Name: Un Coroide Plesso epiteliali modello cellulare della Barriera Fluid Sangue umano-cerebrospinale per studiare linfezione batterica dal lato basolaterale (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-05-06T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 58 s
Description: Scopri come generare un modello cellulare epiteliale del plesso corioideo per studiare le infezioni batteriche dal lato basolaterale della barriera sangue-liquido cerebrospinale umana.

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Gli autori desiderano ringraziare il Prof. Hartwig Wolburg per aver eseguito la microscopia elettronica.

1. Preparare cultura cellulare di filtro Inserti per celle semina HIBCPP in un sistema invertito modello <ol><li> Pre-caldo DMEM / F12 (Ham) supplementato con 5 mg / ml di insulina, 100 U / ml di penicillina, 100 ug / ml di streptomicina e 10% di siero fetale bovino (FCS). </li><li> Utilizzare pinza sterile per posizionare 0,33 cm² area di crescita inserti del filtro coltura cellulare con una dimensione dei pori di 3 micron a testa in giù in un 12-pozzetti (Figura 1E). </li><li> Riempire media nel vano inferiore dell&#39;inserto filtro di coltura cellulare (circa 3 ml) e 100 ml sulla parte superiore del dispositivo di filtrazione. Inondare la piastra e il vano inferiore con il mezzo. Aspirare il mezzo eccessivo in modo tale che il vano inferiore dell&#39;inserto filtrante rimane riempito (Figura 1E). Nota: Si consiglia di utilizzare una pipetta sierologica per questo passo. </li><li> Coprire 12-pozzetti con il coperchio e trasferire gli inserti preparati filtri coltura cellulare per l&#39;incubatore, 37 ° C,5% di CO 2 fino aggiunta di cellule. </li></ol> 2. La coltivazione e Passaging di celle HIBCPP <ol><li> Preparare DMEM / F12 (prosciutto) integrato con 5 mg / ml, 100 U / ml di penicillina, 100 ug / ml di streptomicina e 10% FCS. </li><li> Pre-caldo medio e PBS a bagnomaria C 37 °. medio Aspirare dalla boccetta. Aggiungere 10 ml di PBS al pallone e turbolenza. Ripetere questa operazione una sola volta. </li><li> Aggiungere 3 ml di 0,25% tripsina-EDTA al pallone e turbolenza. Mettere in incubatrice, 37 ° C, 5% di CO 2. </li><li> Dopo circa 20 minuti togliere il pallone dal termostato. Assicurarsi che le cellule vengono staccate dal fondo del pallone e mostrano una forma rotonda quando esaminato con il microscopio. Nota: Le cellule non staccano completamente l&#39;uno dall&#39;altro e si trovano spesso in agglomerati. Si consiglia di utilizzare le cellule fino a passaggio 38. </li><li> Per interrompere tripsinizzazione aggiungere 17 ml di mezzo. Risospendere le cellule pipettando su e giù e trasferire la sospensionein un tubo da 50 ml. Centrifugare a 50 xg per 10 min a temperatura ambiente. </li><li> Risospendere le cellule in un volume adeguato di medie e contare le cellule utilizzando un emocitometro. Nota: La concentrazione di cellule risospese HIBCPP dovrebbe essere di 1 x 10 6 cellule / ml. Per la manutenzione di cellule HIBCPP si suggerisce di trasferire una quantità di 1-6 x 10 6 cellule in 10 ml di mezzo di un T75 in pallone. Modificare media ogni due giorni. </li></ol> 3. Semina filtro Cell Culture invertito inserti con le cellule HIBCPP <ol><li> Sulla parte superiore di ogni elemento filtrante invertita (cioè il lato inferiore del filtro) aggiungere 80 ml ​​di sospensione cellulare (cioè. 8 x 10 4 cellule) (Figura 1E). Nota: Assicurarsi che le cellule sono uniformemente distribuiti in sospensione invertendo il tubo prima della semina. </li><li> Coprire le cartucce filtranti coltura seminato cellule con il coperchio della piastra 12 pozzetti e trasferimento in incubatore a 37 ° C, 5% CO 2. </li><li> Il primo giorno, riempire 1 ml di mezzo nei pozzetti di una piastra da 24 pozzetti. Sollevare gli inserti del filtro di coltura cellulare utilizzando una pinza fuori dal 12-pozzetti, scartare il medium all&#39;interno, girare gli inserti