Summary
Это простой протокол анализа оболочки листьев ячменя с использованием минимального количества реагентов и обычного лабораторного оборудования (включая базовый смартфон). Цель состоит в том, чтобы визуализировать ранний инфекционный процесс бластной болезни в лабораториях без доступа к передовому микроскопическому оборудованию.
Abstract
Понимание того, как взаимодействуют растения и патогены, и приводит ли это взаимодействие к защите или болезни, необходимо для разработки более сильных и устойчивых стратегий для здоровья растений. Достижения в методах, которые более эффективно визуализируют образцы патогенов растений во время инфекции и колонизации, привели к появлению таких инструментов, как анализ оболочки рисовых листьев, который был полезен для мониторинга инфекции и ранних событий колонизации между рисом и грибковым патогеном Magnaporthe oryzae. Этот полубиотрофный патоген вызывает серьезную потерю болезней у риса и родственных однодольных растений, включая просо, рожь, ячмень и, в последнее время, пшеницу. Анализ оболочки листа при правильном выполнении дает оптически прозрачный срез растения толщиной в несколько слоев, что позволяет исследователям выполнять визуализацию живых клеток во время атаки патогена или генерировать фиксированные образцы, окрашенные по определенным признакам. Детальные клеточные исследования взаимодействия ячменя и M. oryzae отстают от таковых у рисового хозяина, несмотря на растущее значение этого зерна в качестве источника пищи для животных и людей и в качестве ферментированных напитков. Здесь сообщается о разработке анализа оболочки листьев ячменя для сложных исследований взаимодействий M. oryzae в течение первых 48 часов после инокуляции. Проба листового влагалища, независимо от того, какой вид изучается, деликатна; Предоставляется протокол, который охватывает все, от условий роста ячменя и получения листовой оболочки до инокуляции, инкубации и визуализации патогена на листьях растений. Этот протокол может быть оптимизирован для высокопроизводительного скрининга с использованием чего-то столь же простого, как смартфон для целей визуализации.
Introduction
Magnaporthe oryzae, рисовый гриб, поражает ряд зерновых культур, включая ячмень, пшеницу и рис1. Этот патоген вызывает разрушительные болезни и представляет угрозу для этих ценных культур во всем мире, вызывая полную потерю урожая, если его не контролировать. Многие лаборатории по всему миру уделяют особое внимание болезни риса из-за ее глобальной угрозы и ее свойств в качестве отличной модели взаимодействия растений и грибов2. Он был полностью секвенирован, и генетика его инфекционного цикла, особенно ранних событий, была установлена 3,4. Жизненный цикл начинается с того, что споры прорастают на поверхности листа, образуя специализированную структуру проникновения, называемую аппрессориумом. Аппрессориум проникает в ткани листа, и инфекция продолжается с развитием поражений, которые запускают процесс спороношения и распространяют болезнь4. Предотвращение любого из этих ранних событий резко подавило бы эту разрушительную болезнь. Следовательно, большинство современных исследований бластной болезни было сосредоточено на ранних стадиях инфекции, от проросших конидий, образующих аппрессорий, до развития инвазивных гиф и биотрофного межфазного комплекса (BIC)5.
Огромное количество исследований бластной болезни было проведено на рисе, несмотря на то, что M. oryzae является важным патогеном для различных сельскохозяйственных культур, а недавно выведенные штаммы становятся глобальной угрозой для пшеницы6. В то время как рис является одной из трех основных сельскохозяйственных культур, используемых для кормления населения, наряду с пшеницей и кукурузой, ячмень является четвертым зерновым зерном с точки зрения производства кормов для скота и пива7. По мере роста индустрии крафтового пива растет и экономическая ценность ячменя. Существуют явные преимущества использования M. oryzae и ячменя в качестве патосистемы для изучения бластной болезни. Во-первых, существуют штаммы M. oryzae , которые заражают только ячмень, а также штаммы, которые могут заражать несколько видов трав. Например, 4091-5-8 заражает в первую очередь только ячмень, в то время как Guy11 и 70-15 могут заражать как ячмень, так и рис8. Эти штаммы генетически схожи, и процесс заражения сопоставим9. Во-вторых, в стандартных лабораторных и тепличных условиях ячмень легче выращивать, так как он не предъявляет сложных требований к рису (лаконичный контроль температуры, высокая влажность, специфические световые спектры). Существуют также проблемы с визуализацией риса из-за гидрофобности поверхности листа, которую ячмень не проявляет10.
