-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
בניית רקמות לב Engineered האנושית תחם לחקור מנגנונים של טיפול בתאי לב
בניית רקמות לב Engineered האנושית תחם לחקור מנגנונים של טיפול בתאי לב
JoVE Journal
Bioengineering
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Bioengineering
Construction of Defined Human Engineered Cardiac Tissues to Study Mechanisms of Cardiac Cell Therapy

בניית רקמות לב Engineered האנושית תחם לחקור מנגנונים של טיפול בתאי לב

Full Text
10,618 Views
11:51 min
March 1, 2016

DOI: 10.3791/53447-v

Timothy J. Cashman1, Rebecca Josowitz2, Bruce D. Gelb2, Ronald A. Li1,3, Nicole C. Dubois2, Kevin D. Costa1

1Cardiovascular Research Center,Icahn School of Medicine at Mount Sinai, 2The Mindich Child Health and Development Institute,Icahn School of Medicine at Mount Sinai, 3Stem Cell & Regenerative Medicine Consortium, LKS Faculty of Medicine,University of Hong Kong

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

כתב יד זה מתאר את היצירה של רקמות לב מהונדסות מוגדרות באמצעות ביטוי סמני פני השטח ומיון תאים. לאחר מכן ניתן להשתמש ברקמות המוגדרות בביו-ריאקטור רב-רקמתי כדי לחקור מנגנונים של טיפול בתאי לב על מנת לספק מערכת מודל פונקציונלית, אך מבוקרת, של הלב האנושי.

Transcript

המטרה הכוללת של הליך זה היא ליצור רקמות לב מהונדסות אנושיות בעלות הרכב תאים מוגדר. שיטה זו יכולה להתמודד עם אתגרים מרכזיים בתחום הנדסת רקמות הלב, כולל בקרה על שונות ויעילות התמיינות לב והבנה כיצד סוגי תאים ספציפיים משפיעים על תפקוד התכווצות הלב. היתרון העיקרי של טכניקה זו הוא שהתוצאה הסופית היא רקמת לב מהונדסת אנושית בהרכב מבוקר ומוגדר.

שכפולים של טכניקה זו מתרחבים לטיפול במחלות לב מכיוון שרקמות מוגדרות יכולות לספק פלטפורמת סינון חדשה, רלוונטית ביולוגית וביו-רפואית המסוגלת להעריך התערבויות טיפוליות. למרות ששיטה זו יכולה לספק תובנה לגבי טיפולי לב חדשים, ניתן להשתמש במערכת רקמת הלב המהונדסת אנושית גם להבנת מנגנונים של טיפול בתאי לב. החל מתרביות קרדיומיוציטים שמקורם בתאי גזע עובריים אנושיים, שטפו את התאים פעם אחת עם PBS והוסיפו מיליליטר אחד של 0.04% טריפסין-EDTA.

דגרו על התאים למשך 10 דקות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס ו-5% CO2. כאשר התאים דוגרים, הוסף 12 מיקרוליטר של מעכב ROCK לשישה מיליליטר של תמיסת נטרול טריפסין. מוציאים את הצלחות מהחממה ומוסיפים מיליליטר אחד מתמיסת הנטרול לכל באר בצלחת שש הבארות.

העבירו את כל התאים מכל באר לצינור צנטריפוגה יחיד של 15 מיליליטר. שטפו את כל שש הבארות בנפח אחד של שלושה מיליליטר של PBS ושלבו את השטיפה הזו עם התאים בצינור. צנטריפוגה את הצינור ב-300 פעמים G למשך חמש דקות בארבע מעלות צלזיוס כדי לגלול את התאים.

כדי להכין את התאים למיון תאים חיים על ידי FACS, הכינו את מאגר הצביעה על ידי הוספת חמישה מיליליטר FBS ו-50 מיקרוליטר מעכב ROCK ל-45 מיליליטר PBS על קרח. הסר את הסופרנטנט מהתאים הגלולים והשהה אותם מחדש ב-1.2 מיליליטר של מאגר מכתים. העבירו 200 מיקרוליטר מהתאים התלויים לצינור צנטריפוגה חדש מקורר מראש של 50 מיליליטר על קרח.