del filtro e metterli in orientamento standard nel preparato 24-pozzetti (Figura 1E). </li><li> Mettere le cellule in terreno fresco ogni due giorni. Preparare 24 pozzi con terreno fresco e trasferire gli inserti del filtro ad esso. Riempire inserti con 0,5 ml di terreno fresco. Controllare TEER ogni giorno come descritto nel paragrafo 4. </li><li> Quando i valori di Teer HIBCPP seminate cellule su inserti colture cellulari supera il 70 Ω x cm² (circa 4 giorni dopo la semina), per poi proseguire coltura cellulare in mezzo contenente 1% FCS e 5 mg / ml di insulina. Preparare piastre da 24 pozzetti con 1 ml di mezzo per ciascun pozzetto. Trasferire elementi filtranti ai pozzetti preparate e mezzo di scambio nel compartimento superiore. Nota: Questo ritiro siero dopo confluenza porta alla formazione diun potenziale di membrana superiore. </li><li> Aspirare media dal vano del filtro, il trasferimento al preparato bene e riempire con 500 microlitri di media. Ripetere questa operazione una sola volta. Mettere le cellule durante la notte in incubatrice, 37 ° C, 5% di CO 2. </li></ol> 4. Misura della Transepithelial Resistenza elettrica (TEER) <ol><li> Immergere le punte degli elettrodi di voltohmmeter tessuto epiteliale per 15 minuti in 80% di etanolo. Trasferire voltohmmeter sotto il cofano e lasciare asciugare l&#39;elettrodo per un momento. Mettere elettrodo nel rispettivo terreno di coltura usato per le celle per altri 15 minuti per equilibrare. </li><li> Eseguire misurazioni posizionando il braccio più lungo dell&#39;elettrodo modo che tocchi il fondo del vano inferiore ogni volta, posizionare il braccio più corto nel vano di alloggiamento del filtro. Nota: Valori di resistenza delle cartucce filtranti di coltura cellulare senza cellule in terreno dovrebbero essere utilizzati come valori vuoti ((valore misurato (Ω) - valore del bianco (Ω)) x Filtrodi superficie (cioè 0,33 cm²)). </li><li> Dopo aver misurato posto l&#39;elettrodo resta in 80% di etanolo per 15 min. Conservare in un tubo secca. </li></ol> 5. Determinazione della permeabilità paracellular <ol><li> Sciogliere 1 g FITC-inulina in 200 ml di mezzo la cultura integrata con 5 mg / ml di insulina 1% FCS. Applicare 50 ug / ml della soluzione nel vano filtro superiore prima infezione delle cellule. </li><li> Dopo l&#39;infezione raccogliere campioni di media dal basso bene per determinare la quantità di inulina passata dal vano filtro attraverso lo strato di cellule. </li><li> Preparare una soluzione standard FITC-inulina ed eseguire 1: 2 diluizioni, 10 volte (100%, 50%, 25%, 12,5%, 6,25%, 3,13%, 1,56%, 0,78%, 0,39%, 0,2% e 0%) . Determinare la fluorescenza con la misurazione di tutti i campioni di lettore di micropiastre. </li></ol> 6. Preparazione di batteri per l&#39;infezione delle cellule HIBCPP sulla cultura delle cellule filtro Inserti <ol><li> Un giorno prima dell&#39;esperimento, raschiare tegli N. congelato meningitidis ceppi fuori una glicerolo magazzino e strisciare su agar cioccolato con Vitox. Crescere durante la notte in incubatrice, a 37 ° C, con il 5% di CO 2. </li><li> Estratto 20-30 colonie dalla cultura durante la notte e trasferire in una provetta contenente 8 ml proteoso peptonata medio integrato con 0,042% NaHCO 3, 0,01 M MgCl 2 e 1% Polyvitex. </li><li> Agitare i batteri per 1,25 ore a 220 rpm, 37 ° C. Pellet i batteri da centrifugazione a 2.684 g per 10 min a temperatura ambiente. Gettare il surnatante e risospendere il pellet batterico con 8 ml di terreno privo di siero. Vortex per assicurare una sospensione. </li><li> Per determinare la densità cultura, misurare una diluizione di 1:10 ad una densità ottica (OD) a 600 nm. Regolare la sospensione batterica ad un OD 600 di 0,1. Nota: Questa sospensione contiene circa. 