Этот протокол представляет собой простой метод выделения и эффективного использования оболочек листьев ячменя для микроскопического анализа нескольких стадий инфекции с использованием обычных лабораторных принадлежностей и смартфона для сбора данных. Этот метод анализа оболочки листьев ячменя можно адаптировать для лабораторий по всему миру, поскольку он требует минимальных поставок, но при этом дает четкую картину микроскопического взаимодействия между патогеном и первыми несколькими клетками, которые он заражает. В то время как анализы патогенности, такие как инокуляция спреем или каплями, могут обеспечить макропредставление о способности патогена образовывать поражения, этот анализ позволяет исследователю визуализировать конкретные этапы ранней инфекции, от событий до проникновения до колонизации клеток эпидермиса. Кроме того, исследователи могут легко сравнить инфекцию грибком дикого типа с инфекцией мутантом с пониженной вирулентностью.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Подготовка экспериментальных материалов
- Приготовьте овсяный агар (ОМА), смешав овсянку до получения мелкого порошка. Добавьте 25 г овсяного порошка и 15 г агара к 500 мл ddH2O и автоклавируйте в цикле среды (в качестве альтернативы доведите до кипения в течение 20 минут). Разлейте среду в стерильные чашки Петри диаметром 60 мм.
ПРИМЕЧАНИЕ: Другие типы сред, вызывающие споруляцию, такие как агар V8, приемлемы для этого протокола. - Пластинчатый фильтр M. oryzae наносится непосредственно на пластины OMA с помощью стерильных щипцов и позволяет им покрыть всю пластину (9-12 дней). Поместите пластины в инкубатор для роста при температуре 25 ° C с 12:12 ч дневные: ночные циклы, чтобы помочь вызвать спороношение.
ПРИМЕЧАНИЕ: Некоторые мутанты растут медленнее и требуют дополнительного ухода (например, сначала полного носителя, а затем переноса в ОМА), и может потребоваться дополнительная неделя, чтобы произвести достаточное количество конидий. - Непосредственно сажайте семена ячменя (Hordeum vulgare Lacey) во влажную питательную среду (например, беспочвенную горшечную среду) с 10-15 семенами в 6-дюймовом горшке. Поместите горшки в лотки с 1-2 дюймами воды.
- Установите условия в камере выращивания ячменя 22 °C в течение 12 ч (дневной свет) и 19 °C в течение 12 ч (темно) при относительной влажности 60%. Продолжайте поливать снизу, чтобы не потревожить семена.
- Выращивают ячмень до стадии второго листа, примерно в течение 14 дней. С помощью стерильных ножниц срежьте растение ячменя чуть выше линии почвы. С помощью щипцов и бритвы/скальпеля аккуратно разрежьте продольную оболочку первого листа и с помощью щипцов снимите его с основания второго листа.
ПРИМЕЧАНИЕ: Очистите инструменты (щипцы, скальпель и т. Д.) Перед использованием 75% -80% этанола. Оболочка представляет собой тонкий слой эпидермиса, обеспечивающий прикрепление от первого к второму листу (от второго к третьему листу и т. д.; см. рис. 1). - Поместите первый лист в стерильную чашку Петри диаметром 60 мм, содержащую влажное бумажное полотенце для поддержания влажности внутри тарелки. Используя скальпель, отрежьте большую часть первого листа от оболочки, оставив только 0,5 дюйма ткани листа для крепления.
- Приклейте листовую ткань ко дну пластины Петри.
