Name: Les changements déquilibre dans la structure de lARN de surveillance par peroxydation et oxydatif Hydroxyl Footprinting Radical (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-10-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 41 s
Description: Découvrez le footprinting radical hydroxyle pour quantifier la formation de la structure tertiaire de l'ARN dépendante du Mg(II). Cette méthode utilise le marquage d'extrémité et l'électrophorèse pour analyser l'accessibilité au solvant.

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Ce travail a été soutenu par des subventions du National Institute of Health RO1-GM085130 et la National Science Foundation MCB0929394. Nous remercions le Dr Marion Schmidt pour son hospitalité et pour nous permettre de filmer dans son laboratoire.

1. Préparation des réactifs Footprinting <ol><li> Préparer un tampon de réaction 10x contenant 100 mM cacodylate de sodium, EDTA 1 mM, et 1 M KCl. Ajuster le pH à 7,4. Filtrer le tampon en utilisant un dispositif de filtre acétate de 0,2 pM (Nalgene). Remarque: ne pas ARN pipette directement dans la mémoire tampon 10x. </li><li> Préparer le mélange réactif de titrage pour chaque réaction, comme indiqué dans le tableau 1. Le volume du mélange de titration (1x tampon et Mg (II) à la concentration souhaitée) doit être de 90 ul, avant d'ajouter 10 ul d'ARN dans un tampon de 1x. </li><li> Préparer un tampon de digestion RNAse T1 contenant de l'urée 6.63M, citrate de sodium 20 mM, 1 mM EDTA, 0,25 pg / ul ARNt, cyanol xylène 0,025%, et le bleu de bromophénol 0,025%. Ce tampon peut être conservé à 4 ° C pendant jusqu'à 6 mois. </li><li> La réaction de Fenton nécessite fraîchement préparés solutions aqueuses de 250 mM de Fe (NH 4) 2 (SO 4) 2, 250 mM EDTA et 500 mM de sodium L-ascorbate. Les concentrations indiquées dans le chapitre 10.5 sont optimales pour des expériences de l'équilibre dans un tampon de cacodylate de sodium, comme cela ne veut pas piéger les radicaux et divers concentrations en ions divalents. </li><li> Réactifs pour la réaction empreinte (1.5.2) peroxydante (1.5.1) et oxydante. <ol><li> La réaction de Fenton peroxydante nécessite fraîchement préparés solutions aqueuses de 100 mM de Fe-EDTA et 50 mM de sodium L-ascorbate et de 1,5% H 2 O 2. La solution Fe-EDTA est préparée en mélangeant Fe (NH 4) 2 (SO 4) 2 avec de l'EDTA à avoir 1,1 fois plus de l'EDTA sur le fer. </li><li> Juste avant d'initier la réaction de clivage oxydatif (3.4.2), de créer le mélange réaction de Fenton en combinant 2 pi de Fe (NH 4) 2 (SO 4) 2 (250 mm), 2,2 l de EDTA (250 mM), 62,5 ul L-ascorbate de sodium (500 mM), 22,5 pi de tampon de réaction 10x et 135,5 ul de H 2 O pour atteindre les concentrations finales dans le mélange réactionnel empreinte (3.4.2) de 0.10 mM, 0,11 mM et 6,61 mM, respectivement. </li></ol></li></ol> 2. Préparation de l'ARN pour l'expérience d'empreintes <ol><li> L'ARN peut être produite par la norme de transcription in vitro de 6 modèles de l'ADN ou, si courte que 50 nucléotides, être achetés (par exemple chez Integrated DNA Technologies, www.idtdna.com). Suivez les procédures recommandées pour la propreté de laboratoire afin de maintenir l'intégrité des échantillons d'ARN au cours des expériences empreintes 7. </li><li> La déphosphorylation 8 du transcrit in vitro d'ARN est nécessaire avant d'étiquetage P 32 de l'extrémité 5 'de l'ARN. 10 pmol d'ARN sont marqués aux extrémités par des kinasing 9. La solution devrait être nuageux après inactivation de la phosphatase succès. </li><li> Purifier l'ARN radiomarqué en utilisant l'électrophorèse sur gel dénaturant. L'ARN est récupéré par deux extractions ultérieures gel en utilisant l'acétate de sodium 0,3 M (pH 5,5). L'ARN est précipité en mélangeant 0,5 ml de solution aqueuse à 1 ml d'éthanol et ultérieuresd'incubation de 1 minute sur la glace sèche. Spin