25. Mai 2017
Dieses Protokoll zeigt eine fluoreszenzbasierte Methode zur Visualisierung der Vaskulatur und zur Quantifizierung ihrer Komplexität in Xenopus tropicalis . Blutgefäße können nach der Injektion eines fluoreszierenden Farbstoffs in das schlagende Herz eines Embryos nach genetischen und / oder pharmakologischen Manipulationen abgebildet werden, um die kardiovaskuläre Entwicklung in vivo zu untersuchen.
Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die Gefäße von Xenopus tropicalis-Kaulquappen sichtbar zu machen. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen im Bereich der kardiovaskulären Biologie zu beantworten, beispielsweise wie die Angiogenese reguliert wird. Der Hauptvorteil dieser Technik liegt darin, dass Blutgefäße in einem intakten, wildtypischen Embryo durch eine einfache Injektion eines fluoreszierenden Farbstoffs sichtbar gemacht werden können.
Beginnen Sie damit, mit einem Mikrolader etwa fünf Mikroliter einer klaren diI-azetylierten LDL-Lösung in eine konisch zulaufende Glas-Mikropipette zu füllen, wobei darauf geachtet werden sollte, dass keine präzipitierten Partikel aufgenommen werden. Benutzen Sie unter einem Stereomikroskop ein feines Paar Nr. 55 Pinzette, um die Spitze der Pipette abzuschneiden, um das Volumen des aufgenommenen Komplexes anzupassen, und stellen Sie das druckgesteuerte Injektionssystem so ein, dass etwa fünf Nanoliter Lösung pro Injektion ausgestoßen werden. Tauchen Sie anschließend die Pipettenspitze in 0,04 % MS-222 in 0,1X modifizierter Barth-Lösung (MBS) in einer speziell angefertigten Sylgard-Form ein.
Überführen Sie danach den Xenopus tropicalis-Embryo in die Sylgard-Form und überprüfen Sie die vollständige Sedierung durch das Fehlen einer Reaktion auf eine Stimulation der Rückenflosse. Laden Sie unter dem Stereomikroskop den Embryo mit der Bauchseite nach oben in die V-förmige Aussparung der Form in leicht schräger Position. Passen Sie zwei 0,1 Millimeter große Minutiennadeln fest in einen Nadelhalter ein und verwenden Sie eine Nadel, um die Haut über dem Herzen zu durchstechen, das sichtbar pulsieren sollte.
Führen Sie den Stift durch das Loch im Zwischenraum zwischen Herz und Haut ein, ohne das Herz zu verletzen, und positionieren Sie die eingeführte Spitze im Bereich, in dem der Einschnitt vorgenommen wird. Reiben Sie anschließend den zweiten Stift gegen den eingeführten Stift, um einen linearen Einschnitt zu erzeugen, und verwenden Sie beide Stifte gemeinsam, um den Einschnitt vorsichtig zu erweitern, wodurch das Herz freigelegt wird. Um die DiI-azetylierte LDL-Lösung zu injizieren, führen Sie die Glaspipettenspitze in das Herz ein und injizieren 50 bis 60 Nanoliter der DiI-azetylierten LDL-Lösung in etwa 10 Ausstoßimpulsen.
Wenn die gesamte Farbstofflösung verabreicht wurde, überprüfen Sie, ob das Herz noch schlägt, und überführen Sie das Embryo in eine neue Petrischale, die 0,1X MBS enthält. Nach fünf bis zehn Minuten sollte sich der Froschlaich von der Anästhesie erholen und sich zu bewegen beginnen. Nachdem eine geeignete Anzahl von Embryonen injiziert wurde, untersuchen Sie die korrekt markierten, anesthetisierten Embryonen unter einem Fluoreszenzmikroskop und entsorgen Sie Tiere, bei denen andere Organe markiert sind.
