14 במאי 2017
מאמר זה מציג עבודה תוכן גבוהה מיקרוסקופ לכימות בו זמנית של רמות ROS תאיים, כמו גם פוטנציאל הממברנה המיטוכונדריה ומורפולוגיה - המכונים במשותף כמו morphofunction המיטוכונדריה - בתאים חסיד חיים באמצעות מולקולרית פלואורסצנטי חוברת מולקולות כתב 5- (ו - 6) -כלורומיליל -2 ', 7'-dichlorodihydrofluorescein diacetate, אסתר אצטיל (CM-H 2 DCFDA) ו tetramethylrhodamine methylester (TMRM).
המטרה הכללית של שיטה זו, המבוססת על מיקרוסקופיה בעלת תוכן גבוה (high-content microscopy), היא לכמת בו-זמנית את המורפופונקציה המיטוכונדריאלית ואת הרמות התאיות של רדיקלים חופשיים של חמצן (reactive oxygen species), כדי לבסס טביעת אצבע רדוקסית (redox fingerprint) חזקה עבור שורות תאים החשופות להפרעות ניסיוניות שונות. שיטה זו יכולה לסייע במענה על שאלות מפתח בביולוגיה של רדוקס, כגון האם מצבים פתוגניים או טיפולים בתרכובות מעוררים עקה חמצונית, ובאיזו מידה המבנה והתפקוד המיטוכונדריאליים מושפעים מכך. היתרון המרכזי של טכניקה זו הוא שניתן למדוד את כל הפרמטרים בתוך אותו התא ובאותו זמן.
כדי להתחיל את הפרוצדורה, זרעו 8,000 עד 10,000 פיברובלסטים של עור אנושי ב-60 בארות פנימיות של פלטת 96 בארות שחורה בעלת תחתית דקה ורציפה מפוליסטירן או זכוכית. בעת שימוש בתנאים, טיפולים או קווי תאים שונים, פזרו את מיקומי הזריעה שלהם באופן הומוגני על הפלטה כדי למזער את השפעות הפלטה. לאחר מכן, זרעו 8,000 עד 10,000 תאים נוספים בבאר B01 לשימוש לצורך כיוון פוקוס.
בשלב הבא, מלאו את הבארים החיצוניות הריקות במצע כדי למזער את המדרגות שבין הבארים לסביבה. הקישו בעדינות על הפלטה שלוש פעמים לפני החזרתה לדגירה כדי למנוע מהתארגנות התאים בכתמים. גדלו את התאים למשך 24 שעות, או עד שיגיעו ל-70%confluency.
לאחר מכן, שמרו את פרטי הטיפול עבור הניסוי בגיליון אלקטרוני בשם setup. כדי להגדיר את המיקרוסקופ, כוילו תחילה את במת ה-XY באמצעות התוכנה. לאחר מכן, צרו פרוטוקול דימיג עבור פלטה רב-בארים באמצעות תוכנת הרכישה.
פרוטוקול זה מאפשר רכישה אוטומטית של מיקומים מוגדרים ובארות נבחרות בלוח של 96 בארות. כעת, בחרו את הסוג המתאים של לוח הרב-בארות מרשימת הלוחות הזמינים המסופקת בתוכנה. לחלופין, הגדירו את פורמט לוח הרב-בארות באמצעות מידות הלוח והבארות.
לאחר מכן, יישרו את פלטת הבארות על ידי הגדרת שתי פינות מתוך ארבע הבארות שבפינות החיצוניות. לאחר מכן, בחרו את הבארות שיש לרכוש מהן נתונים, והגדירו פרוטוקול רכישה המורכב מרכישת אורכי גל רצופים. ודאו שערוץ ה-GFP מוגדר ראשון.
לאחר מכן, הגדירו לולאת פלטת בארות (well plate loop) כדי לרכוש ארבע תמונות ללא חפיפה, במרווחי זמן קבועים, הממוקמות מסביב למרכזו של כל באר שנבחרה, תוך שימוש בפרוטוקול הרכישה שהוגדר. בשלב זה, הכינו את תמיסת הצביעה עבור 60 בארות על ידי הוספת תמיסות מלאי של CM-H2DCFDA ו-TMRM לתמיסת HBSS HEPES buffer. לאחר מכן, השליכו את מצע התרבית מהתאים על ידי הפיכת הפלטה למצב הפוך בתנועה אחת רציפה.
שטפו בעדינות את התאים פעמיים עם באפר HH. אל תשכחו את באר A01 עם התאים ששימשו לכוונון המיקוד. השליכו את באפר HH בין שלבי השטיפה.
לאחר מכן, טענו את התאים ב-CM-H2DCFDA וב-TMRM על ידי הוספת 100 microliters של תמיסת הצביעה לכל באר. שוב, אל תשכחו את באר A01. דגרו את התאים למשך 25 דקות בחשכה בטמפרטורת החדר.
