$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Tome neuronas fijas y permeabilizadas en un tubo.
Agregue un tampón de bloqueo para evitar la unión de anticuerpos no específicos.
Centrifugar la suspensión y eliminar el sobrenadante. Luego, vuelva a suspender las neuronas en el amortiguador.
Transfiera la suspensión por igual a tubos que contengan anticuerpos primarios sin etiquetar y marcados con fluoróforos.
Incubar, permitiendo que los anticuerpos se unan específicamente a la cadena respiratoria mitocondrial o subunidades del complejo MRC, una proteína asociada al ADN mitocondrial y una proteína de la membrana externa mitocondrial dentro de las neuronas.
Elimine cualquier anticuerpo no unido.
Incubar con anticuerpos secundarios marcados con fluoróforo que se unen a los anticuerpos primarios no marcados.
Centrifugar la mezcla y desechar el sobrenadante.
Vuelva a suspender las neuronas en tampón y transfiéralas a tubos de microcentrífuga.
Realizar citometría de flujo para detectar las señales fluorescentes en las neuronas marcadas, correspondientes a los niveles de expresión de las subunidades del complejo MRC y la medición de los niveles relativos de ADN mitocondrial.
Bloquee las muestras en 1 mililitro de tampón de bloqueo y lave las células por centrifugación con PBS como se demuestra. Para detectar diferentes complejos y subunidades mitocondriales, incube las células durante 30 minutos con los respectivos anticuerpos primarios descritos en el manuscrito del texto. Después de lavar las células una vez con PBS, incube las células con anticuerpos secundarios durante 30 minutos.
Al final de la incubación, lavar y volver a suspender las células en PBS como se ha demostrado. Transfiera la suspensión celular a un tubo de microcentrífuga de 1,5 mililitros, mantenido en la oscuridad, sobre hielo. A continuación, analice las células en el citómetro de flujo y detecte señales y filtre una usando un filtro de paso de banda 530/30.