Embryonen, die unzureichend markiert wurden, können erneut injiziert werden. Danach Bilder der korrekt markierten Embryonen aufnehmen. Für eine gründlichere Abbildung der Blutgefäße fixieren Sie reanesthetisierte Embryonen zur Visualisierung mittels konfokaler Mikroskopie eine Stunde lang bei Raumtemperatur, lichtgeschützt, in 4 % Paraformaldehyd.
Wenn eine ausreichende Menge an diI-azetyliertem LDL in das Herz, die hintere Kardinalvene oder PCV injiziert wird, sollte diese unter dem Fluoreszenzmikroskop sofort sichtbar sein. Die intersomitischen Venen, oder ISV, treten dorsal aus der PCV in einer von anterior nach posterior verlaufenden Welle hervor, die ab Stadium 36 beginnt und um die Stadien 40 bis 41 endet, wobei sie um Stadium 43 leicht verzweigt werden. Die PCV und die ISV wachsen in einem stereotypen angiogenen Muster, das einer strengen entwicklungsbedingten Kontrolle unterliegt.
Interessanterweise verringert die Herunterregulation der TIE-2-Signalübertragung durch Antisense-Morpholinos die Länge und Komplexität der ISVs, während die Expression der konstitutiv aktiven Form von TIE-2 eine übermäßige Verzweigung der ISVs induziert. Ein Index zur Beurteilung der Venenkomplexität kann berechnet werden, um die Komplexität der ISVs zu quantifizieren, und gerenderte Pfade können erzeugt werden, um die Gesamtarchitektur des embryonalen vaskulären Systems von Xenopus tropicalis zu visualisieren. Die ursprüngliche Protokollbeschreibung wurde von Levin und Colics für Xenopus laevis veröffentlicht, und wir haben es für Xenopus tropicalis angepasst.
Wenn die Technik einmal beherrscht ist, kann sie bei korrekter Durchführung innerhalb einer Stunde abgeschlossen werden. Vor diesem Verfahren können genetische und pharmakologische Eingriffe vorgenommen werden, um zusätzliche Fragen zu beantworten, beispielsweise, welche Gene und Signalwege die Gefäßentwicklung regulieren. Mithilfe dieses Verfahrens kann die markierte Gefäßstruktur in einem intakten Tier in Echtzeit abgebildet werden, was ein leistungsfähiges Werkzeug zur Untersuchung der Dynamik der Gefäßentwicklung darstellt.
Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man diI-azetyliertes LDL in das Herz eines Xenopus tropicalis-Kaulquappen injiziert, um dessen Gefäßsystem sichtbar zu machen.
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Dieses Protokoll demonstriert eine fluoreszenzbasierte Methode, um die Gefäßversorgung in Xenopus tropicalis sichtbar zu machen und ihre Komplexität zu quantifizieren. Die Technik ermöglicht die Abbildung von Blutgefäßen kurz nach der Injektion eines fluoreszierenden Farbstoffs in das Herz des Embryos und erleichtert damit in-vivo-Untersuchungen zur kardiovaskulären Entwicklung.
Diese Methode ermöglicht die direkte Visualisierung und Quantifizierung der vaskulären Komplexität in einem Wirbeltiermodell und unterstützt so die Validierung von Zielstrukturen in frühen Stadien der Angiogenesewege. Durch die Bereitstellung quantitativer Messgrößen für die Aussprossung und Verzweigung von Gefäßen erleichtert sie die mechanistische Absicherung vaskulärer Zielstrukturen, bevor man sich auf Lead-Identifizierungskampagnen festlegt. Das Xenopus tropicalis-System bietet eine krankheitsrelevante Plattform zur Beurteilung angiogener Phänotypen mit vorhersagender Zuverlässigkeit in der präklinischen kardiovaskulären Forschung.
Die Methode fügt sich in den Entdeckungsprozess von der Testung von Zielhypothesen bis hin zur Identifizierung von Leitstrukturen ein und liefert Daten zu vaskulären Phänotypen, die Entscheidungen über Fortführung oder Abbruch in auf Angiogenese ausgerichteten Programmen unterstützen.