沿胸壁走行的胸廓内血管得到保护。</li>
	<li>向肝上段下腔静脉注入4 ml冷Euro-Collins心脏停搏液。</li>
	<li>识别主动脉根部，并向远端追踪至降主动脉。锐性切断降主动脉（保留最大长度）。</li>
	<li>识别肺动脉干，并在其分叉点近端切断（保留最大长度）。然后使用 2 ml 冷 Euro-Collins 心肌停搏液，将软塑料头导管插入肺动脉干管腔内，冲洗肺动脉干和心脏。</li>
	<li>使用6-0丝线结扎并切断下腔静脉、肺静脉汇合处以及双侧上腔静脉的附属分支。随后小心游离心脏，从主支气管和气管附着处向头侧抬起并解剖心脏，注意避免进入气道。使用锐性分离及双极电凝仔细分离胸壁、胸腺及心脏，完全将心脏从供体小鼠中游离出来。</li>
	<li>最后，修剪同种异体胸壁 离体 沿胸骨和肋骨侧缘小心剪开，使用剪刀将其剪至较小尺寸，注意不要损伤胸内血管（图1A为减少再血管化后的出血，应沿胸骨骨肌皮瓣边缘使用双极电凝止血。</li>
	<li>将异体移植物置于 10 ml 冷（4o 如果受体尚未准备好植入，则将同种异体移植物保存在4°C的Euro-Collins溶液中；但如果受体已准备好植入，则直接将移植物转移至受体手术区域。</li>
</ol>
2. 受体准备
注意：为尽量缩短受体麻醉时间，应在另一个手术操作台开始受体准备工作，时间约为40分钟&#160;在供体异体移植物采集完成之前。
<ol>
	<li>为该手术操作准备一套独立的无菌显微外科器械和无菌手套。</li>
	<li>使用4%异氟烷诱导麻醉器对受体小鼠（雄性或雌性）进行麻醉。使用无创机械剪毛器去除右侧颈部及胸部区域的毛发。</li>
	<li>将小鼠置于仰卧位，并将右上肢轻微向下倾斜，使头部与右上肢之间形成约110度的角度。通过鼻罩持续给予1–2%异氟烷以维持麻醉状态。</li>
	<li>使用棉签将凡士林眼膏涂抹于小鼠眼睛表面。在皮肤切口前，使用聚维酮碘消毒剂广泛消毒手术区域，随后用异丙醇脱碘。</li>
	<li>使用剪刀从正中线沿下颌右下缘做皮肤切口，并向右下外侧延伸至胸部区域。使用显微血管钳进行钝性分离，将颈外静脉从周围软组织和外膜中完整游离。使用电凝切断所有分支，并通过锐性分离结合电凝切除下颌下腺右叶，为移植组织腾出空间。</li>
	<li>确保颈外静脉有足够的长度以翻转套入套管，先用6-0丝线结扎颈外静脉。将静脉穿过预切好的聚酰亚胺套管腔，使用微型血管夹固定血管-套管复合体。然后用剪刀在近端切断颈外静脉，将其翻转套在套管上，并用10-0尼龙线固定。（图1B）</li>
	<li>使用双极电凝切断右侧胸锁乳突肌，暴露颈总动脉。向头侧游离动脉，直至达到颈部区域最远端的位置。此步骤通过使用镊子进行钝性分离，去除血管周围的软组织和外膜完成。</li>
	<li>使用6-0丝线结扎并切断颈总动脉。将动脉穿过预切好的聚酰亚胺套管腔，并尽可能靠近胸廓入口处用微型血管夹固定。远端切断血管后，使用显微外科扩张器轻柔扩张血管，将其翻转套在套管上，并用10-0尼龙线固定。（图1B） 
	注意：具体的显微外科扩张器详见特定试剂与仪器表格中的描述。</li>
</ol>
3. 异体移植物植入
<ol>
	<li>使用标准的无菌器械和无菌手套，将同种异体移植物以倒置且斜向的位置植入受体颈区。</li>
	<li>接着，将供体降主动脉管腔套入受体的动脉套环结构上，并用10-0尼龙缝线固定（图1C和1D）。</li>
	<li>在供体肺动脉与受体小鼠翻转的外颈静脉-套环结构之间，采用与步骤3.2相同的方式进行吻合（图1C和1D）。</li>
	<li>首先移除静脉微血管夹（外颈静脉夹），然后松开动脉夹（颈总动脉夹）。在动脉再灌注过程中，全面检查移植物以排除任何出血。若发现出血，应重新夹闭动脉夹以减少失血，并使用双极电凝止血处理出血部位。</li>
	<li>检查移植物并确保止血完全。松开并完全移除动脉微血管夹。观察心脏是否出现再灌注征象，表现为心腔迅速充盈扩张，且通常在0.5–1分钟内开始搏动。使用温盐水（35°C）湿润心脏。</li>
	<li>将胸壁复位至解剖位置，避免对吻合口造成扭曲或张力。使用6-0连续尼龙缝线缝合手术切口皮肤（图1E）。</li>
</ol>
4. 术后护理
<ol>
	<li>术后立即给予0.3 ml生理盐水腹腔内液体推注，以进行液体补充。</li>
	<li>随后皮下注射布托啡诺（0.1 mg/kg）和恩诺沙星（5 mg/kg），分别用于镇痛和预防感染。</li>
	<li>将动物置于加热灯下，直至从麻醉中苏醒并恢复胸卧位。在恢复期间，检查颈部以观察异体移植物的心跳颤动，确保移植物灌注充分。</li>
	<li>一旦动物清醒并处于卧位，将其放回单独的笼子（不与其他小鼠同笼），使其可自由进食和饮水。由于右前肢可能存在暂时性轻微活动受限，在笼底放置凝胶状食物来源。</li>
	<li>术后观察受体小鼠1小时，然后将其送回饲养设施，在术后最初24小时内自由进食饮水，并每日检查三次活动情况和营养摄入。监测小鼠疼痛和痛苦迹象，必要时在术后前72小时内每天两次皮下追加布托啡诺（0.1 mg/kg）。此后每日观察动物，并每周称重一次。</li>
	<li>若任何小鼠出现疼痛、痛苦或摄食减少的迹象，应咨询兽医工作人员。考虑提前实施安乐死（本方案中采用7分钟的CO2过量暴露，随后进行颈椎脱位）。</li>
	<li>异体心脏停搏被定义为特定的实验终点，提示需对小鼠实施安乐死。</li>
</ol>

