$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
אבטח עכבר מורדם עם חלון גולגולת מעל קליפת המוח המוטורית שלו על הליכון.
העכבר מבטא מדווח חלבון קינאז-A בתאי עצב בקליפת המוח.
מקם את ההליכון מתחת למטרת FLIM של שני פוטונים.
הוסף טיפת מים בין המטרה לחלון הגולגולת.
אפשר לעכבר להתעורר ולהתאקלם בהליכון.
באמצעות תאורת שדה בהיר, אתר את אזור ההדמיה. סגור את מארז המיקרוסקופ כדי לחסום אור חיצוני.
הגדר את פרמטרי ההדמיה, התחל סיבוב הליכון כדי לגרום לתנועה והתחל בהדמיה.
תנועה כפויה מפעילה PKA, שמזרחן את המדווח, ומקרב את התורם והמקבל שלו פלואורופורים.
המיקרוסקופ מכוון לייזר אינפרא אדום, מעורר את התורם להעביר אנרגיה למקבל, ומפחית את חיי הקרינה של התורם.
כאשר התנועה נפסקת, PKA והמדווח חוזרים למצבם הלא פעיל, מפחיתים את העברת האנרגיה ומגדיל את חיי הקרינה של התורם.
נתח את התמונות כדי להשוות את רמות ה-PKA בקליפת המוח בזמן מנוחה ותנועה.
לפחות שבועיים לאחר התקנת חלון הגולגולת, הגדר את אורך הגל של לייזר עירור שני פוטונים ל-960 ננומטר ואשר חוסר תגובה לצביטה בבוהן בעכבר הניסוי המורדם הנח את העכבר המורדם על ההליכון הממונע והתקן את לוחית הראש של העכבר למחזיק לוחית הראש של מערך ההליכון. נקה את פני השטח של כיסוי חלון הגולגולת עם 70% אתנול והנח את ההליכון הממונע מתחת למטרה 2pFLIM.
מרחו טיפת מים מזוקקים בין כיסוי חלון הגולגולת במטרה, ואפשרו לעכבר להתעורר ולהתאקלם בסביבת ההליכון והמיקרוסקופ למשך 10 דקות לפחות. נווט למיקום ההזרקה תחת אפי-תאורה ותעד את המאפיינים הנאמנים תחת שדה בהיר כדי לסייע בהדמיה של אותו אזור עניין במהלך מפגשי ההדמיה הבאים.
כבה את מקור האור epi-illumination. צרף את המארז של מתקן המיקרוסקופ 2pFLIM. כדי להפעיל את צינורות מכפיל הפוטו של מיקרוסקופ 2pFLIM, הפעל את בקרת מתח הפקודה של החומרה. כדי לקבל תמונת Z-stack 2pFLIM, הגדר את גודל התמונה ל- 128 על 128 פיקסלים. מהירות הסריקה ל-2 אלפיות השנייה לשורה, שדה הראייה ל-90 עד 100 מיקרומטר במסגרת, בממוצע לשלוש פריימים.
כוונן את הגדרות ההדמיה בהתאם להכנה ולתצורת החומרה. ובדוק את התמונה הנרכשת בתצוגת FLIM. השתמש בשדה ראייה מופחת, מהירות סריקה מופחתת, עוצמת לייזר מוגברת ומספר פריימים מוגבר לממוצע כדי להגדיל את ספירת הפוטונים המשולבים ולהפחית את שגיאת הערכת החיים לפי הצורך.
הקפד להשיג מספיק פוטונים לכל אזור עניין. ספירת תמונות משולבת מעשית עבור סומה חיובית בתצוגה היא כ-1,000 עד 10,000 פוטונים.
לאחר אופטימיזציה של התמונה, רכוש תמונות Z-stack חוזרות על בסיס במרווחי זמן קבועים למשך 15 דקות לפחות במהירות 0 על ההליכון. לאחר מכן הגדר את סיבוב ההליכון לכסנטימטרים לשנייה למשך 15 דקות תוך רכישת תמונות 2pFLIM, ולאחר מכן לפחות 20 דקות של רכישת תמונה לאחר כיבוי סיבוב ההליכון כדי להעריך את משך פעילות החלבון קינאז A לאחר הפסקת התנועה הכפויה.
לניתוח תמונה של 2pFLIM, פתח את התמונות בתצוגת סרט ולחץ על שדות הטווח המינימלי והמקסימלי של ספירת פוטונים בודדים כדי להזין את ערכי טווח ספירת הפוטונים המינימליים והמקסימליים המתאימים. לחץ על השדה ערך זמן 0 כדי להזין את ערך הזמן 0 ולחץ על השדה ערך סף מינימלי של בהירות לכל החיים כדי להזין את ערך הסף הרצוי בין 5 ל- 30 פוטונים.
לחץ על הלחצן New group והקצה שם של קבוצת ניסוי ליצירת קבוצה המשלבת את הנתונים מכל תמונת FLIM שנוספה. לחץ על אזור עניין במודול בקרות אזור העניין וצייר אזור עניין סביב סומה אלפא חיובית של T-ACCR. הזז את גבול ה-Z התחתון והעליון במחווני הבקרה של Z-stack כדי להקטין את טווח ה-Z-stack וכדי למזער את זיהום האות שמקורו בפוטונים ברקע ומטבילות Z אחרות, ולחץ על פלוס כדי להוסיף את תמונת FLIM לקבוצה.
לחץ על calc כדי לחשב את אורך החיים הממוצע בשגיאת הערכת אורך החיים עבור אזור העניין, ופתח את הקובץ הבא בסדרת ההדמיה 2pFLIM. מדוד את אותה סומה אלפא חיובית T-ACCR בכל תמונה עוקבת לאורך זמן, והתאם את אזור העניין סביב הסומה לפי הצורך. לאחר ניתוח כל התמונות, בחר את זמן פליטת הפוטון הממוצע של דלתא ממוצע דלתא פליטת פוטו T0 במודול פקדי הקבוצה, ולחץ על שדה מספר הבסיס כדי להזין את האינדקס עבור התמונות המעניינות כדי להגדיר את התמונות המשמשות לחישוב אורך החיים הבסיסי.
לאחר מכן, לחץ על תרשים כדי ליצור גרף המכיל את תגובת FLIM לפעילות אלפא חיובית של T-ACCR במהלך הניסוי באזורי העניין המוגדרים כדי לאפשר השוואה של פעילות החלבון קינאז A במהלך תנועת הקינאז על פני אזורי עניין שונים.