Waiting
Elaborazione accesso...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Step By Step: Mikrotreningsmetode som kombinerer to nonliving dyremodeller

Published: May 9, 2015 doi: 10.3791/52625

Protocol

1. Forberedelse:

  1. Skaff en tabletop stereo mikroskop, med en variabel 3,5 x 45x zoom, 200 mm arbeidsavstand, 55-75 mm variabel inter-pupillavstandsjustering og tilbehør ledet ring lys. Enhver lignende mikroskop er tilstrekkelig, det kan settes opp på et lite bord og er ikke ekstremt dyrt.
  2. Samle og forberede et sett med mikrokirurgiske instrumenter med to mikro pickups, en dissekere sakse, og en nål-driver; Dette er minstekravet, må det tas hensyn til at dette er praksis instrumenter, og high end kvalitet instrumenter er ikke nødvendig.
  3. Bruk 9/0 monofilament mikro-sutur for alle praksis. Kjøp kommersielt tilgjengelig kyllinglår eller vinger og mat fargestoff på det lokale supermarkedet.
  4. A 20 G angio-kateter anvendes for åpenheten tester på kylling lårarteriene. For brachialis arteriene en tynnere 27 G kateter er nødvendig. Disse kan bli kjøpt over internett på en lokal Pharmacy ellermed instrumentene satt. Kjøp en kommersielt tilgjengelig sprøyte for å injisere mat fargestoff.

2. Makroskopiske disseksjon teknikker:

  1. Tilnærmingen til de femoral fartøyene er grei. For kylling lår, utføre en stump disseksjon teknikk nettopp medial til femoral akselen, skille lårmuskelen fra benet og utsett lårarterie, vene og nerve. Nerve kan videre deles opp i to separate bunter for forskjellige typer av nervereparasjon praksis.
  2. For å få tilgang til kylling brakialarterie i kylling vingene, langsgående snitt i huden i lengderetningen med en saks, fra skulderen opp til spissen av vingen. Observere arterien kjører mellom biceps og triceps brachii.

3. Anbefalt trening diett:

  1. Trening med lårarterie.
    MERK: Det første trinnet i trening diett er å øve med kylling lårarterie.

  1. Plasser stykke under mikroskopet og start mikro disseksjon. Frigjøre lårarterie fra de underliggende vev; og dele den horisontalt. Utfør en adventicectomy. Bruk mikro pickups og mikro-saks til å klippe noen adventitia liggende den arterielle lumen. Skyll de indre lumen med vanlig vann fra springen. Skriv ned starttid
  2. Utfør en ende til ende anastomose.
    1. Begynne på bakveggen av arterien på motsatt side til operatøren. Plasser den første masken; starter på venstre side hvis arbeider horisontalt, på nedsiden hvis arbeider vertikalt. Passere nålen fra utsiden av arterien mot lumen og deretter fra lumen til utsiden av arterien.
    2. Knytte sting, utføre en dobbel knute først, og deretter to enkelt kaster vekslende retninger. Fullføre hele bakveggen med den ovenfor beskrevne teknikk.
    3. Starter på høyre side hvis du jobber horisontalt eller oversiden hvis du er working vertikalt, plassere en enkelt søm fra utsiden til lumen og deretter fra lumen på utsiden. Knytte knute som beskrevet ovenfor. Fullfør frontveggen å gjenta fremgangsmåten beskrevet i 3.1.2.2.
    4. Skriv ned den siste tiden dette vil tillate deg å holde en rekord, slik at du kan styre din progresjon.
      MERK: Forfatterne foretrekker en vei opp teknikk; men alle typer mikro sutur kan øvde. Det anbefales at trainee fullfører rundt 25 mikro anastomoser på denne måten før han kan prøve andre kliniske scenarier. Disse inkluderer vene poding for arterielle hull, ende til ende nerve reparasjoner, og bruken av venen ledninger for behandling av nerve hull. En viktig teknikk i mikrovaskulær kirurgi, som kan læres med denne treningsmetoden er den kontinuerlige eller kjører sutur, for å utføre denne teknikken trainee fortsetter som 3.1.2.1 men Stich er ikke kuttet, fortsette å utføre masker som i 3.1.2.1 uten klippe dem until du fullføre hele sutur og knytte det til den opprinnelige sting på slutten.

  1. Trening med brakialarterien
    1. Plasser stykke under mikroskopet. Fullfør fremgangsmåten som beskrevet ovenfor for den femorale arterie.
      MERK: Den eneste forskjellen er størrelsen. Brakialarterien er mye mindre enn den femorale arterien og anastomosen er betydelig mer utfordrende.
  2. Åpenhets tester
    1. Krysse en jevn 20 eller 27 G angio-kateter gjennom anastomose, for å sjekke om det er hindringer forårsaket av masker suturering begge fartøy vegger sammen.
    2. Anvende en sprøyte med kommersielt fargestoff mat til enden av angio-kateter, og perfuse fargestoff inn i arterien for å teste for lekkasje jet
    3. Åpne arterien i lengderetningen for å visualisere de masker, deres parallellitet og mengden av veggen er tatt.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Forfatterne har chronometered sine tider med den foreliggende treningsmetode og har sett det å redusere de anastomose ganger for en femoral arterie ved slutten av den tredje uken. Eleven kan kontrollere forbedringer på hans teknikk ved å sjekke sin tid, sine åpenhetsgrader prosenter og justeringen av hans masker. Systemet som er beskrevet i dette manuskriptet er vist i figur 1 inneholder den en bordplate mikroskop og et sett med mikrokirurgiske instrumenter. De makroskopiske dissections er vist i figurene 2 og 3. Et eksempel på en lårarterie mikro anastomose er vist i figur 4. Figur 5 viser et brakialarterien mikro anastomose. Figur 6 viser en lårarterie reparasjon med en blodåre pode. Åpenheten testene er vist i figur 7.