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</ol>

作者无任何利益冲突或财务披露需要声明。

异体移植免疫学研究涉及多种现象，包括但不限于急性与慢性排斥反应机制、直接与间接抗原提呈、受者致敏以及混合嵌合体的诱导19。动物模型已成为移植免疫学研究的金标准，其中小鼠模型因其成本低、可获得转基因和基因敲除小鼠、商业化单克隆抗体丰富、兽医护理和饲养要求相对较低以及实验可重复性强而被广泛应用。迄今为止，已有多种心脏移植模型被设计用于实体器官移植的研究19,22-27。类似地，已有大量小鼠模型被开发用于血管化复合组织异体移植的研究28。然而，针对实体器官与血管化复合组织联合移植的研究仍十分有限，相关技术在小鼠中尚未建立。本文所介绍的整块胸壁、胸腺与心脏联合移植小鼠模型，是一种可靠且可重复的研究实体器官与血管化复合组织联合移植效应及其免疫学机制的工具。
为了进一步推动移植领域的发展，必须探索通过新型治疗手段延长同种移植物存活时间并减少免疫抑制剂使用的前景。其中一种方法是诱导混合嵌合体状态（即供体造血细胞在受体体内部分植入），这种状态可导致无需使用免疫抑制剂的供体特异性耐受，即使在某些情况下嵌合状态未能长期维持。2...

