RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
he_IL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/52531-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
בפרוטוקול וידאו זה אנו נותנים הסבר שלב אחר שלב על התמרה לנטי-ויראלית באורגנואידים של אפיתל המעי הראשוני ועל עיבוד וניתוח במורד הזרם של תרביות אלה על ידי RT-PCR כמותית, מיקרו-מערך RNA ואימונוהיסטוכימיה.
המטרה הכוללת של הליך זה היא ליצור אורגנואידים שהועברו ביציבות מאפיתל המעי הראשוני של העכבר לניתוח במורד הזרם של אורגנואידים במעי. זה מושג על ידי העברה ראשונה של תאי HEC 2 93 T עם וקטורי אריזה לנטי-ויראליים ופלסמיד לנטי-ויראלי, המקודד את הגן המעניין לייצור חלקיקים לנטי-ויראליים בעלי טיטר גבוה. השלב השני הוא טיפול מקדים באורגנואידים במעי עכברים מתורבתים עם מספר גורמי גדילה כדי להשיג קריפטות היפר-פרוליפרטיביות ציסטיות.
לאחר מכן, התמרו את האורגנואידים עם וירוס הטיטר הגבוה ודגרו על האורגנואידים המומרים במטריג'ל. השלב האחרון הוא להטמיע אורגנואידים מתמרים בוגרים מלאים בפרפין לניתוח אימונוהיסטוכימיה במורד הזרם. בסופו של דבר, התמרה אורגנואידית לנטי-ויראלית משמשת ליצירת שינויים גנטיים במודל מבחנה של אפיתל המעי שהוא אמין, ניתן לשחזור ומהיר.
היתרון העיקרי של טכניקה זו על פני שיטות קיימות כגון קווי תאים סרטניים, הוא שאורגנואידים הם היררכיה של תאי גזע שנעקרו ללא מוטציה. בקיטוב תאי טקסט, הוא יכול להתמיין לכל סוגי התאים השונים של אפיתל המעי הדק. בנוסף, ניתן להשתמש באורגנואידים מותמרים לחקר אלמנטים גנטיים ספציפיים, ובכך לעלות על השימוש בעכברים טרנסגניים והיבטים של עלות ומהירות.
ייצור חלקיקים לנטי-ויראליים הוא פרוטוקול של חמישה ימים שמתחיל בפיצול תאי HEC 2 93 T לשטף של 60 עד 80% בבקבוק של 162 סנטימטר מרובע במדיום תרבית תאים. דגרו את התאים למשך הלילה בחממת תרבית תאים לחה בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למחרת. הכן את תמיסת העברת ה-DNA ואת תמיסת הטרנספקציה של פוליאתילן אמין או PEI כמתואר בטקסט הפרוטוקול.
הוסף את תמיסת טרנספקציית ה- DNA למערבולת תמיסת PEI או הפוך מספר פעמים ודגירה למשך חמש דקות. בטמפרטורת החדר. טפטפו שני מיליליטר של תמיסת DNA TRANSFECTION בתוספת PEI על תאי HEC 2 93 T ודגרו במשך ארבע שעות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס לאחר ארבע שעות.
רענן את מדיום התרבות. כדי להסיר את ה-PEI דגרו על התאים במשך יומיים בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס ביום הרביעי, אספו את הסופרנטנט בצינור של 50 מיליליטר. הוסף מדיום תרבית חדש לתאים והחזיר את הבקבוק לצנטריפוגת האינקובטור את הסופרנטנט שנאסף ב-500 גרם למשך חמש דקות.
כדי להסיר תאים מתים, השתמש במזרק גדול של 60 מיליליטר כדי לדחוף את ה-SUPERNAT דרך מסנן של 0.45 מיקרומטר. אחסן את הסופרנט המסונן למשך הלילה בארבע מעלות צלזיוס למחרת. אסוף צנטריפוגה וסנן את האצווה השנייה של סופרנטנט כפי שמוצג עבור האצווה הראשונה.