Figur 1
Figur 1: korresponding forfatterens egen mikrokirurgisk praksis stasjon. Det inkluderer en tabletop mikroskop og et sett med trening mikro instrumenter. Det kan settes opp på et svært begrenset plass på kontoret eller hjemme.

Figur 2
Figur 2 A: A makroskopisk disseksjon av en kylling lår, kan femoral fartøy og isjiasnerven lett bli utsatt kjører en finger bare medial til lårbensskaftet. Den horisontale pilen angir lårbenshodet. Disseksjon planet er markert ved den vertikale pil bare parallelt med den femorale aksel B: lårarterien (a) vene (v) og isjiasnerven (n) er vist i detalj her.

Figur 3
Figur 3 A og B: A makroskopisk disseksjon av en kylling vinge. Brachialis en rtery går mellom biceps og triceps brachii. Arterien er merket med en pil på begge bildene er det ganske overfladisk og tilnærmingen er enkel; Det kan oppnås med kommersielle koke saks.

Figur 4
Figur 4: Mikroskopisk bilde av en lårarterie ende til ende sutur, var her en vei opp teknikken med enkle masker utført. Enhver annen type sutur kan praktiseres på trainee skjønn.

Figur 5
Figur 5: Slutt å ende sutur av en kylling brakialarterien. Dette arterier er mye mindre enn de femorale seg, og fremgangsmåten er mye mer teknisk krevende.

belastning / 52625 / 52625fig6.jpg "/>
Figur 6: En femoral arterie reparasjoner med en blodåre graft høstet fra lårvenen. Kylling lår modellen er svært allsidig som åpner for ulike typer øvelser.

Figur 7
Figur 7:. Åpenheten tester A: En angio-kateter av riktig diameter er krysset gjennom anastomose for å se etter hindringer forårsaket av masker suturering både av fartøyets vegger B:.. Dye er perfusert gjennom anastomose å teste for lekkasje C : Anastomosen er åpnet i lengderetningen for å visualisere sutur justering.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Stereomicroscope Amscope SM-1BX Microscope
Led light Amscope LED-80S-YA illumination system
Microsurgical instruments set Chen hen microsurgical instruments HC- X803-1 Microsurgical instruments
Microsurgical sutures S/T microsurgical 9/0 Suture Sutures

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Lee, S. Historical events on development of experimental microsurgical organ transplantation. Yonsei Med J. 45 (6), 1115-1120 (2004).
  2. Shurey, S., Akelina, Y., Legagneux, J., Malzone, G., Jiga, L., Ghanem, A. M. The rat model in microsurgery education: classical exercises and new horizons. Arch Plast Surg. 41 (3), 201-208 (2014).
  3. Olabe, J., Olabe, J., Sancho, V. Human cadaveric infusión model for neurosurgical training. Surg Neurol. 72, 700-702 (2009).
  4. Peled, I. J., Kaplan, H. Y., Wexler, M. R. Microsilicone anastomoses. Ann Plast Surg. 10 (4), 331-332 (1983).
  5. Gluer, N. M., Rao, G. S. Canniesburn “ever-ready” model to practise microsurgery. Br J Plast Surg. 43 (3), 381-382 (1990).
  6. Hino, A. Training in microvascular surgery using a Chicken wing artery. Neurosurgery. 52 (6), 1495-1498 (2003).
  7. Marsh, D. J., Norton, S. E., Mok, J., Patel, H. D., Chen, H. C. Microsurgical training the Chicken thigh model. Ann Plast Surg. 59 (3), 355-356 (2007).
  8. Jeong, H. S., Moon, M. S., Kim, H. S., Lee, H. K., Yi, S. Y. Microsurgical training with fresh chicken legs and their histological characteristics. Ann Plast Surg. 70 (1), 57-61 (2013).
  9. Couceiro, J., Ozyurekoglu, T., Sanders, S., Tien, H. Microsurgical training regimen with nonliving chicken models. Microsurgery. 33 (3), 251-252 (2013).
  10. Phoon, A. F., Gumley, G. J., Rtshiladze, M. A. Microsurgical training using a pulsatile membrane pump and chicken thigh: A new, realistic, practical, nonliving educational model. Plast Reconstr Surg. 126 (5), 278e-279e (2010).
  11. Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant. Exp Clin Transplant. 8 (3), 245-249 (2010).

Tags

Tom verdi Mico-kirurgisk opplæring,-levende kylling kostnader tilgjengelig eksperimentell
Step By Step: Mikrotreningsmetode som kombinerer to nonliving dyremodeller
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Couceiro, J., Castro, R., Tien, H.,More

Couceiro, J., Castro, R., Tien, H., Ozyurekoglu, T. Step By Step: Microsurgical training method combining two nonliving animal models. J. Vis. Exp. (99), e52625, doi:10.3791/52625 (2015).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter