Protocol
1. Подготовка:
- Получить настольный стерео микроскоп, с переменной 3,5 х до 45-кратного зума, 200 мм Рабочее расстояние 55 до 75 мм переменная межзрачкового расстояния и аксессуары привело световое кольцо. Любое подобное микроскопа является адекватным, он может быть установлен на столике и не очень дорого.
- Сбор и подготовить набор микрохирургических инструментов с двумя микрохирургических пикапов, одной рассекает ножницами, и одна игла-водителя; это необходимо, как минимум, оно должно быть принято во внимание, что эти инструменты практика, и инструменты качества верхнего сегмента не нужны.
- Используйте 9/0 мононити микро-шов для всех практик. Купить в продаже куриные бедра или крылья и еда краситель в местном супермаркете.
- 20 г ангио катетер используется для проходимости испытаний на куриных бедренных артерий. Для плечевых артерий тоньше 27 G катетер необходимости. Они могут быть приобретены через Интернет в местной аптеке илис инструментами, установленными. Купить в продаже шприц для инъекции продовольственной краситель.
2. Макроскопические методы рассечение:
- Подход к бедренных сосудов проста. Для куриных бедер, выполните тупой метод рассечения просто медиальнее бедренной кости, отделить бедренной мышцы от кости и выставить бедренной артерии, вены и нервы. Нерв может быть дополнительно разбит на два отдельных брошюр для разных видов практик ремонт нерва.
- Для того, чтобы получить доступ к плечевой артерии цыпленка в куриных крылышек, надрезать кожу в продольном направлении с ножницами, от плеча до кончика крыла. Соблюдайте артерии, идущие между двуглавой и трехглавой мышцы плеча.
3. Рекомендуется режим тренировок:
- Обучение с бедренной артерии.
ПРИМЕЧАНИЕ: Первый шаг в тренировочном режиме, чтобы практиковать с курицей бедренной артерии.
- Поместите кусок под микроскопом и начать микрохирургической рассечение. Освободите бедренную артерию от подлежащих тканей; и разделить его по горизонтали. Выполните adventicectomy. Используйте микро-пикапы и микро-ножницы, чтобы обрезать любой adventicia покрывающий просвета артерии. Промыть внутренний просвет при регулярном водопроводной воды. Запишите время начала
- Выполните конца в конец анастомоза.
- Начните на задней стенке артерии на стороне, противоположной от оператора. Поместите первый стежок; начать с левой стороны, если работает в горизонтальном положении на нижней стороне, если работает в вертикальном положении. Pass иглу снаружи артерии к просвету, а затем из просвета к наружной артерии.
- Свяжите стежок, выполнить двойной узел, а затем две односпальные бросает переменных направлений. Заполните всю заднюю стенку с помощью вышеописанной методики.
- Начиная с правой стороны, если вы работаете по горизонтали или по верхней стороне, если вы гореочий вертикально, разместить один стежок снаружи в просвет, а затем из просвета наружу. Связать узел, как описано выше. Заполните переднюю стенку повторяющуюся процедуру, описанную в 3.1.2.2.
- Запишите в последний раз это позволит вам сохранить время записи, так что вы можете контролировать свой прогресс.
ПРИМЕЧАНИЕ: авторы предпочитают технику в одну сторону до; но любого типа микрохирургической шва может быть репетировали. Это рекомендуется, что стажер выполняет около 25 микрохирургических анастомозов таким образом, прежде чем он может попробовать другие клинические сценарии. Они включают в себя вены прививки для артериальных разрывов, конец к концу нервных ремонт и использование вены трубопроводов для лечения нервных пробелов. Важный метод в микрососудистой хирургии, которые могут быть извлечены с помощью этого метода обучения является непрерывным или работает шов, чтобы выполнить эту технику обучаемых переходит в 3.1.2.1, но Стич не вырезать, продолжать выполнять стежки, как в 3.1.2.1, не резки им Until вы завершить весь шов и связать его с оригинальной строчкой в конце.
- Обучение с плечевой артерии
- Поместите кусок под микроскопом. Выполните процедуру, как описано выше для бедренной артерии.
ПРИМЕЧАНИЕ: Единственное различие состоит в размер. Плечевой артерии значительно меньше, чем в бедренную артерию и анастомозы значительно более сложным.
- Поместите кусок под микроскопом. Выполните процедуру, как описано выше для бедренной артерии.
- Проходимость тесты
- Крест плавный 20 или 27 G ангио- катетер через анастомоз, чтобы проверить, нет ли препятствий, вызванных швами с ушиванием и стенки сосудов вместе.