אסוף את שתי קבוצות הסופרנטנט בצינורות אולטרה צנטריפוגה. צנטריפוגה ב-50,000 GS למשך 90 דקות. בסיום הצנטריפוגה, בזהירות רבה, הסר את הכמוסות המכילות את צינורות הצנטריפוגה האולטרה-צנטריפוגה והכניס אותן למכסה זרימה למינרית.
פתח את הקפסולה המחזיקה את צינור האולטרה צנטריפוגה ושפך את המדיום בזהירות עם הגלולה בצד העליון של הצינור. חשוב לזכור איזה צד של ערעור הצינור היה נוצר מכיוון שכדורים נגיפיים עשויים להיות קשים לדמיון. לאחר מכן, השתמש במיקרו פיפטה כדי להסיר את פיסת המדיום האחרונה תוך הקפדה לא לעורר את הכדור החום האטום הנראה בצד החלק התחתון של צינור האולטרה-צנטריפוגה.
השעו מחדש את הכדור הזה ב-500 מיקרוליטר של מדיום תרבית אורגנואידים בתוספת מעכבי ניקוטינמיד קינאז ו-poly brain resus. תרחיף במדיום זה חשוב מכיוון שנגיף טיטר גבוה ישמש ישירות להעברת אורגנואידים יומיים לפני ההעברה. פצלו באר מלאה של 0.95 סנטימטר רבוע של אורגנואידים לבאר חדשה של צלחת 48 בארות.
בעקבות פרוטוקול שפורסם בעבר. שאפו להשיג כ-50 אורגנואידים קטנים בתרבית אורגנואידים. מדיום בתוספת מעכב גליקוגן סינתאז קינאז וניקוטינאמיד.
כדי להשיג קריפטות ציסטיות היפר-פרוליפרטיביות. דגרו על האורגנואידים במשך יומיים ביום הקציר אורגנואידים עם מיקרו פיפטה P 1000. פיפטה את ג'ל המאטרה ומדיום למעלה ולמטה, ובכך משבש את התערובת.
מניחים את התערובת בצינור של 15 מיליליטר. שבש את התערובת עוד יותר באמצעות PEs הפיפטה שלך שבה הפתח הדיסטלי ירד על ידי המסת גלולה האורגנואידים על ידי צנטריפוגה ב -100 גרם למשך חמש דקות. לאחר מכן הסר את הסופרנטנט ב-500 מיקרוליטר של טריפסין אחד לחימום מראש והשהה מחדש את האורגנואידים בדגירה למשך שלוש דקות.
באמבט מים של 37 מעלות צלזיוס, השביתו את הטריפסין על ידי הוספת 3.5 מיליליטר של צנטריפוגה בינונית מתרבית קו תאים למשך חמש דקות. ב 500 גרם.הסר את הסופר נתן כדי להשאיר את הכדור בכ -20 מיקרוליטר בינוני. מעבירים את האורגנואידים בכמות הקטנה האחרונה הזו של מדיום לבאר.
על צלחת 48 באר. הוסף את נגיף הטיטר הגבוה שהוכן בעבר במדיום התמרה לאורגנואידים והשהה מחדש. דגרו את תערובת הנגיף האורגנואיד למשך שעה בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס באינקובטור תרבית כדי לאפשר התמרה לאחר שעה, הוסיפו מיליליטר אחד של תרבית אורגנואיד, מדיום לתערובת הנגיף האורגנואידי, השעו מחדש והעבירו את התערובת לצנטריפוגה של צינור מיקרו צנטריפוגה ב-850 GS למשך חמש דקות.
כדי לגלול את האורגנואידים, הסר את הסופרנטנט והשהה מחדש את הגלולה. ב -20 מיקרוליטר ג'ל מאטרה קר כקרח, הכניסו את הטיפה באמצע באר. בצלחת של 48 בארות ודוגרים בחום של 37 מעלות צלזיוס למשך 15 דקות.
כדי שהטיפה תתמצק לאחר 15 דקות. מוסיפים בזהירות 250 מיקרוליטר של תרבית אורגנואיד. מדיום בתוספת מעכבי ניקוטינאמיד וקינאז.