échantillon à 4 ° C, 12 500 rpm pendant 0,5 heure. Jeter le surnageant et laver avec de l'éthanol culot d'ARN de 70%. Retirer le surnageant après centrifugation supplémentaire et culot sec dans le vide. </li><li> Dissoudre le 32 P-étiqueté les échantillons d'ARN dans 330 ul de 1x Buffer.Pipet 30 pl de la solution de l'ARN dans un tube de réaction, un précipité avec l'éthanol et de l'ARN à sec dans le vide; garder ce tube pour générer l'échelle de référence (étape 3.5). Dénaturer la solution tamponnée ARN par chauffage à 95 ° C pendant 2 min. Refroidir les échantillons à température ambiante pendant 15 minutes et donner un tour rapide pour faire baisser les condensats sur les couvercles des tubes dans la solution. </li></ol> 3. L'expérience d'empreintes <ol><li> Le peigne électrophorèse détermine le nombre maximal de points de données par gel analytique. Nous utilisons un peigne à 30 puits. L'échelle de référence occupe 2 puits et le contrôle non clivée. Préparer 27 tubes de réaction. La finale Mg (II) concentrations doivent être espacés uniformément sur une échelle logarithmique couvrant plusieurs ordres de grandeur autour du point médian de titrage. </li><li> Par ailleurs, incuber l'ARN et le Mg (II) des solutions à 50 ° C pendant 5 min. Mélanger 10 ul de la solution d'ARN avec 90 ul de la quantité correspondante de Mg (II) en 1x tampon pour atteindre un volume final de 100 pl. Incuber les solutions pendant 30 min à 50 ° C. </li><li> Laissez les solutions s'équilibrer à 25 ° C pendant 1 heure tout en pliage se produit. </li><li> Peroxydante (3.4.1) ou oxydatif (3.4.2) hydroxyle réaction empreinte radicale. <ol><li> Démarrer la réaction peroxydante en plaçant des gouttelettes de 2 pl Fe-EDTA (100 mm), 2 ul de sodium L-ascorbate (50 mm) et 2 ul H 2 O 2 (1,5%), séparés les uns des autres à l'intérieur haut de la réaction tube contenant la solution d'ARN et de démarrer la réaction empreinte en mélangeant vigoureusement. Arrêter la réaction après 15 secondes en ajoutant 300 ul d'éthanol froid absolu. Tournez les tubes 3-5 fois. Précipité, lavez etsèche le culot comme à l'étape 2.4. </li><li> Démarrez le oxydatif footprintingreaction radical hydroxyle en ajoutant 5 ul du mélange de réaction de Fenton fraîchement préparés (1,6). Incuber pendant 30 min à 25 ° C. Ajouter 300 ul d'éthanol absolu froid pour stopper la réaction et mélanger en tournant les tubes 3-5 fois. Précipité, laver et sécher le culot, comme indiqué dans l'étape 2.4. </li></ol></li><li> Générer un échantillon de référence RNase T1 digérer, conformément aux procédures standard de 10 en utilisant la solution préparée à l'étape 1.3. </li><li> Dissoudre culots d'ARN dans les 8 ul du gel de chargement II colorant (Ambion) et confirmer l'ARN est remis en suspension par l'aide du compteur Geiger. </li><li> Préparer une dénaturation, un gel de polyacrylamide 8% séquençage selon des protocoles standard. 11 Charger les échantillons dont deux références et un contrôle. Séparer des fragments d'ARN à 60 W - 75 W pendant 2,5 heures. Exposer gel séché sur un écran de phosphore de stockage pendant la nuit. Balayage écran phosphorique avec un système d'imagerie pour autoradiographie sans film, par exemple,. Tempête 865 (GE Healthcare) ou Typhoon (GE Healthcare). Transfert de fichier image du gel sur votre ordinateur. </li></ol> 4. Analyse des données <ol><li> La réactivité du radical hydroxyle de chaque nucléotide est déterminé par la quantification de l'intensité de chaque bande sur le gel analytique. Téléchargez, installez et ouvert SAFA, un outil facile à utiliser un logiciel open source pour le montage et la quantification seule bande. 