- Применение шприц с коммерческой пищевой краситель в конце ангионевротический катетера, и заливать краску в артерии для проверки утечки реактивного
- Откройте артерии в продольном направлении, чтобы визуализировать стежки, их параллелизм и количество стены приняты.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Авторы chronometered их раз с настоящим способом обучения и видел его значительно сократить время для анастомоза бедренную артерию в конце третьей недели. Стажер может контролировать улучшения в своей технике, проверяя свои времена, его проходимость проценты и выравнивание его стежками. Система, описанная в этой рукописи изображен на рисунке 1 он включает в себя настольный микроскоп и набор микрохирургических инструментов. Макроскопические вскрытия приведены на фигурах 2 и 3. Пример бедренную артерию микрохирургического анастомоза показана на рисунке 4. На фиг.5 показан плечевой артерии микрохирургического анастомоза. На фиг.6 показан ремонт бедренной артерии с шунта. Проходимость испытания показано на рисунке 7.
Рисунок 1: коррesponding собственный микрохирургической практике станцию автора. Она включает в себя настольный микроскоп и набор обучающих микрохирургических инструментов. Он может быть установлен на очень ограниченном пространстве в офисе или дома.
Рисунок 2: макроскопическое вскрытие куриного бедра, бедренных сосудов и седалищного нерва может быть легко подвергаются работает палец просто медиальнее бедренной кости. Горизонтальная стрелка отмечает головки бедренной кости. Рассечение плоскость отмечен вертикальной стрелкой только параллельно бедренной кости B: бедренную артерию (а) вены (v) и седалищный нерв (п) показаны здесь подробно.
Рисунок 3 и Б: макроскопическое вскрытие куриного крыла. Плечевого rtery проходит между двуглавой и трехглавой мышцы плеча. Артерии отмечен стрелкой на обоих фотографиях она является довольно поверхностным и подход прост; это может быть достигнуто с коммерческими ножницами приготовления пищи.
Рисунок 4: Микроскопическое изображение конца бедренной артерии до конца шва, вот один путь методика с одной стежков была выполнена. Любой другой тип шва может быть осуществлено по усмотрению обучаемого.
Рисунок 5: End, чтобы закончить шов курицы плечевой артерии. Это артерии гораздо меньше, чем те, бедренных и процедура намного более технически сложных.
нагрузка / 52625 / 52625fig6.jpg "/>
Рисунок 6: ремонт бедренной артерии с шунта заготовленной от бедренной вены. Куриные бедра модель очень разносторонний позволяет для различных типов практических упражнений.
Рисунок 7:. Проходимость испытания: ангио катетер соответствующего диаметра пересекли анастомоза, чтобы проверить, нет ли препятствий, вызванных stiches ушивание обоих стенках сосуда, В:.. Краска перфузии через анастомоз для проверки утечки С : анастомоза открыт в продольном направлении, чтобы визуализировать выравнивание шва.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Stereomicroscope | Amscope | SM-1BX | Microscope |
| Led light | Amscope | LED-80S-YA | illumination system |
| Microsurgical instruments set | Chen hen microsurgical instruments | HC- X803-1 | Microsurgical instruments |
| Microsurgical sutures | S/T microsurgical | 9/0 Suture | Sutures |
References
- Lee, S. Historical events on development of experimental microsurgical organ transplantation. Yonsei Med J. 45 (6), 1115-1120 (2004).
- Shurey, S., Akelina, Y., Legagneux, J., Malzone, G., Jiga, L., Ghanem, A. M. The rat model in microsurgery education: classical exercises and new horizons. Arch Plast Surg. 41 (3), 201-208 (2014).
- Olabe, J., Olabe, J., Sancho, V. Human cadaveric infusión model for neurosurgical training. Surg Neurol. 72, 700-702 (2009).
- Peled, I. J., Kaplan, H. Y., Wexler, M. R.
- Gluer, N. M., Rao, G. S. Canniesburn “ever-ready” model to practise microsurgery. Br J Plast Surg. 43 (3), 381-382 (1990).
- Hino, A. Training in microvascular surgery using a Chicken wing artery. Neurosurgery. 52 (6), 1495-1498 (2003).
- Marsh, D. J., Norton, S. E., Mok, J., Patel, H. D., Chen, H. C. Microsurgical training the Chicken thigh model. Ann Plast Surg. 59 (3), 355-356 (2007).
- Jeong, H. S., Moon, M. S., Kim, H. S., Lee, H. K., Yi, S. Y. Microsurgical training with fresh chicken legs and their histological characteristics. Ann Plast Surg. 70 (1), 57-61 (2013).
- Couceiro, J., Ozyurekoglu, T., Sanders, S., Tien, H. Microsurgical training regimen with nonliving chicken models. Microsurgery. 33 (3), 251-252 (2013).
- Phoon, A. F., Gumley, G. J., Rtshiladze, M. A. Microsurgical training using a pulsatile membrane pump and chicken thigh: A new, realistic, practical, nonliving educational model. Plast Reconstr Surg. 126 (5), 278e-279e (2010).
- Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant. Exp Clin Transplant. 8 (3), 245-249 (2010).
