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DOI: 10.3791/62062-v
Darren M. O'Hara1,2, Minesh Kapadia1,2, Susan Ping1,2, Suneil K. Kalia1,2,3, Lorraine V. Kalia1,2,4,5,6
1Krembil Research Institute, Toronto Western Hospital,University Health Network, 2Department of Laboratory Medicine and Pathobiology,University of Toronto, 3Department of Surgery, Division of Neurosurgery,University of Toronto, 4Department of Medicine, Division of Neurology,University of Toronto, 5Department of Medicine, Division of Neurology, Edmond J. Safra Program in Parkinson's Disease and the Morton and Gloria Shulman Movement Disorders Clinic, Toronto Western Hospital,University Health Network, 6Tanz Centre for Research in Neurodegenerative Diseases,University of Toronto
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This study presents an automated method for semi-quantitative determination of dopaminergic neuron numbers in the rat substantia nigra pars compacta. The protocol significantly reduces the workload and enhances accuracy when estimating neuron counts, which is crucial in Parkinson's disease research.
Ici nous présentons une méthode automatisée pour la détermination semi-quantitative du nombre dopaminergique de neurone dans le substantia nigra compacta de substantia de rat.
L’estimation du nombre de neurones dopaminergiques dans le nigra de substantia est une mesure de résultats clé dans la recherche sur la maladie de Parkinson. Ce protocole raccourcit considérablement la charge de travail requise pour estimer le nombre de neurones. Cette méthode fournit un processus efficace dans le temps et précis pour détecter les changements dans le nombre de neurones dopaminergiques et convient pour déterminer l’effet des interventions sur la survie cellulaire.
Cette méthode pourrait être facilement adaptée pour fournir des comptages précis de neurones dans différentes régions du cerveau tout en maintenant les avantages de coût et de temps par rapport aux méthodes thétéologiques traditionnelles. Pour capturer des images IHC, utilisez le logiciel couplé à un microscope confocal à un grossissement 10X. Ouvrez le trou de la goupille à 1,5 unité de surface pour capturer un plan large totalisant 1,5 micromètre et mettre l’accent sur le côté injecté du cerveau.
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