1 x 10 8 UFC / ml. </li><li> Per confermare la concentrazione cellulare batterica, diluire la sospensione graduale (1,10) fino ad undiluizione del 10 -5 e la piastra su piastre di agar cioccolato. Nota: diluizioni seriali simili devono essere eseguite per calcolare curve di crescita batterica. </li></ol> 7. l&#39;infezione delle cellule HIBCPP sulla cultura cellulare di filtro Inserti e la determinazione del batterica Invasion con un doppio immunofluorescenza <ol><li> Dopo continuando coltura cellulare in terreno contenente 1% FCS e 5 ug / ml di insulina, misurare cellule ogni giorno utilizzando un voltohmmeter tessuto epiteliale. Se le cellule hanno raggiunto un TEER di circa 500 Ω x cm², effettuare l&#39;infezione. </li><li> Infettare le cellule con la sospensione batterica preparata ad una molteplicità di infezione (MOI) di 10. Conservare le cellule infettate nell&#39;incubatore, a 37 ° C, con 5% di CO 2 per il periodo di tempo indicato. Nota: La MOI può essere calcolato tenendo conto del numero di cellule per inserto filtro coltura cellulare a confluenza (1,21 x 10 6 cellule / cm 2). </li><li> Arrestare il infettareion mediante lavaggio tre volte con 500 microlitri terreno privo di siero (SFM) contenente albumina di 1% di siero bovino (BSA) applicata al compartimento filtro, 1 ml al vano inferiore. </li><li> Blocco con 500 microlitri SFM contenente tampone BSA 1% nel vano del filtro e 1 ml nel vano inferiore per 20 minuti a temperatura ambiente per prevenire l&#39;aderenza di anticorpi siti di legame non specifici. </li><li> Incubare con 100 microlitri anticorpo primario anti- N. meningtidis α-OMP (1: 200) nel vano filtro e 500 microlitri nel vano inferiore per 20 min a temperatura ambiente. Nota: Se necessario, la concentrazione di anticorpi deve essere titolato. </li><li> Lavare le cellule aspirando il medium dal vano del filtro, trasferire l&#39;inserto del filtro di un preparato SFM bene con 1 ml contenente 1% di BSA e riempire il vano del filtro svuotato con SFM 500 microlitri contenente 1% di BSA. Ripetere questa operazione due volte. </li><li> Fissare le cellule con 500 microlitri 4% formaldeide nel compa filtrortment, 1 ml nel vano inferiore per 10 min a temperatura ambiente. </li><li> Lavare le cellule aspirando il medium dal vano del filtro, trasferire l&#39;inserto del filtro ad una ben preparata con 1 ml di PBS e riempire il vano del filtro svuotato con 500 microlitri di PBS. Ripetere questa operazione una sola volta. Nota: I campioni possono essere conservati durante la notte in PBS a 4 ° C. </li><li> coltura cellulare fisso Cut filtra degli inserti e lavare con 250 microlitri di PBS contenente 1% BSA. Incubare le cellule per 15 min a temperatura ambiente con 250 microlitri fluorescente etichettati (lunghezza d&#39;onda di eccitazione 594 nm) anticorpo secondario di coniglio anti pollo (1: 500) per colorare batteri extracellulari. Nota: Se necessario, la concentrazione di anticorpi deve essere titolato. </li><li> Permeabilize cellule con 250 microlitri di PBS contenente 1% di BSA e 0,5% Triton X-100 per 1 ora a temperatura ambiente. Lavare le cellule tre volte con 250 microlitri di PBS contenente 1% BSA. </li><li> Incubare con 250 microlitri anticorpo primario anti- N. meningitidis </em&gt; α-OMP (1: 200) per 30 min a macchia batteri extra- ed intracellulari. Lavare le cellule tre volte con 250 microlitri di PBS contenente 1% BSA. </li><li> Applicare 250 ml di fluorescenza etichettati (eccitazione lunghezza d&#39;onda di 488 nm) anticorpo secondario (1: 500), fluorescente marcato (eccitazione lunghezza d&#39;onda di 660 nm) falloidina (1: 250) e 4&#39;, 6-diamidino-2-phenylindole dicloridrato (DAPI) ( 1: 50.000) per 1 ora a temperatura ambiente per colorare batteri extra ed intracellulari, citoscheletro actina e nuclei. Nota: Se necessario, la concentrazione di anticorpi deve essere titolato. </li><li> Lavare le cellule tre volte con 250 microlitri di PBS contenente 1% BSA. Incorporare le cellule in terreno e conservare a 4 ° C di montaggio fino a esame tramite microscopio. </li><li> Determinare il numero di batteri invaso per campo predefinito. A tale scopo, contando 20 campi per filtro a membrana. Calcolare la percentuale di batteri invaso. Nota: Moltiplicare il numero di batteri media dei 20 campi microscopici con una Coëffic zonaiente. Il risultato esprime la quantità di batteri totali presenti in un inserto filtro coltura cellulare 0,33 cmq. Dividere questo valore per la quantità di batteri cresciuti in media durante la durata dell&#39;infezione. </li></ol>