לאחר מכן, העבירו את המיליליטר הנותר של תרחיף התא לצינור צנטריפוגה חדש של 50 מיליליטר מקורר מראש על קרח והוסיפו שני מיקרוליטרים של SIRP alpha-PE/Cy7 וארבעה מיקרוליטרים של נוגדנים CD90-FITC. מערבבים בעדינות את מתלה התא עם פיפטת העברה ומניחים את הצינור על קרח. דגרו את שני הצינורות של 50 מיליליטר המכילים את הבקרה השלילית ואת הדגימה על שייקר נדנדה על קרח בארבע מעלות צלזיוס למשך שעה.

בזמן הדגירה, העבירו שלושה מיליליטר של מדיום התמיינות שניים לכל אחד משני צינורות צנטריפוגה של 15 מיליליטר. לאחר מכן הוסף שלושה מיקרוליטרים של מעכב ROCK, ואחסן את צינורות איסוף ה-FACS הללו על קרח לפני השימוש. לאחר מכן, גלולה את התאים המוכתמים ב -300 פעמים G למשך חמש דקות בארבע מעלות צלזיוס.

ושטפו אותם פעמיים עם 10 מיליליטר PBS קר כקרח. השעו בעדינות את גלולת הדגימה עם מיליליטר אחד עד שלושה מיליליטר של מאגר צביעה המכיל DAPI. הוסף 500 מיקרוליטר של מאגר מכתים ללא DAPI לגלולת הבקרה השלילית.

סנן את שני תרחיפי התאים דרך מסננת תאים של 40 מיקרון כדי להסיר גושי תאים, ולאחר מכן העבר אותם לצינורות FACS מפוליסטירן על קרח. הביאו מיד את הדגימות לממיין התאים. החל ממדגם בקרת הצביעה השלילית, קבע את פרמטרי השער.

לאחר מכן, בעת הפעלת תאי המדגם, בחר עבור אוכלוסיית התאים החיים השליליים של DAPI. אסוף גם את אוכלוסיית התאים החיוביים ל-FITC וגם את אוכלוסיית התאים החיוביים ל-PE/Cy7 באופן עצמאי ב-20 PSI. לאחר תרבית וצבירה מחדש של תאים, כפי שמצוין בפרוטוקול הטקסט, הסר את לוחות תרבית התאים מהחממה והעביר את המדיום לצינור צנטריפוגה של 50 מיליליטר.

שוטפים את הצלחות עם שלושה מיליליטר PBS ומעבירים את הכביסה לאותו צינור צנטריפוגה של 50 מיליליטר. לאחר מכן הוסיפו לצלחות שלושה מיליליטר של 0.04% טריפסין-EDTA ודגרו ב-37 מעלות צלזיוס ו-5% CO2. לאחר חמש דקות, בדוק את הלוחות לניתוק תאים באמצעות מיקרוסקופ.

לאחר שכל התאים התנתקו, הוסף שלושה מיליליטר של תמיסת נטרול טריפסין לצלחות. מערבבים בעדינות ומעבירים את התאים לצינור הצנטריפוגה המקורי של 50 מיליליטר. שוטפים את הצלחות עם חמישה מיליליטר PBS ומוסיפים את הכביסה הזו גם לצינור.

גלולה את התאים על ידי צנטריפוגה ב -300 פעמים G למשך חמש דקות בטמפרטורת החדר. הסר את הסופרנטנט והשהה מחדש את הגלולה במיליליטר אחד של סרום בקר יילודים, או מדיום NBS. לאחר מכן, העבירו את התאים לצינור מיקרו-צנטריפוגה בנפח 1.5 מיליליטר.

גלולה את התאים ב -300 פעמים G למשך חמש דקות בטמפרטורת החדר והסר את הסופרנטנט. כדי להתחיל לייצר את שש רקמות הלב המהונדסות, יש לדלל 60.0 מיקרוליטר מתוך חמשת המיליגרם למיליליטר מלאי קולגן ל-3.125 מיליגרם למיליליטר עם 1.5 מיקרוליטר של נתרן הידרוקסיד מולארי אחד, 9.6 מיקרוליטר של 10X PBS ו-24.9 מיקרוליטר של מים סטריליים טהורים במיוחד. כאן, חשוב להימנע מהכנסת בועות אוויר לתערובת הקולגן מכיוון שבועות האוויר משתחררות לאט מהתמיסה הצמיגה ועלולות להפריע להיווצרות הרקמות במהלך דחיסת הרקמות.