12, 13 Suivez les instructions du manuel utilisateur. Brièvement, la charge de la séquence d'ARN sous. Txt suivie par l'image gel comme. Gel de fichier. Ajustez intensités des bandes, de définir les voies, choisissez une voie d'ancrage, et d'effectuer un alignement de gel. Attribution des bandes de nucléotides se produit en référence à l'échelle de digestion RNase T1. Quantifier les intégrales bande et utiliser la fonction de normalisation / colorplot à normaliser et à attribuer des résidus potentiellement invariant. Enregistrez le résultat dans un fichier. Txt. </li><li> SAFA sorties d'un tableur contenant des colonnes représentant voies sur le gel et des lignes représentant l'enINTÉGRÉ densité de la bande des bandes individuelles correspondant au fragment d'ARN. Tout d'abord, identifier les sites de protection qui affichent un changement notable dans l'accessibilité de solvant en comparant le profil de protection dérivée de la non Mg (II) de l'échantillon avec le profil du point de fin de Mg (II) de concentration (50 mM dans notre exemple). La baisse de la valeur, le plus protégé le nucléotide est contre l'attaque des radicaux hydroxyles et vice versa. </li><li> Créer isothermes pliage de la bande normalisée de intégrales ou des groupes de nucléotides par rapport Mg (II) de concentration. Les isothermes sont individuellement mis à l'échelle de la saturation fractionnelle par fi = L + (U - L) • <img src="files/ftp_upload/3244/3244y.jpg" alt="Y"> où f représente la densité intégrée de la bande (s) en cours d'analyse, L et U représentent les limites inférieures et supérieures à la transition et <img src="/files/ftp_upload/3244/3244y.jpg" alt="Y" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Y"> est la saturation fractionnelle. 14 Les données sont adaptées en utilisant un L non-linéaireprogramme d'analyse de l'Est carrés (Nous utilisons soit l'origine (OriginLab) ou GraphPad (GraphPad Software, Inc.)) à l'équation de Hill (1), <img alt="Équation 1" src="/files/ftp_upload/3244/3244eq1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="L'équation 1"> où K d est la constante de dissociation d'équilibre, [M] correspond à la concentration de la variable qui intervient dans la réaction de repliement, Mg (II) dans cet exemple, et n H est le coefficient de Hill. Cette procédure d'échelles de la transition vers la saturation fractionnelle, détermine son milieu et fournit un test phénoménologique de savoir si une transition est sigmoïde. Isothermes dérivées de gels de séquençage (figure 3A) qui ont été analysés par la SAFA (figure 3B) et ajustement tel que décrit ci-dessus sont présentés dans la figure 3C. Les isothermes de saturation fractionnelle montre la figure 3 ont été générés par l'échelonnement dans un tableur les valeurs générées par la SAFA contre le meilleur ajustement des limites supérieure et inférieure (U et L) en utilisant la fraction équation de valeur = / (U - L) - L / (U - L). </li></ol> 5. Les résultats représentatifs: La figure 3 montre des résultats représentatifs de P4 à P6 ARN • expériences empreinte OH. L'image du gel (à gauche) indique que le clivage de fond) est minime (voie de droite), b) l'affectation simple nucléotide est possible grâce à des bandes bien définies dans la voie de T1 (T1 RNase clive à chaque G), et c) du radical hydroxyle la fragmentation induite par l'ARN est bien au-dessus de fond. La transition de faible à haute Mg (II) est affiliée à diminuer la densité intégrée de la bande individuels et les groupes de bandes indiquant la formation d'ARN structure tertiaire. Simple ou des groupes de nucléotides contigus dont le clivage des changements de façon concomitante sont considérés comme une «protection». Les protections • OH caractéristique du Mg (II) la médiation de pliage de l'ARN P4-P6 correspondent étroitement aux régions inaccessibles solvant de la molécule observée dans sa structure cristalline. 