לאחר 25 דקות, שטפו את התאים פעמיים עם 100 µL של HH buffer והוסיפו 100 µL של HH buffer לכל 60 הבארים הפנימיים. כדי לבצע את המדידה בפועל, התקינו את הפלטה במיקרוסקופ. לאחר מכן, הפעילו את מערכת המיקוד האוטומטי (autofocus) מבוססת החומרה וכווננו את ה-autofocus offset באמצעות באר B01 וערוץ ה-TMRM עד לקבלת תמונה חדה.
לאחר מכן, הרץ את פרוטוקול הדימיון. מערך נתוני הדימיון שיתקבל יספק מידע על רמות ROS בסיסיות, פוטנציאל ממבנית המיטוכונדריה ומורפולוגיה מיטוכונדריאלית. כעת, כדי למדוד את רמות ה-ROS המושרות, הוצא בזהירות את פלטת 96 הבארים מהמיקרוסקופ.
הוסיפו 100 µL של תמיסת TBHP בריכוז 40 µM לכל באר והמתינו לפחות שלוש דקות כדי לאפשר תגובה מלאה של ה-TBHP עם ה-CM-H2DCFDA. במהלך זמן זה, הוסיפו 100 µL של תמיסת העבודה של הנוגדן לבאר A01. כעת, החזירו את הפלטה למיקרוסקופ ובדקו שוב את המיקוד באמצעות באר B01.
לאחר מכן, רכשו את אותן העמדות כפי שבוצע בסבב הדמיון הראשון תוך שימוש באותו פרוטוקול דמיון. מערך נתוני התמונות המתקבל יספק מידע על רמות ה-ROS שהשראו. לאחר מכן, רכשו תמונות שדה שטוח (flat field) בבאר A01.
יש לוודא שהאותות נמצאים היטב בתוך הטווח הדינמי, על ידי התאמת הגדרות הרכישה. לאחר מכן, יש לייצא את מערכי הנתונים שנרכשו לתיקייה אחת כקבצי TIFF נפרדים, תוך שימוש בנומנקלטורה סטנדרטית.
זה כולל התייחסות לפלטה, לפני או אחרי טיפול ב-TBHP, באר, שדה וערוץ המופרדים על ידי קווים תחתונים. כמו כן, שמרו את תמונות השדה השטוח (flat field) באותה תיקייה כקבצי TIFF בודדים תוך שימוש במינוח הסטנדרטי. בשלב זה, פתחו את התוכנה לעיבוד תמונות והתקינו את סט המאקרו למדדי חמצון-חיזור (redox metrics).
לאחר מכן, פתחו את ממשק ההגדרה כדי לקבוע את הגדרות הניתוח על ידי לחיצה על כפתור ה-S. בחרו את סוג התמונה, מספר הערוצים ואת הבאר ששימשה לרכישת תמונות השטח השטוח (flat field). לאחר מכן, ציינו באיזה ערוץ נמצאים התאים או המיטוכונדריה.
סמנו את תיבות הסימון של background ו-enhance כדי לבצע הפחתת רקע והשוואת היסטוגרמה אדפטיבית מוגבלת ניגודיות (CLAHE), בהתאמה. לאחר מכן, הגדירו sigma עבור טשטוש גאוסיאני של התאים והגברה לפלאסיינית של המיטוכונדריה. בחרו אלגוריתם לסף אוטומטי ומלאו את גבולות הדירוג לפי גודל (size exclusion limits).
לאחר מכן, יש לבחון את הגדרות הסגמנטציה על מספר תמונות נבחרות מתוך מערכי הנתונים שנרכשו, על ידי פתיחת התמונות ולחיצה על כפתורי C או M בתפריט עבור סגמנטציה של תאים או מיטוכונדריה, בהתאמה. לאחר מכן, בצעו ניתוח אצומה (batch analysis) על התיקייה הרלוונטית על ידי לחיצה על כפתור הסולמית ובחירת התיקייה המכילה את התמונות. ודאו את ההגדרות ולחצו על אישור.
לאחר ניתוח הסדרה, ודאו ויזואלית את ביצועי הסגמנטציה בערימה של אימות על ידי לחיצה על כפתור V ובחירת התיקייה עם התמונות. עברו על ערימת האימות כדי לאשר אם הסגמנטציה הצליחה. ניתוח ראשוני של הנתונים שחולצו מבוצע באופן אוטומטי באמצעות אפליקציית Shiny נלווית.
דבר זה מאפשר פרשנות מהירה של התוצאות. כדי להתחיל, פתחו את האפליקציה ב-R Studio. בחרו להריץ אותה בדפדפן חיצוני.
בעמוד הקלט, בחר את הספריה שבה נמצאים קבצי התוצאות. ודא שקובץ ההגדרות נמצא גם הוא בספריה זו. קבצי התוצאות ומידע ההגדרות מיובאים, מקומפלים ומוצגים באופן ויזואלי באופן אוטומטי.