ПРИМЕЧАНИЕ: Оболочка скручивается, но это приемлемо, так как скрученная оболочка легче удерживает конидиальную капельку. - Соберите 9-12-дневные планшеты M. oryzae и добавьте в них 0,5-2 мл стерильной воды. Используя стерильную петлю для инокуляции, аккуратно соскребите мицелий, чтобы освободить прикрепленные конидии. Осторожно поместите конидиальную суспензию пипеткой в микроцентрифужную пробирку, содержащую небольшой кусочек марли, чтобы отфильтровать любые крупные кусочки мицелия из конидиальной суспензии.
ПРИМЕЧАНИЕ: Споры могут быть собраны уже через 7 дней, если рост и спороношение достаточны для достижения желаемой концентрации спор. Сбор может быть отложен не более чем на 14 дней, если вы работаете с медленно растущим генетическим мутантом - Желаемая концентрация спор составляет 5 х 10 4 спор на мл, но диапазон (1 х 10 4-1 х 10 5) является приемлемым. Слишком высокая концентрация затрудняет визуализацию отдельных очагов инфекции; При необходимости разбавьте концентрацию спор стерильной водой.
- Аккуратно пипеткой наложите конидиальную суспензию внутрь свернутой листовой оболочки. Начните с 25 мкл (размер капель может быть увеличен в зависимости от размера оболочки, до 50 мкл).
ПРИМЕЧАНИЕ: Рекомендуется выполнить от трех до пяти повторений каждого мутантного штамма или линии ячменя. В процессе окрашивания часто возникают повреждения, поэтому рекомендуется использовать дополнительные реплики оболочки. - Наполните четыре или пять стаканов объемом 500 мл ddH2O и нагрейте до приготовления на пару (с помощью микроволновой печи или плиты). Будьте осторожны при перемещении стаканов с горячей водой. Держите крышку чашки Петри над одним из дымящихся стаканов, чтобы улавливать влагу внутри тарелки.
- Сложите зараженные пластины листовой оболочки и окружите их оставшимися горячими мензурками. Это создает влажную, влажную среду, необходимую для прорастания спор.
ПРИМЕЧАНИЕ: Будьте осторожны при пропаривании крышек, чтобы горячая вода или пар не касались ножен. - Защитите оболочки листьев от света, накройте однотонной (предпочтительно черной) резиновой или пластиковой коробкой и оставьте на 48 часов или желаемый момент времени для получения изображения.
ПРИМЕЧАНИЕ: Картонная коробка не подходит, потому что она не удерживает влагу / влажность и поглощает пар из стаканов с горячей водой. Запирающаяся пластиковая ванна хорошо справляется с удержанием влажности, и ее можно накрыть черной тканью или большим темным контейнером, чтобы блокировать свет.
2. Процесс окрашивания
- Подготовьте пятно следующим образом: приготовьте свежее разбавление из 45% уксусной кислоты и добавьте 0,1% v/v трипанового синего. Аликвотировать 1 мл раствора красителя в микроцентрифужные пробирки. Установите тепловой блок или водяную баню на 40 °C.
- Аккуратно, с помощью бритвы или скальпеля, отрежьте листовую оболочку от скотча. С помощью щипцов поместите оболочку в микроцентрифужную трубку и убедитесь, что она полностью погружена в раствор красителя. Подождите 2 ч, чтобы краситель проник в лист. Нагрейте образцы до 40 °C во время процесса окрашивания в тепловом блоке или на водяной бане, чтобы увеличить проникновение красителя.
ПРИМЕЧАНИЕ: Оболочки пытаются плавать в микроцентрифужной трубке; Чтобы предотвратить появление неокрашенных карманов листовой ткани, заполните трубки, погрузите оболочки и закройте трубку. Не помещайте несколько оболочек в одну и ту же микроцентрифужную пробирку. - Тщательно промойте оболочки листьев в 60% глицерине, чтобы удалить лишний краситель. Как правило, достаточно трех полосканий (каждое из свежего глицерина). Держите оболочку в глицерине до тех пор, пока она не будет готова к установке на предметные стекла.
3. Процесс монтажа и визуализации
- Поместите оболочку на чистое предметное стекло и добавьте несколько капель 60% глицерина. С помощью рассекающего микроскопа и двух пар щипцов осторожно разверните оболочку, оставив инокулированный центр лицевой стороной вверх. Держите оболочку открытой щипцами, а сверху поместите покровное стекло, чтобы предотвратить скручивание оболочки и блокировку места заражения.