15 Plié molécules d'ARN c une ont des degrés très différents (à savoir, comment proche de fond le déclin bande de densité) de protection contre les contacts tertiaires qui n'ont pas été corrélés avec phénomène structurel ou dynamique claire. Ainsi, certaines molécules d'ARN se montrent bien défini des transitions structurelles, comme le montre la figure 3, et d'autres non. Intensités des bandes sont quantifiés et normalisés par SAFA 12 analyse (figure 3B). La sortie est un "thermique" complot visualiser le degré relatif de protection contre • OH. La transition de couleur décrit les changements d'accessibilité lors de Mg (II) plus. Blanc à rouge ou bleu montre nucléotides plus accessible ou plus protégés, respectivement. Chaque degré d'ombrage est affilié à une valeur numérique qui peut être tracée comme une courbe de protection (figure 3C) et analysées par un modèle de liaison tels que l'équation de Hill (1). La constante d'équilibre de dissociation affilié à la protection de 153 à 155 est à peu près le double de la valeur correspondante de protection 163-164. ONTENU "&gt; <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/3244/3244fig1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 1"> Figure 1. Production de radicaux hydroxyles et P4-P6 pliage ARN. A) le Fe (II) catalyse la production de radicaux hydroxyles par le peroxyde d'hydrogène. L'ascorbate réduit le Fe (III) Retour au fer ferreux. B) En l'absence de Mg (II), aucune structure P4-P6 tertiaire est formé, ce qui permet de pénétrer les radicaux hydroxyles et cliver toutes les positions armature accessible. L'addition de Mg (II) initie pliage de P4 à P6, permettant seulement l'épine dorsale accessible au solvant à être clivée par les radicaux hydroxyles. <img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/3244/3244fig2.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 2"> Figure 2. Schéma pour une expérience empreinte radical hydroxyle. Un Dephophorylation) et 32 P-5'-end d'étiquetage de l'ARN. B) Purification de 32 P-ARN marqué sur un gel de polyacrylamide dénaturant. C) L'excision de la bande de l'ARN, après l'extraction d'ARN, et précipitation à l'éthanol. D) et Prefoldingrepliement de l'ARN. E) Ajout d'fraîchement préparés mélange réaction de Fenton pour générer les radicaux hydroxyles. F) la séparation fragment d'ARN par électrophorèse sur gel dénaturant de polyacrylamide. G) La quantification de fragments d'ARN par un logiciel de SAFA. <img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/3244/3244fig3.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 3"> Figure 3. Analyse de fragments d'ARN après réaction empreinte peroxydante Fenton. (A) L'ARN a été exposé à des radicaux hydroxyles et les produits de clivage ont été résolues en utilisant l'électrophorèse sur gel dénaturant de polyacrylamide (PAGE). La photo montre des produits de clivage peroxydante avec une concentration croissante de Mg (II). Voies de référence et de contrôle sont étiquetés. Ce fichier image est l'entrée pour le programme SAFA, qui quantifie le volume de chaque bande. (B) Le «thermique» intrigue générée par la SAFA. (C) Un tableur des valeurs relatives densité de la bande intégrés à la sortie du numéro de nucléotides SAFA est analysée par un modèle de liaison tels que la Colline equatisur (1). Régions de protection ont été choisis en fonction de l'augmentation de la densité de la bande intégrale comme une fonction de Mg (II) de concentration. Le Kd est le Mg (II) la concentration à laquelle la moitié de l'ARN est plié sur le site à surveiller. Le coefficient de Hill, n H, est une mesure de la pente de la courbe qui donne des informations sur la coopérativité de liaison et fournit une estimation plus faible pour le nombre d'ions magnésium impliquée dans le pliage de ce site particulier. <img alt="Tableau 1" src="/files/ftp_upload/3244/3244table1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Tableau 1"> Tableau 1. Volumes Représentant pour générer des échantillons d'ARN contenant différents Mg (II) sur les concentrations.