דף הגדרת הניסוי מציג את פריסת הניסוי. הדף הבא מציג את רמות ה-ROS וכן מספר פרמטרים מיטוכונדריאליים עבור כל פלטה בנפרד. בחרו את הפלטה שברצונכם להציג באמצעות התפריט הנפתח.
הנתונים מוצגים בפורמט של פלטת בארות רב-בארית, וכן בתרשימי קופסה (box plots) שבהם נקודות חריגות מסומנות באמצעות מספר הבאר ומספר התמונה. דף תוצאות הניסוי המלא מציג את התוצאות הנורמליזציה מכל הפלטות המשולבות, יחד עם ניתוח סטטיסטי בסיסי. אם סופק קובץ השמטות (drop file) דרך דף הקלט, נקודות הנתונים שצוינו יוחרגו.
בדף ניתוח האשכולות (cluster analysis), נוצר פרופיל רדוקס רגיש באמצעות רכיב עיקרי וניתוח של נתונים מחמישה פרמטרים. לבסוף, דף הורדת הנתונים מאפשר שמירה של הנתונים המעובדים והמסודרים לשימוש עתידי. מוצגים כאן תוצאות מניסוי שבו פיברובלסטים עוריים אנושיים טופלו במעכב הפרוטאז של HIV, Saquinavir.
בשימוש בפרוטוקול המתואר, זוהתה עלייה משמעותית הן ברמות ה-ROS הבסיסיות והן ברמות ה-ROS המושרות, בהשוואה לתאי הבקרה שטופלו ב-DMSO. Saquinavir השפיע באופן משמעותי גם על המורפופונקציה המיטוכונדריאלית.
פוטנציאל ממברנת המיטוכונדריה, שנמדד כאות TMRM ממוצע לכל פיקסל מיטוכונדריאלי, עלה באופן משמעותי. בנוסף, המיטוכונדריה אימצו תבנית שבורה (fragmented) מאוד, שהתבטאה כמותית בעגוליות גבוהה יותר ובגודל ממוצע קטן יותר של מיטוכונדריה בודדות. כאשר שילבו את הפרמטרים שהוזכרו לעיל באמצעות ניתוח רכיבים ראשיים (principal component analysis), ניתן היה להבחין בבירור בין תנאי הבקרה לתנאי ה-Saquinavir על סמך טביעות האצבע החמצוניות-חיצוניות (redox fingerprints) שלהם.
בעת ביצוע פרוצדורה זו, חשוב לזכור שההארה עצמה גורמת לעקה חמצונית. לפיכך, יש למזער את תנאי החשיפה ולשמור אותם קבועים לאורך כל הניסוי. לאחר רכישת המיומנות, ניתן לצבוע ולדגום עד 20 פלטות של 96 בארות ביום אחד.
בעקבות סבב הדימוג השני, ניתן לקבע את התאים ולהשתמש בהם לצביעה אימונופלואורסצנטית בהמשך. דבר זה מגדיל את מספר הפרמטרים הנמדדים באותם תאים בדיוק, ומאפשר להשיב על שאלות נוספות. לאחר צפייה בסרטון זה, אתם אמורים להיות מסוגלים לבצע מדידות משולבות של ROS ותפקוד-מורפולוגיה מיטוכונדריאלית בתרביות תאים נצמדות באמצעות מיקרוסקופיה בעלת תוכן גבוה (high-content microscopy).
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מציג תהליך עבודה של מיקרוסקופיה בעלת תוכן גבוה (high-content microscopy) לכימות סימולטני של רמות ROS תוך-תאיות ותפקוד מורפולוגי של מיטוכונדריה בתאים דבקים חיים. השיטה משתמשת במולקולות דשיישות פלואורסצנטיות חודרות תאים כדי להשיג זאת.
שיטה זו של מיקרוסקופיה בעלת תוכן גבוה (high-content microscopy) מאפשרת כימות סימולטני של רמות ROS תוך-תאיים ושל המורפופונקציה המיטוכונדריאלית, ובכך מספקת "טביעת אצבע" רדוקסית חסונה להערכת בריאות התא. על ידי מדידת פרמטרים מרובים בתוך אותו תא, השיטה מגבירה את הביטחון החזוי בתיקוף מטרות ובצמצום סיכונים מכניסטיים במהלך שלבי הגילוי המוקדמים. גישה זו תומכת בקבלת החלטות go/no-go מבוססות נתונים, על ידי קישור תגובות למעקה חמצוני לתפקוד מיטוכונדריאלי במערכות הרלוונטיות למחלה.
השיטה משתלבת ברצף הגילוי, החל מבדיקת השערות ועד לזיהוי מובילים (lead identification), ומאפשרת הפחתת סיכונים מכניסטית לפני השקעה בשלב הפרה-קליני על ידי ביסוס קשרים סיבתיים בין מצב החמצון-חיזור (redox state) לבין תפקוד מיטוכונדריאלי.