ПРИМЕЧАНИЕ: Оболочка листа очень хрупкая, и эти шаги необходимо выполнять с осторожностью, чтобы не повредить оболочку. - Заклейте покровное стекло лаком для ногтей для длительного хранения или лентой для кратковременного хранения. Наблюдайте за предметными стеклами под составным световым микроскопом.
- Делайте основные снимки с помощью микроскопа и мобильного телефона. Здесь снимки были сделаны с помощью крепления адаптера сотового телефона и смартфона. Для устройств Android настройте приложение камеры на следующие параметры: выключите вспышку, отключите Top Shot, отключите автоматическую регулировку яркости и теней и установите полное разрешение фотографии.
ПРИМЕЧАНИЕ: Использование приложения камеры на телефоне сокращает время автономной работы быстрее, чем обычно, поэтому рекомендуется использовать внешнее питание. - После того, как сотовый телефон установлен на микроскопе, сделайте снимок масштабного микрометра с целью, которая будет использоваться для получения данных. Данные в этом исследовании были получены на 40-кратном воздушном объективе 0,65 NA, а телефонный адаптер был установлен на 10-кратном окуляре. Отрегулируйте масштаб телефона в 2,5 раза и сохраняйте его постоянным, чтобы поддерживать постоянный размер пикселя.
- В центре оболочки находится наибольшая концентрация спор и заражающих аппрессории; Поэтому стремитесь к 9-12 изображениям каждой оболочки, чтобы получить значимые числа для статистического анализа. Количество спор и аппрессоров варьируется в зависимости от концентрации применяемых спор.
4. Оценка и подсчет изображений с помощью ImageJ (FIJI)
- Перенесите изображения на компьютер под управлением ImageJ (FIJI). Чтобы открыть изображения, перетащите файлы на панель ImageJ.
- Установите масштаб изображений, загрузив изображение микрометра и нарисовав прямую линию между двумя метками для масштаба. Откройте «Установить шкалу», введите «Известное расстояние» для измеряемой линии и введите единицу измерения для шкалы. На микрометре в этом примере наименьшая линия была 10 мкм. Установите флажок «Установить глобальный» и нажмите «ОК». Все последующие загруженные изображения будут иметь одинаковый масштаб.
- Чтобы подсчитать аппрессории, споры или другие объекты, выберите инструмент «Точка ». Затем откройте ROI Manager. Нажмите клавишу T на клавиатуре, чтобы добавить точки в список. Эти области интереса могут быть сохранены при необходимости и перезагружены на тот же образ.
- В зависимости от целей эксперимента проведите дополнительные измерения, такие как длина спор, размер аппрессории и длина зародышевой трубки.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Описание начального рабочего процесса для этого метода показано на рисунке 1. Оболочки были собраны с 14-дневных восприимчивых растений ячменя «Лейси» (H. vulgare). Конидии собирали из 10-дневных спорорасширяющих пластин M. oryzae OMA с конидиальной суспензией, приготовленной с использованием стерильного ddH2O для конечной концентрации 5 x 104 спор на мл. Суспензию инокулята наносили непосредственно на листовые влагалища, которые закрепляли на стерильных пластинах Петри. Пластины хранились в теплой, влажной камере в течение 48 часов без света. После инкубационного периода листовые влагалища окрашивали трипановым синим и готовили к визуализации.
Места заражения были визуализированы с помощью смартфона и адаптера микроскопа смартфона. Для каждого из тестируемых штаммов M. oryzae было записано не менее 10 изображений. Эксперимент был повторен три раза для получения минимум 30 изображений для каждого штамма грибов. На рисунке 2А показаны репрезентативные результаты успешного анализа оболочки, а также неокрашенные и неправильно окрашенные изображения для справки.
