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Stabilisierte longitudinale In Vivo Visualisierung der Bauchspeicheldrüse auf zellulärer...
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JoVE Journal Medicine
Stabilized Longitudinal In Vivo Cellular-Level Visualization of the Pancreas in a Murine Model with a Pancreatic Intravital Imaging Window

Stabilisierte longitudinale In Vivo Visualisierung der Bauchspeicheldrüse auf zellulärer Ebene in einem Murinenmodell mit einem Pankreas-Intravital-Bildgebungsfenster

Full Text
4,864 Views
06:52 min
May 6, 2021

DOI: 10.3791/62538-v

Inwon Park1, Pilhan Kim2,3

1Department of Emergency Medicine,Seoul National University Bundang Hospital, 2Graduate School of Medical Science and Engineering,Korea Advanced Institute of Science and Technology, 3KI for Health Science and Technology,Korea Advanced Institute of Science and Technology

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a protocol for stabilized and repetitive cellular-level in vivo imaging of the pancreas using a novel pancreatic intravital imaging window. This technique allows for motionless, three-dimensional imaging at cellular resolution over three weeks in live mice.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Biology
  • In vivo imaging

Background

  • In vivo imaging techniques are crucial for studying organ function.
  • The pancreas plays a vital role in metabolic processes.
  • Traditional imaging methods may not provide sufficient resolution.
  • The pancreatic intravital imaging window offers a novel approach.

Purpose of Study

  • To develop a method for high-resolution imaging of the pancreas.
  • To enable long-term observation of pancreatic cellular dynamics.
  • To improve understanding of pancreatic functions in live models.

Methods Used

  • Preparation of surgical platform and disinfection.
  • Anesthetization of the mouse and temperature monitoring.
  • Hair removal and skin incision on the left flank.
  • Application of imaging techniques through the intravital window.

Main Results

  • Successful imaging of pancreatic cells over three weeks.
  • High-resolution, motionless three-dimensional images obtained.
  • Demonstrated feasibility of the pancreatic intravital imaging window.
  • Potential applications in studying pancreatic diseases.

Conclusions

  • The pancreatic intravital imaging window is a valuable tool for researchers.
  • This method enhances the understanding of pancreatic biology.
  • Future studies can leverage this technique for various applications.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of the pancreatic intravital imaging window?
It allows for motionless, high-resolution imaging of the pancreas over extended periods.
How long can imaging be performed using this technique?
Imaging can be performed for up to three weeks in live mice.
What are the key steps in preparing for the imaging procedure?
Key steps include disinfecting the surgical area, anesthetizing the mouse, and making a surgical incision.
What type of imaging resolution can be achieved?
The technique allows for imaging at the cellular level.
What implications does this study have for pancreatic research?
It provides a new method for studying pancreatic functions and diseases in vivo.

In vivo wurde die hochauflösende Bildgebung der Bauchspeicheldrüse mit dem pankreasinen intravitalen Bildgebungsfenster erleichtert.

Dieses Protokoll beschreibt eine stabilisierte und sich wiederholende zelluläre In-vivo-Bildgebung der Bauchspeicheldrüse mit einem neuartigen intravitalen Bildgebungsfenster der Bauchspeicheldrüse. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass es möglich ist, bewegungslose, dreidimensionale Bildgebung mit Auflösung bis zur zellulären Ebene über drei Wochen in der Bauchspeicheldrüse einer lebenden Maus durchzuführen. Beginnen Sie mit der Vorbereitung der chirurgischen Plattform und desinfizieren Sie die Oberflächen mit 70% Ethanol.

Verwenden Sie nach der Betäubung eine rektale Sonde mit einem homöothermisch gesteuerten Heizkissen, um die Körpertemperatur zu überwachen. Entfernen Sie haare von der linken Flanke der Maus und tragen Sie alternativ Alkohol und Jod auf, rotieren Sie von der Inzisionsstelle zur äußeren Oberfläche, gehen Sie nie zurück zur Inzisionsstelle und enden Sie mit Jod. Machen Sie dann einen 1,5 Zentimeter genauen Schnitt an der linken Flanke der Maus und sezieren Sie die Haut und den Muskel.

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Medizin Heft 171

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