מחממים גוש אלומיניום בחממה בחום של 70 מעלות צלזיוס כדי לשמור על נוזל הפרפין. הסר את המדיום מבאר אחת עם אורגנואידים בוגרים מלאים והשאיר את האורגנואידים המוטבעים שלמים והוסף מיליליטר אחד של 4% אלדהיד פרפורם ב-PBS ישירות לבאר. החלף את הפרפורם אלדהיד במיליליטר אחד של PBS.
השעו מחדש את האורגנואידים הקבועים ב-PBS והעבירו לבקבוקון זכוכית. תנו לאורגנואידים לשקוע לתחתית למשך דקה. לאחר מכן, פיפטה מה- PBS והחלף באתנול 70% בו מומסות כמה טיפות של תמיסת eoin.
כדי לאפשר הדמיה של אורגנואידים לאורך תהליך ההטמעה, השאירו את האורגנואידים ב-70% אתנול בטמפרטורת החדר למשך 30 דקות. הסר את האתנול 70% על ידי פיפטינג בזהירות. ניתן לראות את האורגנואידים בעין בגלל צבע ה-eoin הורדרד.
החלף את תמיסת ההטבעה באתנול 96% והשאיר בטמפרטורת החדר למשך 30 דקות באופן זה. לאחר מכן, העבירו את האורגנואידים דרך 70% אתנול, 90% אתנול, 96% אתנול, 100% אתנול, 100% אתנול, קסילן וקסילן. שפכו את שטיפת הקסילן האחרונה ושפכו פרפין לבקבוקון הזכוכית.
הכניסו את הבקבוקון מיד לגוש האלומיניום המחמם מראש בטמפרטורה של 70 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות. לאחר 30 דקות, החלף את הפרפין בפרפין נקי חדש עם חימום מראש, PE או פיפטה. יוצקים את הפרפין ומשתמשים במזיק או פיפטה חמים מראש עם פתח גדול כדי להחדיר את האורגנואידים לתבנית גוש הפרפין לשכבת פרפין נוזלי.
מחממים מחט דיסקציה עם מבער בונסן ומניפולציות על כל האורגנואידים ככל האפשר לכיוון מרכז תבנית בלוק הפרפין. כאשר לוקליזציה של האורגנואידים בתבנית משביעת רצון, יש לצנן מעט את התבנית כדי למצק את שכבת הפרפין. סיים את הבלוק על ידי שפיכת פרפין נוסף מעל והוסף קלטת הטבעה היסטולוגית סטנדרטית.
בפרוטוקול זה, אורגנואידים של אפיתל המעי הומרו עם לנטי-וירוסים. אורגנואידים רגילים גדלים כמבנים וילוסיים של קריפטת K עם מספר קריפטות שיוצאות מתחום וילוס משותף. עם טיפול באורגנואידים אלה עם מעכב GSK 3 B, CHIR 9 9 0 21, התפשטות גדלה והקריפטות הופכות לציסטיות לאחר התמרת אורגנואידים.
באמצעות ביטוי יתר של EGFP לנטיויראלי, האורגנואידים מבטאים שלבי שיפור התמרה פלואורסצנטיים של EGFP שעשויים להתבצע כאשר יעילות ההתמרה נמוכה, כגון חיסון או דגירה ויראלית ממושכת, מכיוון שצעדים אלה לא יגדילו את היעילות הגבוהה ממילא. לאחר מכן, אורגנואידים אלה מעובדים עבור טכניקות RNA ואימונוהיסטוכימיה. תמונה מייצגת זו היא קטע של אורגנואיד מעיים של עכבר, מוכתם ל-BRDU לאחר הדגירה עם BRDU במשך שעה לפני הקיבוע.
לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד להמיר אורגנואידים מאפיתל המעי הראשוני באמצעות חלקיקים לנטי-ויראליים או רטרו-ויראליים.
Related Videos
04:55
Related Videos
2.2K Views
09:18
Related Videos
30.2K Views
09:09
Related Videos
14K Views
07:37
Related Videos
8.5K Views
09:16
Related Videos
10.5K Views
07:19
Related Videos
18.2K Views
14:54
Related Videos
5.3K Views
07:59
Related Videos
3.4K Views
09:49
Related Videos
5.1K Views
08:01
Related Videos
1.8K Views