2025年6月13日
我们开发了一种改进的QuEChERS-HPLC方法,用于检测斑马鱼胚胎内16种多环芳烃的含量水平。
本研究旨在开发一种改进的QuEChERS-HPLC方法,用于定量分析暴露于EOM的斑马鱼胚胎中的多环芳烃(PAHs),以解决当前因胚胎质量微小及其生物基质复杂所导致的内源性PAHs水平检测技术难题。获得可靠结果需要每组200枚胚胎,这在实际操作中构成一定挑战。将HPLC与荧光检测器联用可进一步提高该方法的灵敏度。与其他技术相比,这种改进的QuEChERS-HPLC方法显著缩短了样品处理时间,为分析暴露于EOM的斑马鱼胚胎中16种PAHs的含量提供了一种快速高效的解决方案。
[旁白] 首先,准备QuEChERS样品:在受精后72小时,从培养箱中取出含有胚胎的培养皿。用纯水清洗胚胎三次。将胚胎转移至1.5毫升离心管中,并去除多余水分。将离心管置于–80°C冰箱中冷冻30分钟,以冻干胚胎。冻干后,使用玻璃棒研磨胚胎。向DMSO对照组中加入25微升16种多环芳烃(PAH)混合标准溶液,用于测试加标回收率。然后加入1毫升正己烷,涡旋振荡30秒。在35°C条件下超声萃取30分钟。随后,以7,000×g离心5分钟。将上清液转移至新的离心管中。在35°C水浴中,用氮气流将收集的上清液吹干。加入1毫升乙腈,涡旋振荡30秒。向样品中加入10毫克伯仲胺(PSA)、45毫克硫酸镁和15毫克C18填料,再涡旋振荡30秒。以7,000×g离心5分钟,将上清液转移至新的离心管中。用氮气将上清液浓缩至0.5毫升,并通过0.22微米微孔滤膜过滤样品。使用乙腈配制一系列浓度范围为1至500纳克/毫升的16种PAH混合标准工作溶液。取20微升样品溶液注入液相色谱仪,采用乙腈或水作为流动相,按照屏幕上显示的洗脱程序进行分析。以标准工作溶液的质量浓度为横坐标(x轴),相应峰面积为纵坐标(y轴),绘制标准曲线,浓度范围覆盖5至500纳克/毫升。将纯化后的样品注入配备荧光检测器(FLD)和二极管阵列检测器(DAD)的液相色谱仪中。通过比较保留时间鉴定PAH的存在,并测量峰面积以确定其浓度。最后,根据测得的质量浓度计算16种PAH在胚胎内的含量。该表格列出了受精后72小时斑马鱼胚胎中多环芳烃(PAH)的浓度。在暴露于可提取有机质(EOM)的斑马鱼胚胎中,成功检出6种PAH。相比之下,在DMSO对照样品中仅检出2种PAH,且其含量显著低于EOM样品中的水平。
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本研究提出了一种改进的QuEChERS-HPLC方法,用于定量斑马鱼胚胎中的多环芳烃(PAHs)。该方法解决了由于胚胎体积微小且生物基质复杂,导致内部PAH含量难以测定的技术难题。
在小型且复杂的生物基质中对多环芳烃(PAHs)进行定量检测,是早期毒理学和环境风险评估工作流程中的关键挑战。改进的QuEChERS-HPLC方法可实现对斑马鱼胚胎内源性PAH水平的高灵敏度、可重复测量,有助于阐明发育毒性研究中的作用机制并提高预测可信度。该技术能力加强了从环境暴露模型到生物制药管线中临床前安全性评价的转化连续性。
该方法通过实现对斑马鱼胚胎中多环芳烃(PAHs)的可靠定量,将其整合到从发现到临床前研究的连续流程中,为机制研究和转化毒理学工作流程提供支持。