В зависимости от гипотезы, эти изображения могут быть количественно оценены и проанализированы множеством способов. Для этого эксперимента через 48 ч после инокуляции подсчитывалось общее количество живых спор (проросших спор), а также количество аппрессорий и количество успешно инфицированных клеток. В лаборатории была создана коллекция из 2000 случайно мутагенизированных штаммов M. oryzae на фоне, заражающем ячмень. Анализы патогенности с использованием спрей и капельных инокуляций выявили много мутантов с уменьшенным размером поражения по сравнению с диким типом (общий фенотип для мутантов M. oryzae )11. Чтобы разделить эти фенотипы, была выдвинута гипотеза, что уменьшение размера поражения было вызвано ингибированием одной из ранних стадий инфекции (прорастание спор, образование апрессориала, образование пенетрационного колышка, начальная колонизация эпидермальных клеток), что легче всего проверить с помощью анализа оболочки листа. Многообещающий кандидат из проекта мутагенеза был идентифицирован с использованием прямого генетического метода J99A12. Этот мутант не проявлял чувствительности ни к азотному голоданию, ни к условиям активного кислорода во время скрининга. Во время последующих экспериментов J99A произвел значительное количество аппрессоров на гидрофобной поверхности, но показал уменьшенный размер поражения на живом ячмене. При тестировании с использованием анализа оболочки J99A успешно разработал аппрессории и проникающие колышки, которые проникали в оболочку листа, но не образовывали инвазивных гиф, оказавшись внутри, что позволяет предположить, что инфекция остановилась на пенетрационном колышке (рис. 2B). Успешно инфицированные клетки были идентифицированы по наличию инфекционных гиф внутри ткани оболочки листа. Сравнение количества аппрессорий с количеством инфицированных клеток обеспечило процент успешно инфицирующих аппрессории. Для дикого типа 4091-5-8 87% аппрессорий успешно вторглись и колонизировали клетку, в то время как у мутанта J99A только 36% аппрессорий имели гифы внутри клетки12.
Рисунок 1: Листовые влагалища, собранные с 10-дневного ячменя и аккуратно удаленные инструментами, очищенными в этаноле. Конидии собирают, и концентрацию доводят до 0,5-1,0 х 10,5 на миллилитр стерильной водой. Изолированные оболочки заклеиваются внутри 60-сантиметровой пластины Петри, и конидиальная подвеска загружается в оболочку. Инокулированные образцы хранят при комнатной температуре, в темноте, в стаканах с горячей водой для влажности. Образцы окрашивают в 45% уксусную кислоту + 0,1% трипановый синий в течение 1-2 ч при 40 °C, затем промывают в 60% глицерине три раза в течение 48 ч после инокуляции. Окрашенные образцы монтируются и визуализируются. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 2: Репрезентативные результаты протокола окрашивания . (A) Отклонения от протокола окрашивания могут привести к неоптимальным результатам. Тепло и уксусная кислота служат для мягкого размягчения тканей листа. Ополаскиватели после окрашивания с содержанием 60% глицерина не только удаляют лишнее пятно, но и помогают уменьшить рассеивание света, вызванное листом, и улучшить качество изображения. Масштабные линейки = 50 мкм. (B) Репрезентативные изображения, демонстрирующие надежность этого анализа, чтобы увидеть неудачное проникновение и последующие попытки заражения J99A (наконечники стрелок) по сравнению с успешными попытками 4091WT, которые привели к образованию инвазивных гиф в ткани листа (стрелки). Масштабные линейки = 50 мкм. Все снимки были сделаны через 48 часов после заражения. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Существует множество широко используемых анализов для тестирования штаммов M. oryzae, которые обеспечивают макроскопическое визуальное изображение совместимого или несовместимого ответа на инфекцию, такого как прививки спреем или воздушно-капельным способом, а также использование рейтинговых систем для количественной оценки размеров поражения13,14. Другим распространенным анализом для M. oryzae является проверка способности патогена формировать свою специализированную структуру проникновения, аппрессориум15. Здесь описан простой метод быстрого и эффективного наблюдения за изменениями ранних инфекционных процессов на клеточном уровне, у более легкого растения ячменя. Этот метод уникален тем, что для сбора данных используется общее лабораторное оборудование и смартфон. Этот метод сводит на нет необходимость в микроскопах, оснащенных камерой и управляемых компьютером, что делает этот протокол доступным для любой лаборатории. Используя этот метод, мы смогли определить, на каком этапе мутантная инфекция J99A была остановлена, вопрос, который предыдущие эксперименты не смогли прояснить.