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</ol>

Pas de conflits d&#39;intérêt déclarés.

Hydroxyle empreinte radicale est un outil précieux pour évaluer la surface accessible au solvant des acides nucléiques. La formation quantitative et qualitative de la structure tertiaire 14 peut être suivie en fonction de paramètres tels que le type et la concentration d'ions, pH, température, protéines de liaison ou de pliage des co-facteurs. La combinaison convaincante d'un protocole simple et peu coûteux et l'accessibilité résultant de solvant et de l'information pliage sur un seul niveau nucléotidique ren...

<table><tbody><tr><td>Nom</td><td>Société</td><td>Réf.</td><td></td></tr><tr><td>Cacodylate de sodium (Attention ! Toxique)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C4945-25g</td><td></td></tr><tr><td>EDTA (0,5 M)</td><td>Ambion</td><td>AM9260G</td><td></td></tr><tr><td>Eau traitée au DEPC</td><td>Ambion</td><td>AM9915G</td><td></td></tr><tr><td>Acétate de sodium (3 M)</td><td>Ambion</td><td>AM9740</td><td></td></tr><tr><td>MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; (1 M)</td><td>Ambion</td><td>AM9530G</td><td></td></tr><tr><td>Urée</td><td>Ambion</td><td>AM9902</td><td></td></tr><tr><td>Citrate de sodium</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>W302600</td><td></td></tr><tr><td>tRNA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>R-7876</td><td></td></tr><tr><td>Ascorbate de sodium-L</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7631-25g</td><td></td></tr><tr><td>Fe(NH&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;)&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;(SO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;)&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; · 6 H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F1543-500g</td><td></td></tr><tr><td>RNase T1</td><td>Fermentas</td><td>EN0541</td><td></td></tr><tr><td>Peroxyde d'hydrogène (30 %)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>349887</td><td></td></tr></tbody></table>

les changements d&#39;équilibre dans la structure de l&#39;arn de surveillance par «peroxydation» et «oxydatif» hydroxyl footprinting radical

Monitoring Equilibrium Changes in RNA Structure by 'Peroxidative' and 'Oxidative' Hydroxyl Radical Footprinting

Molécules d&#39;ARN jouent un rôle essentiel dans la biologie. En plus de transmettre l&#39;information génétique, l&#39;ARN peut incorporer uniques structures tertiaires remplir un rôle de régulateur biologiques spécifiques, liant ou de catalyseur. Information sur la formation de contacts tertiaire est essentielle pour comprendre la fonction des molécules d&#39;ARN. Les radicaux hydroxyles (OH •) sont des sondes unique de la structure des acides nucléiques en raison de leur grande réactivité et une petite taille. 1 Lorsqu&#39;il est utilisé comme une sonde d&#39;empreinte, les radicaux hydroxyles cartographier la surface accessible au solvant de l&#39;squelette phosphodiester de l&#39;ADN et l&#39;ARN 1 2 avec aussi fine que la résolution seul nucléotide. Hydroxyle empreinte radical peut être utilisé pour identifier les nucléotides au sein d&#39;une surface de contact intermoléculaires, par exemple en ADN-protéines et d&#39;ARN une teneur en protéines complexes. Equilibre et cinétique 3 4 transitions peut être déterminé en effectuant des empreintes hydroxyles radicaux en fonction d&#39;une solutisur la variable ou l&#39;heure, respectivement. Une caractéristique clé de l&#39;empreinte est que l&#39;exposition limitée à la sonde (par exemple, &quot;la cible unique cinétiques») des résultats de l&#39;échantillonnage uniforme de chaque nucléotide du polymère. 5 Dans cet article, vidéo, nous utilisons le domaine P4-P6 du ribozyme de Tetrahymena pour illustrer la préparation des échantillons d&#39;ARN et la détermination d&#39;un Mg (II)-médiée isothermes pliantes. Nous décrivons l&#39;utilisation du protocole bien connu l&#39;empreinte de radicaux hydroxyles qui nécessite H 2 O 2 (nous appelons cela la &quot;peroxydante« protocole) et une valeur, mais pas très connu, alternative qui utilise naturellement dissous O 2 (nous appelons cela «l&#39; oxydatif &quot;protocole). Un aperçu de la réduction des données, la transformation et les procédures de l&#39;analyse est présentée.