心脏移植是终末期心力衰竭的首选治疗方法。技术进步和药物创新已推动移植早期接受率超过90%12,13。尽管如此，移植心脏5年存活率仍停滞在60%至80%，慢性排斥反应（以移植性血管病变为特征）仍然不可避免14-16。此外，患者需接受多次外科手术，并终身接受免疫抑制治疗，分别可能导致胸壁畸形以及药物相关的医学后遗症和毒性反应。迫切需要创新策略来延长同种移植物存活时间，减少免疫抑制剂的使用需求，并为解剖结构畸形提供重建治疗选择。
血管化复合组织异体移植为改善心脏移植的结局提供了一种独特的策略，这种策略既具有免疫学方面的优势，也具有重建外科方面的价值。17 血管化复合移植物的独特之处在于其本身含有供体来源的造血干细胞，这些干细胞已被证明能够有效减少免疫抑制剂的使用，并诱导及维持混合嵌合状态。1-8 此外，联合移植胸腺已被证实可延长实体器官移植和血管化复合移植物的存活时间。2,9-11 将这些策略与心脏移植相结合，为应对上述心脏移植所面临的挑战提供了新的解决方案。18
由于存在大量可用的抗体以及明确定义的近交系和基因敲除小鼠品系，小鼠模型成为进行机制性体内研究的优秀平台。19-21 尽管小鼠心脏移植通常采用异位腹腔内显微外科缝合移植模型进行研究22-25，但异位颈部无缝线套管技术模型已被证明具有极高的可重复性、可靠性，并且血栓发生率更低。19,26,27 本研究的目标是建立一种小鼠异位整块骨肌皮胸壁、胸腺及心脏联合移植技术，利用颈部无缝线套管法来研究实体器官与血管化复合组织联合移植的免疫学机制。该多器官同种移植物通过供体降主动脉与受体右侧颈总动脉、供体肺动脉与受体右侧颈外静脉的吻合实现灌注。保留内乳血管及其相关的胸腺分支对于胸壁（胸骨、肋骨、肌肉和皮肤）及胸腺的灌注至关重要。

<table><tbody><tr><td>欧洲柯林斯溶液</td><td></td><td></td><td>该溶液不通过商业途径购买，而是在实验室中自行配制。配制500 ml溶液时，将下述成分加入330 ml双蒸水中，充分混匀，然后补加170 ml双蒸水至终体积为500 ml。&lt;br/&gt; 成分：1.02 g KH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;、3.66 g K&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;HPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;、0.56 g KCl、0.42 g NaHCO&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt; 和 17.52 g 葡萄糖。</td></tr><tr><td>缝合线</td><td>Ethilon</td><td>MWI 72667</td><td>6-0 Ethilon


https://www.mwivet.com (MWI - 兽用耗材)</td></tr><tr><td>聚酰亚胺套管静脉导管（21G）</td><td>Vention Medical</td><td>141-0043</td><td>http://www.ventionmedical.com/products-and-services/polyimide-tubing/</td></tr><tr><td>聚酰亚胺套管动脉导管（24G）</td><td>Vention Medical</td><td>141-0027</td><td>http://www.ventionmedical.com/products-and-services/polyimide-tubing/</td></tr><tr><td>软头塑料导管</td><td>Terumo</td><td>SR*OX2419CA</td><td>24G x 3/4&quot;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>显微外科扩张器</td><td>S&amp;amp;T</td><td>D-5a.1</td><td>扩张器，11 cm，FH，0.1 mm AT10d</td></tr></tbody></table>

一种用于小鼠异位整块胸壁、胸腺和心脏移植的新型显微外科模型

A Novel Microsurgical Model for Heterotopic, En Bloc Chest Wall, Thymus, and Heart Transplantation in Mice

必须探索器官移植领域的新策略，以延长同种移植物的存活时间，并尽量减少长期维持性免疫抑制治疗的需求。在多种动物模型中，血管化骨髓移植以及胸腺组织共移植已显示出良好的应用前景1-11。血管化骨髓移植可在保留供体微环境的前提下，实现供体骨髓细胞的持续迁移；而将胸腺组织与血管化骨髓联合移植，已被证明可提高T细胞嵌合水平，最终在诱导免疫调节过程中发挥支持作用。实体器官移植与血管化复合组织移植的结合，可将上述策略整合为一种全新的移植模型。小鼠模型是研究急性与慢性排斥反应、嵌合状态及免疫耐受诱导机制的理想范式，可为后续在大型动物模型及临床应用中推进更优的移植物存活策略奠定基础。本文中，我们建立了一种新型的小鼠异位整块胸壁、胸腺与心脏联合移植模型，采用颈部无缝合套管技术完成手术。本研究通过图文说明及视频补充材料，详细描述了该模型在同基因型和异基因型移植环境下的操作经验，以供未来开展更广泛的免疫学研究参考。