Процесс инфицирования M. oryzae в рисе, особенно колонизация первых нескольких клеток эпидермиса, был хорошо визуализирован с использованием флуоресцентных белков, маркеров, красителей, конфокальной визуализации и расширенной микроскопии16. Эти типы экспериментов с визуализацией являются дорогостоящими, трудоемкими и требуют специальных знаний. Многие лаборатории, используя гомологичную рекомбинацию, могут создавать генетические мутанты M. oryzae для анализа роли отдельных генов в инфекционном цикле, но могут не иметь доступа к передовому оборудованию и опыту, необходимым для изучения основной клеточной биологии. Этот протокол предназначен для того, чтобы помочь восполнить этот пробел, используя только составной световой микроскоп и смартфон для захвата цифровых изображений и создания видеороликов типа z-stack о фиксированных тканях оболочки листа. Этот метод позволяет визуализировать несколько клеточных слоев в ткани, захватывая инвазивные гифы грибов на срок до 48 часов. Листовая оболочка риса и ячменя имеют схожие характеристики; Они имеют толщину всего в несколько клеточных слоев и имеют меньше хлоропластов, что облегчает их изображение. Как указано выше, ячмень менее гидрофобен и его легче выращивать, чем рис, и многие штаммы M. oryzae могут вызывать инфекцию на рисе и ячмене, что делает этот эксперимент легкой заменой более сложным анализам риса.
Некоторые ограничения этого метода включают использование видеофункции смартфона для сбора данных z-поля, поскольку z-приращение частоты кадров неизвестно. Другим ограничением является то, что для этого требуется фиксированная ткань (не живые клетки). Однако из-за скорости и простоты протокола это ограничение можно преодолеть, изучив различные моменты времени после заражения.
Одним из наиболее важных этапов протокола является правильное окрашивание. Неправильное промывание приводит к избытку красителя в препарате предметного стекла, вызывая насыщение красителем и делая ткань патогена неотличимой от ткани листа. Между тем, недостаточное окрашивание предотвращает контраст ткани патогена с тканью листа.
Вышеупомянутый метод адаптируется ко многим научным вопросам и может быть использован для оценки грибковых мутантов, оценки различной степени генетической устойчивости растений ячменя и проверки эффективности ранее применявшихся методов борьбы с грибами. Также можно распространить этот метод на другие взаимодействия растений с патогенами, особенно на другие однодольные листовые влагалища.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторам раскрывать нечего.
Acknowledgments
Авторы признают финансирование за счет награды USDA-NIFA 2016-67013-24816.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Acetic acid | Sigma-Aldrich | A6283 | |
| Cell phone | Pixel 4A | Any smartphone with a rear facing camera that can be mounted in an a holder will suffice. | |
| Cell phone Microscope adapter | Vankey | B01788LT3S | https://www.amazon.com/Vankey-Cellphone-Telescope-Binocular-Microscope/dp/B01788LT3S/ref=sr_1_2_sspa?keywords=vankey+cellphone+telescope+adapter+mount&qid=1662568182&sprefix= vankey+%2Caps%2C63&sr=8-2 -spons&psc=1&spLa=ZW5jcnlwd GVkUXVhbGlmaWVyPUFKNklBR jlCREJaMEcmZW5jcnlwdGVkSWQ 9QTA2MDMxNjhBRFYxQTMzNk9E M0YmZW5jcnlwdGVkQWRJZD1BM DQxMzAzOTMxNzI1TzE3M1ZGTEI md2lkZ2V0TmFtZT1zcF9hdGYmY WN0aW9uPWNsaWNrUmVkaXJlY3 QmZG9Ob3RMb2dDbGljaz10cnVl |
| Glycerol | Sigma-Aldrich | G5516 | |
| Microscope | AmScope | FM690TC | 40x–2500x Trinocular upright epi-fluorescence microscope |
| Oatmeal old fashioned rolled oats | Quaker | N/A | https://www.amazon.com/Quaker-Oats-Old-Fashioned-Pack/dp/B00IIVBNK4/ref=asc_df_B00IIVBNK4/?tag=hyprod-20&linkCode=df0 &hvadid=312253390021&hvpos= &hvnetw=g&hvrand=98212627704 6839544&hvpone=&hvptwo=&hvq mt=&hvdev=c&hvdvcmdl=&hvlocint =&hvlocphy=9007494&hvtargid =pla-568492637928&psc=1 |
| ProMix BX | ProMix | 1038500RG | |
| Rectangular coverglass | Corning | CLS2975245 | |
| Slides, microscope | Sigma-Aldrich | S8902 | |
| Stage micrometer | OMAX | A36CALM7 | 0.1 mm and 0.01 mm Microscope calibration slide |
| Trypan blue | Sigma-Aldrich | T6146 |
References
- Roy, K. K., et al. First report of barley blast caused by Magnaporthe oryzae pathotype Triticum (MoT) in Bangladesh. Journal of General Plant Pathology. 87 (3), 184-191 (2021).