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</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Le cellule epiteliali del CP formano il BCSFB che separa il CSF dal 2,3 sangue. Recentemente abbiamo stabilito la linea cellulare HIBCPP come un modello umano funzionale del BCSFB. Le cellule mostrano importanti funzioni di barriera della BCSFB in vitro, compreso lo sviluppo di un elevato potenziale di membrana, una bassa permeabilità per le macromolecole, così come la presenza di filamenti continui di TJs 5. Le proteine ​​TJ contribuiscono ad una polarità apicale / basolaterale delle cell...

La barriera sangue fluido cerebrospinale (BCSFB) è uno dei tre siti barriera tra il sangue e il cervello 1. La correlazione morfologica sono le cellule epiteliali del plesso coroide (CP) 2,3, un convoluto endoteliale-epiteliale, che è fortemente vascolarizzato e situato nei ventricoli del cervello. Il CP serve per produrre il liquido cerebrospinale (CSF), nonché a separare quest&#39;ultima dal sangue. Al fine di realizzare la funzione di barriera, le cellule epiteliali CP mostrano una bassa attività pinocitotiche, esprimono trasportatori specifici, e sono densamente collegati da una rete continua di giunzioni strette (TJS) 2,3. Umana coroide plesso papilloma (HIBCPP), le cellule, derivate da una maligna coroide plesso papilloma di una donna giapponese a 4, sono stati usati per costruire un funzionale modello in vitro del BCSFB. cellule HIBCPP mostrano un paio di caratteristiche di un BCSFB funzionale come la formazione di TJfili, lo sviluppo di un alto potenziale di membrana transepiteliale che può essere determinato come la resistenza elettrica transepiteliale (TEER) e permeabilità minori per macromolecole. Inoltre, le cellule HIBCPP esprimono trasportatori caratteristici, che possono servire a regolare il microambiente ionico, e mostrare apicale / basolaterale 5,6,7 polarità. Il BCSFB ha dimostrato di funzionare come un sito di ingresso per agenti patogeni (batteri, virus e funghi) nel sistema nervoso centrale (CNS) 8. L&#39;invasione di patogeni, tra cui Neisseria meningitidis (N. meningitidis), un batterio Gram-negativo, può causare malattie gravi come la meningite. La prova che supera la barriera epiteliale protettiva del CP è supportata da osservazioni istopatologici nei pazienti con malattia meningococcica esibendo una maggiore quantità di meningococchi nei vasi e le cellule epiteliali CP 9,10. Per ottenere l&#39;ingresso nelle cellule ospiti bacteria spesso dirottare meccanismi di endocitosi, che sono mediati o attivati ​​da specifici recettori di superficie situati sulle cellule ospiti. Poiché interazioni di patogeni con questi recettori possono essere specie modelli 11, animali specifici possono essere consultati solo in misura limitata. La linea cellulare HIBCPP offre l&#39;opportunità di studiare il processo di invasione nonché i meccanismi molecolari alla base in un sistema modello umano. Impiegando inserti di coltura cellulare ci permette di analizzare le interazioni di agenti patogeni con cellule ospiti da due lati delle cellule distinte. Molti batteri, tra cui N. meningitidis, sono fortemente soggetta all&#39;impatto di gravità durante saggi di infezione. Per l&#39;interazione ottimale dei patogeni con cellule HIBCPP durante i saggi, i batteri sono inizialmente aggiunti nel vano superiore del sistema di cartuccia del filtro di coltura cellulare. Per attivare infezione apicale o il lato della cella basolaterale