同系C57BL/6移植实现了长期存活。从动物存活率及持续评估移植物存活能力的角度来看，同种异体移植物的设计（图1）被证明是成功的。这通过覆盖皮肤保持活力、移植物持续活跃的毛发生长，以及通过肉眼观察和手指触诊可检测到的心跳得到证实。图2展示了同系移植小鼠的存活数据。平均存活时间超过109天。根据存活数据可以合理推断，该移植技术的设计能够使整个胸壁、胸腺和心脏得到充分灌注。此外，同系动物实现长期存活的能力进一步表明，该小鼠模型不仅可行，而且具有可重复性。这一概念验证性的整块胸壁、胸腺和心脏移植验证了小鼠模型可用于研究联合实体器官与血管化复合组织同种异体移植。
<img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/53442/53442fig1.jpg" /> 
图1. 术中照片。&#160;(A) 胸壁、胸腺及心脏同种异体移植物已成功获取、修整并可视化 离体 从后方进行操作，保留双侧胸廓内血管。 （B）</st...

为了研究联合实体器官与血管化复合异体移植，我们描述了一种新的小鼠异位整块胸壁、胸腺和心脏移植模型，该模型采用颈部无缝合套管技术。

探索器官移植中延长同种移植物存活并减少长期维持性免疫抑制需求的新策略

本方案的总体目标是建立一种新型的小鼠实体器官与血管化复合组织异体移植模型，以研究供体来源的血管化造血组织及初级淋巴器官对免疫耐受和移植物长期存活的影响。该方法有助于解答重建性移植领域中的一些关键问题，例如血管化骨组织与胸腺在诱导免疫耐受中的作用。该技术的主要优势在于，首次将血管化骨髓与胸腺联合移植，同时与实体器官（心脏）及免疫学上具有高度多样性的大质量移植模型系统一同进行移植。该技术的意义不仅涵盖基础免疫学研究，还可转化为临床治疗手段，用于处理复杂的组织缺损，并同时提高实体器官移植的长期存活率。本次操作将由约翰斯·霍普金斯大学整形与重建外科部门的博士后研究员Dr.BC Oh和Dr.Georg Furtmuller进行演示。首先，根据文本方案对雄性供体小鼠实施麻醉后，在佩戴无菌手套的情况下，使用机械剃毛器去除颈部、胸部和腹部区域的毛发。在无菌手术台面上，将动物置于仰卧位。连接鼻罩，以1%至2%异氟烷维持麻醉。在皮肤切口前，使用无菌棉签先涂抹聚维酮碘消毒剂，再用异丙醇进行切口区域的广泛消毒。使用剪刀，在颈部和腹部皮肤上做表浅的皮肤切口转移。沿两侧腋中线连接两个切口。使用显微镊子双侧解剖颈部区域，以识别颈外静脉。然后用6-0丝线缝合线结扎血管，再用剪刀将其切断。然后使用电凝刀切开胸锁乳突肌，双侧暴露颈内静脉和颈总动脉。分别以6-0丝线穿过左侧和右侧颈总动脉及颈内静脉，整体进行牵引。使用双极电凝和锐性分离切开胸大肌和锁骨，以暴露锁骨下血管。使用6-0丝线结扎并切断近端血管。接着，轻柔抓握并外拉动物的阴茎。沿阴茎背侧定位背静脉，并用异丙醇对该区域进行消毒。然后，使用30号针头通过背静脉静脉注射30,000单位肝素，并使阴茎回缩至其原始位置。利用先前在颈总动脉和颈内静脉周围放置的粗结扎线，双侧结扎并切断这些结构。现在使用剪刀做一横向切口以进入腹腔。清除肠管以暴露肝内下腔静脉，向肝内下腔静脉注入2 mL冷EuroCollins心脏停搏液。通过观察肝脏变色及心跳停止来确认注射到位。使用剪刀，从暴露的腹部经双侧膈肌切口进入胸腔，并向上延伸切口，穿过肋间肌和肋骨。使用EuroCollins溶液冲洗肺动脉干和心脏，对于预防冠状动脉循环内可能残留的微小血栓栓塞至关重要。根据文本方案，将冷的EuroCollins溶液注入肝上段下腔静脉后，辨认主动脉根部，并向远端追踪至降主动脉。