2019年9月19日
本文介绍了一种使用侧向液体打击装置诱导弥漫性创伤性脑损伤,并随后采集盲肠内容物进行肠道微生物组分析的实验方案。
大脑与肠道微生物群之间相互作用的同步性及其关联机制仍不明确。利用该技术,可检测小鼠在创伤性脑损伤后肠道微生物群的变化。该技术的主要优势在于其相对简单且高效。
本实验操作将由我实验室的研究生 Wendong You 演示。进行创伤性脑损伤诱导时,需确认麻醉小鼠对脚趾夹捏无反应,并在动物眼睛上涂抹眼膏。剃毛后,用70%乙醇对暴露的头皮皮肤进行消毒,然后沿矢状面切开头皮。
使用镊子向两侧牵开切口,并轻轻分离骨膜。用记号笔在颅骨右侧顶骨区域距中线两毫米处画一个直径三毫米的圆。使用电动钻小心穿透颅骨,避免损伤硬脑膜。
移除骨瓣以暴露直径为三毫米的骨窗,并将塑料损伤套管置于颅骨开孔处。使用牙科丙烯酸树脂将套管固定于颅骨后,用五毫升注射器将无菌0.9%生理盐水充满套管,注意避免产生气泡。打开示波器和放大器。
确认侧向液体脉冲损伤装置的高压管内无气泡,进行约10次测试脉冲,直至装置输出稳定的信号。调节摆锤起始位置的角度,使脉冲强度达到约两个标准大气压,然后将损伤套管连接至侧向液体脉冲损伤装置。扣动触发器释放摆锤,诱导脑损伤。
然后通过完整的封闭液体填充管路系统获取并传递脉冲至硬脑膜。脑损伤诱导后,移除套管并缝合切口。随后将小鼠置于加热垫上并进行监测,直至其恢复自主活动能力,再将其放回饲养笼,自由摄取食物和饮水。
在指定的实验时间点,按照标准操作流程暴露肠道,并使用无创镊子轻轻将盲肠与其他肠段分离。定位组织后,用锋利的剪刀剪开盲肠,并手动将盲肠内容物取出至无菌敷料上。随后将内容物转移至1.5毫升微量离心管中,于-80°C保存,直至进行微生物组分析。
创伤性脑损伤后三天,小鼠盲肠微生物群的16S重组DNA测序显示其多样性降低,假手术组与创伤性脑损伤组盲肠内容物中最丰富的分类群如图所示。此外,非度量多维尺度分析揭示了创伤性脑损伤后盲肠微生物群组成的改变。钻颅时需注意保持硬脑膜完整,在定位并分离盲肠与其他肠段时操作应轻柔。
按照此操作步骤,可进行苏木精-伊红染色及分析,以检测创伤性脑损伤后肠道组织的组织学改变及炎症反应。
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本研究介绍了一种在小鼠中使用侧向液体打击装置诱导弥漫性创伤性脑损伤(TBI)的实验方案。损伤后,通过采集盲肠内容物分析肠道微生物群的变化。该方法旨在阐明脑损伤与肠道微生物群组成之间的相互作用。
本方案通过提供一种可重复的模型来评估创伤性脑损伤后的微生物组变化,从而在创伤性脑损伤研究中实现对微生物-肠-脑轴的机制性风险排除。该方法通过将神经创伤与盲肠微生物群组成中可量化的改变相关联,支持靶点验证和生物标志物的发现。通过标准化创伤性脑损伤(TBI)诱导和微生物组采样流程,该策略增强了临床前研究中的预测可信度。
该方法通过标准化创伤性脑损伤(TBI)诱导和肠道微生物组分析,连接发现生物学与临床前验证,以实现靶点去风险化。