Ce protocole décrit comment quantifier les Mg (II)-dépendante de la formation de l&#39;ARN structure tertiaire par deux méthodes d&#39;empreinte radical hydroxyle.

Les changements d&#39;équilibre dans la structure de l&#39;ARN de surveillance par «peroxydation» et «oxydatif» Hydroxyl Footprinting Radical

Les molécules d'ARN jouent un rôle essentiel en biologie. En plus de transmettre l'information génétique, l'ARN peut se replier en structures tertiaires uniques remplissant...

L'objectif général de l'expérience suivante est de déterminer comment les molécules d'ARN se replient à l'aide d'une empreinte de radicaux hydroxyles. Cette approche repose sur le marquage en extrémité, la purification sur gel et le pré-repliement de l'ARN, ce qui garantit l'intégrité conformationnelle de l'ARN avant l'étape suivante de repliement induit par le magnésium. Ensuite, les réactifs de Fenton sont mélangés afin de générer des radicaux hydroxyles, capables de cliver la chaîne principale de l'ARN en fonction de son accessibilité au solvant. Puis, les produits de clivage de l'ARN sont séparés par électrophorèse sur gel dénaturant de polyacrylamide et visualisés par autoradiographie.Les intégrales des bandes sont quantifiées à l'aide d'un logiciel d'analyse de footprinting semi-automatisé. L'objectif ultime est de générer des isothermes de repliement reflétant la formation de la structure tertiaire de l'ARN. Cela est réalisé en ajustant les intégrales des bandes normalisées à la saturation fractionnaire.Les isothermes peuvent ensuite être ajustées à l'équation de Hill. Le principal avantage du footprinting hydroxyle est que vous obtenez des informations sur la structure tert

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JoVE Journal

Biology

Biologie

Haut-débit sélectif 2 'acylation hydroxyle analysés par extension d'amorce (SHAPE) utilise une nouvelle chimique sonder la technologie, la transcription inverse, l'électrophorèse capillaire et les logiciels de prédiction de structure secondaire pour déterminer les structures des ARN de plusieurs centaines à plusieurs milliers de nucléotides à une résolution au nucléotide.

ARN prédiction de la structure secondaire via SHAPE à haut débit

Radical basé sur la chimie biomimétique a été appliquée à la construction-up bibliothèques nécessaires pour le développement de biomarqueurs.

Radicaux libres en biologie chimique: de Comportement chimique au développement de biomarqueurs

Ici nous présentons un protocole pour le clivage DNAzyme-dépendant de l'ARN. Cela permet une analyse rapide et dépendante du site de l'ARN 2'-O-méthylation. Cette approche peut être utilisée pour l'évaluation préliminaire ou majeure de l'activité du snoRNA.