锐性切断降主动脉，尽可能保留最大长度。现在辨认肺动脉干，并在其分叉点近端切断，以保留最大长度。然后使用2 mL冷的EuroCollins心脏停搏液，将一根软塑料导管插入肺动脉干管腔内，冲洗肺动脉干和心脏。使用6-0丝线缝合结扎并切断下腔静脉、肺静脉汇合部以及双侧上腔静脉的副支。然后小心地从主支气管和气管的附着处向头侧解剖并分离心脏，注意避免进入气道。使用锐性器械和双极电凝仔细分离胸壁、胸腺和心脏，将心脏完全从供体小鼠中游离出来。最后，使用剪刀在体外沿胸骨和侧部肋骨修剪异体移植心脏的胸壁，使其尺寸减小，注意不要损伤胸内血管。为减少再血管化后的出血，沿骨肌皮胸骨边缘使用双极电凝止血。按照文本方案准备受体小鼠后，将小鼠置于仰卧位，并将右上肢轻度向下倾斜，使头部与右上肢之间形成110度角。从正中线开始，沿下颌右下缘做切口，并向右下外侧延伸至胸部区域。使用显微血管镊进行钝性分离，将颈外静脉从周围软组织和外膜中完整游离出来。应用电凝切断所有分支，并采用锐性分离结合电凝切除下颌下腺右叶，以腾出异体移植物的植入空间。确保颈外静脉有足够的长度，使其能够翻转覆盖于套管上，并使用6-0丝线结扎颈外静脉。然后将血管插入预先切好的聚酰胺套管的管腔内，并使用微型血管夹固定血管-套管复合物。将血管外翻覆盖于套管上，并用10-0尼龙缝线固定。在进行双极电凝的同时，切开右侧胸锁乳突肌以暴露颈总动脉。用镊子和钝性分离法，通过去除软组织及周围外膜，将颈段最远端以上的动脉向头侧作环周游离。使用6-0丝线结扎并切断颈总动脉。将动脉穿过预先切好的聚酰胺套管腔内，并用微型血管夹（bull-dog夹）尽可能靠近胸廓入口处固定。然后在远端离断血管。使用显微外科扩张器轻柔地扩张血管，将其外翻覆盖在套管上，并用10-0尼龙缝线固定。在保持无菌条件的同时，将供体降主动脉腔置于受体的动脉套管装置上，并用10-0尼龙缝线固定。在供体肺动脉与受体小鼠外翻的颈外静脉套管结构之间建立类似的吻合。随后移除静脉微血管夹，接着移除动脉夹。然后检查整个异体移植物是否有出血，若存在出血，应根据文本方案进行止血处理。检查移植物，并在松开并完全移除动脉微血管夹之前确保止血。观察心脏，识别再灌注的迹象，这些迹象将立即显现为心腔迅速扩张，并等待30至60秒内开始出现渗血小滴。使用温盐水湿润心脏，然后将胸壁复位至解剖位置，避免对吻合口造成任何扭曲或张力。最后，使用6-0尼龙缝线缝合手术切口的皮肤，并根据文本方案进行术后护理。实施端对端无缝线套管吻合、在再灌注期间使用电凝严格维持止血，以及确保复合组织移植物所有组分的充分灌注，是该手术最关键的步骤。将联合的血管化复合组织异体移植物置于受体颈部预先放置的聚酰胺套管上，以展示移植物的最佳位置以及供体血管在套管结构上的精细固定。本研究所展示的异体移植物设计已证实可行，能够对胸壁进行灌注，且对受体动物的影响最小。此处提供了同基因型移植小鼠的存活数据。平均存活时间超过109天，表明该移植异体移植物在技术设计上可实现对整个胸壁、胸腺及心脏的灌注。此外，该小鼠模型不仅可行，而且可被重复构建。一旦掌握该技术，采用双团队协作方式可在90分钟内完成操作。在实施该手术过程中，必须始终牢记整个手术过程中的止血至关重要，同时在异体移植物植入过程中尽量减少扭曲也非常重要。该技术为从事重建移植和实体器官移植领域的研究人员探索血管化骨髓和胸腺在提高同种异体移植物存活率方面作为实体器官移植潜在辅助手段的作用奠定了基础。观看本视频后，您应能够充分理解如何通过异位非阻塞性胸壁、胸腺与心脏联合移植，建立小鼠实体器官与血管化复合组织联合移植模型。