- Dean, R., et al. The Top 10 fungal pathogens in molecular plant pathology. Molecular Plant Pathology. 13 (4), 414-430 (2012).
- Dean, R. A., et al. The genome sequence of the rice blast fungus Magnaporthe grisea. Nature. 434 (7036), 980-986 (2005).
- Wilson, R. A., Talbot, N. J. Under pressure: investigating the biology of plant infection by Magnaporthe oryzae. Nature Reviews. Microbiology. 7 (3), 185-195 (2009).
- Giraldo, M. C., et al. Two distinct secretion systems facilitate tissue invasion by the rice blast fungus Magnaporthe oryzae. Nature Communications. 4, 1996 (2013).
- Islam, M. T. Emergence of wheat blast in Bangladesh was caused by a SouthAmerican lineage of Magnaporthe oryzae. BMC Biology. 14 (1), 84 (2016).
- Langridge, P. Economic and Academic Importance of Barley. The Barley Genome. Compendium of Plant Genomes. , Springer. Cham. 1-10 (2018).
- Heath, M. C., Valent, B., Howard, R. J., Chumley, F. G. Interactions of two strains of Magnaporthe grisea with rice, goosegrass, and weeping lovegrass. Canadian Journal of Botany. 68 (8), 1627-1637 (1990).
- Gowda, M., et al. Genome analysis of rice-blast fungus Magnaporthe oryzae field isolates from southern India. Genomics Data. 5, 284-291 (2015).
- Luginbuehl, L. H., El-Sharnouby, S., Wang, N., Hibberd, J. M. Fluorescent reporters for functional analysis in rice leaves. Plant Direct. 4 (2), 00188 (2020).
- Fernandez, J., Wilson, R. A. Why no feeding frenzy? Mechanisms of nutrient acquisition and utilization during infection by the rice blast fungus Magnaporthe oryzae. Molecular Plant-Microbe Interactions. 25 (10), 1286-1293 (2012).
- Cooper, J. G. Identifying Genetic Control of Reactive Oxygen Species in Magnaporthe oryzae (the Rice Blast Fungus) through Development, Screening, and Characterization of a Random Insert Mutant Library. University of Delaware. , Doctoral dissertation (2022).
- Zhang, M., et al. al.The plant infection test: Spray and wound-mediated inoculation with the plant pathogen Magnaporthe grisea. Journal of Visualized Experiments. (138), e57675 (2018).
- Koga, H., Dohi, K., Nakayachi, O., Mori, M. A novel inoculation method of Magnaporthe grisea for cytological observation of the infection process using intact leaf sheaths of rice plants. Physiological and Molecular Plant Pathology. 64 (2), 67-72 (2004).
- Hamer, J. E., Howard, R. J., Chumley, F. G., Valent, B. A mechanism for surface attachment in spores of a plant pathogenic fungus. Science. 239 (4837), 288-290 (1988).
- Khang, C. H., et al. et al. of Magnaporthe oryzae effectors into rice cells and their subsequent cell-to-cell movement. The Plant Cell. 22 (4), 1388-1403 (2010).