פיפטה במורד הצינור של 15 מיליליטר כדי להוסיף 12.0 מיקרוליטר כל אחד של 10X MEM ו-0.2 ערימות רגילות ב-pH 9 כדי לדלל את תערובת הקולגן. לאחר מכן מוסיפים את מטריצת קרום המרתף לתערובת הקולגן לריכוז סופי של 0.9 מיליגרם למיליליטר ומערבבים בעדינות. אחסן את תערובת הטישו הסופית הזו על קרח.

לאחר מכן, העבירו את כל תערובת הרקמות לכדור התא והוסיפו תאים משלימים כפי שמצוין בפרוטוקול הטקסט. מלאו את הצינור לנפח סופי של 150 מיקרוליטר במדיית NBS נטולת תאים וערבבו בעדינות. פיפטה בזהירות 25 מיקרוליטר מתרחיף התא לכל אחת משש הבארות בלוחית הבסיס של הביוריאקטור.

חזור על הליך הערבוב בין כל באר כדי להשעות מחדש את כל התאים שאולי שקעו. פיפטה רקמה אחת בלבד לכל באר בכל פעם כדי להבטיח נפח ומספר תאים עקביים לכל רקמה. בנפרד, דחוף שתי שורות של פולידימתילסילוקסן, או PDMS, דחף חיישנים משני צידי מסגרת הפוליסולפון ליצירת שישה זוגות של עמודים מנוגדים.

הפוך את המסגרת על גבי לוחית הבסיס כך שזוג עמודים אחד ייכנס לכל באר המכילה את מתלה התא. לאחר מכן מניחים את הביוריאקטור בצלחת של 60 מילימטר ומניחים את המנה ללא הכיסוי שלה בתוך צלחת של 10 סנטימטרים. הנח את המכסה על צלחת 10 סנטימטר והעביר את כל מכלול הביוריאקטור לתוך חממת תרבית הרקמות.

לאחר שעתיים של דגירה, הסר את מכלול הביוריאקטור והוסף 14 מיליליטר של מדיום NBS כדי לכסות את לוחית הבסיס. החזר את הביוריאקטור לחממת תרבית התאים והחלף מחצית מהמדיום מדי יום. לאחר 48 שעות, הסר את לוחית הבסיס בעדינות כמה מילימטרים בכל פעם.

לאחר מכן החזר את הביוריאקטור כשהרקמה פונה כלפי מטה אל המדיום. אם רקמה נופלת מעמוד בעת הסרת לוחית הבסיס, חבר מחדש בעדינות את הרקמה לעמוד. התמיינות של תאי גזע עובריים אנושיים מביאה לתרבית מעורבת של בעיקר קרדיומיוציטים ופיברובלסטים המתארגנים בעצמם לאשכולות ויוצרים קורים פועמים חזקים בכל הצלחת.

מיון FACS של תרביות אלה גילה כי שיטת התמיינות זו מביאה לאוכלוסייה המכילה לפחות 65% תאי SIRP אלפא חיוביים ו-10% תאים חיוביים CD90. לאחר הסרת לוחית הבסיס, רקמות הלב המהונדסות באדם, או HECTs, מורשות להרכיב את עצמן בתוך הביוריאקטור. HECTs בוגרים ודחוסים מסיטים באופן גלוי את עמדות חישת הכוח המשולבות עם ממוצע של חמישה עד 15 מיקרו-ניוטון של כוח.

מדידות כוח עווית חושפות כיצד משתנים מבודדים משנים את כוח ההתכווצות ברקמות המהונדסות המוגדרות הללו. כאן, כאשר הרקמות מתווספות ל-10% תאי גזע מזנכימליים אנושיים, נצפה שיפור משמעותי בכוח ההתכווצות הן בתדרי הקצב של הרץ אחד והן בתדר של שני הרץ. לאחר השליטה, ההתמיינות תארך כ-20 יום, מיון התאים כחמש שעות ובניית הרקמה כשלוש שעות.