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一种新的显微模型异位，整块胸壁，胸腺，和心脏移植小鼠

小鼠异位心脏移植模型已被众多研究者证实为研究排斥反应和免疫应答机制的重要方法。然而，相关技术操作仍具挑战性。通过改进标准技术，我们已成功完成超过1000例移植手术。...

小鼠异位心脏移植

小鼠颈部心脏移植模型非常适合用于免疫学以及缺血再灌注损伤的研究。我们采用了一种无缝线套管技术对该手术方法进行了改良，并利用该技术成功完成了1000多例移植手术。<br...

采用改良套管技术的小鼠颈部心脏移植模型

本文演示了一种小鼠心脏异位移植的显微外科技术，包括简化的供体心脏获取和受体血管吻合方法。...

一种改良的小鼠异位心脏移植方法

套管技术通过避免对小血管进行技术难度较高的缝合吻合，从而缩短并简化了小鼠异位颈部心脏移植模型的建立过程。本视频论文中展示的技术细节应有助于研究人员在其实验室中成功建立该模型。...

小鼠异位颈部心脏移植

本文介绍了一种已得到充分建立并用于研究新型心脏保护策略的临床前大型动物（猪）原位心脏移植模型。...

一种用于同种原位心脏移植的临床前猪模型

介绍了一种在异位腹部小鼠心脏移植模型中进行血路重建的新技术。...

腹部小鼠心脏移植模型中的血液回路重建

在本实验方案中，采用小鼠心脏移植模型来研究心脏同种异体移植物排斥反应的机制。在此异位心脏移植模型中，通过改良的套管技术进行颈部端对端吻合式心脏移植，可提高手术效率，并确保心脏移植物的存活。...

一种改良的套管法小鼠颈部异位心脏移植模型

小鼠心脏移植模型是研究移植免疫学的重要研究工具。本方案详细介绍了小鼠异位颈部心脏移植技术，该技术涉及在受体的颈总动脉和供体的肺动脉干上放置套管，以实现层流血流。...

利用血管套环的小鼠异位颈部心脏移植

本方案介绍了一种无需使用套管、基于缝合的鼠类颈部异位心脏移植技术，旨在通过生理条件下最小化异物材料干扰，可靠地植入第二个异位心脏移植物，以评估供体特异性免疫耐受。...

用于评估小鼠供体特异性免疫耐受的免套管缝合式颈部异位心脏移植模型

本方案介绍了一种简化的、端对侧缝合吻合技术，用于小鼠颈部心脏移植，为研究移植免疫学提供了一个稳定且可重复的模型。...

采用端侧吻合技术进行颈部异位小鼠心脏移植以研究移植免疫学

学习小鼠异位整块胸壁、胸腺和心脏联合移植模型，用于研究血管化骨髓与胸腺对免疫耐受及移植物长期存活的影响机制。该模型为重建移植与实体器官移植领域提供新研究平台。

一种用于小鼠异位整块胸壁、胸腺和心脏移植的新型显微外科模型

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