Analyse Dépendante de DNAzyme de rRNA 2'-O-Methylation

Nous décrivons ici les méthodes de quantification sensible et précise des lésions 8-oxo-7,8-dihydro-2 '-désoxyguanosine (8-oxodGuo), 1,n6-étheno-2 '-désoxyadénosine (1,n6-Dado) et 1,n2- étheno-2 '-désoxyguanosine (1,N-2dguo) dans l’ADN. Les méthodes ont été appliquées à l’évaluation des effets des particules fines ambiantes (PM2,5) dans les tissus (poumons, foie et rein) des souris A/J exposées.

Quantification de trois lésions de l’ADN par spectrométrie de masse et évaluation de leurs niveaux dans les tissus de souris exposés à des particules fines ambiantes

In vivo l’oxydation photochimique rapide des protéines (IV-FPOP) est une technique d’empreinte de protéine radicale hydroxyl qui permet la cartographie de la structure des protéines dans leur environnement indigène. Ce protocole décrit l’assemblage et la mise en place du système de flux microfluidique IV-FPOP.

In Vivo Hydroxyl Radical Protein Footprinting for the Study of Protein Interactions in Caenorhabditis elegans

Ici, nous caractérisons la structure des protéines et les sites d’interaction dans les cellules vivantes à l’aide d’une technique d’empreinte protéique appelée oxydation photochimique rapide cellulaire des protéines (IC-FPOP).

Caractériser les protéines cellulaires avec l’oxydation photochimique rapide à cellule des protéines

La réticulation cinétique et l’analyse de l’ADNc est une méthode qui permet d’étudier la dynamique des interactions protéine-ARN dans les cellules vivantes à haute résolution temporelle. Ici, le protocole est décrit en détail, y compris la croissance des cellules de levure, la réticulation UV, la récolte, la purification des protéines et les étapes de préparation de la bibliothèque de séquençage de nouvelle génération.

Surveillance de la dynamique d’interaction protéine-ARN in vivo à haute résolution temporelle à l’aide de χCRAC

L’oxydation photochimique rapide des protéines est une technique émergente pour la caractérisation structurelle des protéines. Différents additifs et ligands de solvant ont des propriétés de récupération radicales hydroxyles variées. Pour comparer la structure protéique dans différentes conditions, une compensation en temps réel des radicaux hydroxyles générés dans la réaction est nécessaire pour normaliser les conditions de réaction.

Permettre une compensation en temps réel dans les oxydations photochimiques rapides des protéines pour la détermination des changements de topographie des protéines

Ce protocole présente une méthode pour utiliser la dosimétrie radicale en ligne et une source de lumière plasma pour effectuer l’empreinte des protéines d’oxydation flash. Cette méthode remplace le laser UV dangereux pour simplifier et améliorer la reproductibilité de l’oxydation photochimique rapide des études de protéines.

Empreinte de protéines de radicaux hydroxyles sans laser pour effectuer une analyse structurelle d’ordre supérieur des protéines

MALDI-TOF a été utilisé pour caractériser des fragments obtenus à partir de la réactivité entre l’ARN oxydé et l’exoribonucléase Xrn-1. Le présent protocole décrit une méthodologie qui peut être appliquée à d’autres processus impliquant l’ARN et/ou l’ADN.

Identification de fragments d’ARN résultant d’une dégradation enzymatique à l’aide de la spectrométrie de masse MALDI-TOF

Le protocole fournit des instructions pour modifier l’ARN avec du sulfate de diméthyle pour les expériences de profilage mutationnel. Il comprend le sondage in vitro et in vivo avec deux méthodes alternatives de préparation de bibliothèque.

Criblage de la structure de l’ARN avec le profilage mutationnel du sulfate de diméthyle avec séquençage in vitro et dans les cellules

Découvrez le footprinting radical hydroxyle pour quantifier la formation de la structure tertiaire de l'ARN dépendante du Mg(II). Cette méthode utilise le marquage d'extrémité et l'électrophorèse pour analyser l'accessibilité au solvant.

Les changements d'équilibre dans la structure de l'ARN de surveillance par «peroxydation» et «oxydatif» Hydroxyl Footprinting Radical

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