יידרשו שבעה ימים נוספים להיווצרות רקמה תקינה לאחר הבנייה. בעקבות הליך זה, ניתן לבצע שיטות אחרות, כולל תיוג תאים והשלמה של תערובת הרקמות, על מנת לענות על שאלות נוספות הנוגעות להשפעות של אינטראקציות תא-תא ספציפיות או לקבוע את מנגנוני הטיפול התאי. לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד ליצור רקמות לב מהונדסות אנושיות עם הרכב תאי ידוע ומבוקר.

Explore More Videos

Bioengineering גיליון 109 טיפול בתאים הנדסת רקמות תאי גזע פלוריפוטנטיים אדם נגזר myocytes לב תאי גזע mesenchymal תאי סטרומה mesenchymal Bioengineering microenvironment הסלולר לב וכלי דם SIRPA CD90

Related Videos

דור של רקמות שריר לב פונקציונליות מזדהות באמצעות הדפסת microcontact

11:09

דור של רקמות שריר לב פונקציונליות מזדהות באמצעות הדפסת microcontact

Related Videos

11.4K Views

ניתוח התכווצות האוטומטי של רקמת לב Engineered האנוש להקרנת בטיחות תרופת לב

10:39

ניתוח התכווצות האוטומטי של רקמת לב Engineered האנוש להקרנת בטיחות תרופת לב

Related Videos

13.2K Views

שיטה המבוססת על עובש נטו הבריאה ברקמת הלב לגרדום ללא תלת מימדי

06:57

שיטה המבוססת על עובש נטו הבריאה ברקמת הלב לגרדום ללא תלת מימדי

Related Videos

9.2K Views

מיפוי אופטי של הערכת החשמל לניתוחי לב באמצעות מתח כפול וסידן

09:35

מיפוי אופטי של הערכת החשמל לניתוחי לב באמצעות מתח כפול וסידן

Related Videos

10.4K Views

הכנת רקמות לב מהונדסות בצורת רשת נגזר תאי iPS אנושיים לתיקון שריר הלב Vivo

05:05

הכנת רקמות לב מהונדסות בצורת רשת נגזר תאי iPS אנושיים לתיקון שריר הלב Vivo

Related Videos

5.8K Views

ייצור מערכי מיקרוטיסו לב תלת-ממדיים באמצעות קרדיומיוציטים אנושיים שמקורם ב-IPSC, פיברובלסטים לבביים ותאי אנדותל

10:37

ייצור מערכי מיקרוטיסו לב תלת-ממדיים באמצעות קרדיומיוציטים אנושיים שמקורם ב-IPSC, פיברובלסטים לבביים ותאי אנדותל

Related Videos

7K Views

ספרואידים לב כמו במבחנה ביו מהונדסת רקמות לב לחקור פתופיזיולוגיה לב אנושי

10:41

ספרואידים לב כמו במבחנה ביו מהונדסת רקמות לב לחקור פתופיזיולוגיה לב אנושי

Related Videos

8K Views

פיתוח רקמת לב אנושית מאורגנת תלת מימדית בתוך פלטפורמה מיקרופלואידית

10:42

פיתוח רקמת לב אנושית מאורגנת תלת מימדית בתוך פלטפורמה מיקרופלואידית

Related Videos

5.3K Views

ייצור, סינון בתפוקה גבוהה וביו-בנקאות של ספרואידים לבביים פלוריפוטנטיים שמקורם בתאי גזע המושרים על ידי בני אדם

09:23

ייצור, סינון בתפוקה גבוהה וביו-בנקאות של ספרואידים לבביים פלוריפוטנטיים שמקורם בתאי גזע המושרים על ידי בני אדם

Related Videos

4.5K Views

תכנון ביוריאקטור לשיפור איסוף הנתונים והפקת מודלים של רקמות לב מהונדסות

12:28

תכנון ביוריאקטור לשיפור איסוף הנתונים והפקת מודלים של רקמות לב מהונדסות

Related Videos

2.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code