rispettivamente, due varianti del sistema in vitro sono stati estafissare dei: Nel sistema standard cellule HIBCPP vengono seminate nel vano superiore dell&#39;inserto filtrante, imitando la situazione quando i microrganismi si trovano sul CSF-lato ed entrare in contatto con il lato apicale delle cellule (Figura 1A, C). Al contrario, utilizzando le cellule HIBCPP in un sistema di cartuccia del filtro di coltura cellulare invertito riflette le condizioni quando i batteri sono entrati nel flusso sanguigno. Microrganismi diffondere nel sangue e di incontro CP cellule epiteliali dal lato basolaterale (Figura 1B, D). Degno di nota, in questo sistema modello è stato dimostrato che i batteri invadono le cellule HIBCPP in modo polare specificamente dal basolaterale 5,7 lato della cella. In seguito alle infezioni del CP, gli agenti patogeni invasi possono essere riconosciuti dal sistema immunitario innato attraverso la legatura ai recettori pattern-recognition (PRR). i membri ben descritto dei PRRs appartengono alla famiglia dei recettori Toll-like (TLR). può TLR bind per strutture caratteristiche di microrganismi infettivi, che sono modelli patogeni associati definito molecolari (PAMPs). Legatura dei recettori porta all&#39;attivazione della cellula ospite cascate di segnalazione che attivano l&#39;espressione di citochine e chemochine 12, che a loro volta stimolano trasmigrazione delle cellule del sistema immunitario in tutto il BCSFB 13,14. E &#39;stato dimostrato che le cellule HIBCPP esprimono diversi TLR a livello di mRNA e che l&#39;infezione con N. meningitidis si traduce in secrezione di diverse citochine e chemochine, tra cui CXCL1-3, IL-6, TNF IL8 e 15,16. Qui, descriviamo coltivazione e infezione della linea cellulare umana HIBCPP in un sistema di inserto di coltura cellulare invertita che imita il BCSFB. Questo sistema modello consente di studiare le interazioni di agenti patogeni con il lato in vivo corrispondente cella basolaterale nonché la successiva risposta cellulare.

<table><tbody><tr><td>0,25% Tripsina-EDTA</td><td>Gibco</td><td>25200-056</td><td></td></tr><tr><td>4&acuto;,6 diamidino-2-fenilindolo (DAPI)</td><td>Life Technologies</td><td>D1306</td><td></td></tr><tr><td>Piastre a 12 pozzetti</td><td>Starlab</td><td>CC7682-7512</td><td></td></tr><tr><td>Piastre a 24 pozzetti</td><td>Starlab</td><td>CC7682-7524</td><td></td></tr><tr><td>Anti Neisseria meningitidis &alpha;-OMP</td><td></td><td></td><td>Questo anticorpo è stato un dono dei dottori H. Claus e U. Vogel (Università di Wüuml; rzburg, Germania)</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 (pollo anti coniglio)</td><td>Invitrogen</td><td>A21441</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 594 (pollo anti coniglio)</td><td>Invitrogen</td><td>A21442</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 660 Falloidina</td><td>Invitrogen</td><td>A22285</td><td></td></tr><tr><td>Albumina sierica bovina (BSA)</td><td>Calbiochem</td><td>12659</td><td></td></tr><tr><td>Piastre agar cioccolato</td><td>Biomerieux</td><td>43109</td><td></td></tr><tr><td>Citocalasina D</td><td>Sigma</td><td>C8273</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12 + L-Glut + 15 mM HEPES</td><td>Gibco</td><td>31330-095</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12 + L-Glut + 15 mM HEPES senza fenolo</td><td>Gibco</td><td>11039-047</td><td></td></tr><tr><td>Dimetil solfossido</td><td>Sigma</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>Siero fetale di vitello (FCS)</td><td>Life Technologies</td><td>10270106</td><td></td></tr><tr><td>FITC-Inulina</td><td>Sigma</td><td>F3272</td><td></td></tr><tr><td>Insulina</td><td>Sigma</td><td>19278</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Sigma</td><td>2393</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Sigma</td><td>55761</td><td></td></tr><tr><td>PBS + Mg + Ca</td><td>Gibco</td><td>14040-174</td><td></td></tr><tr><td>Penicillina/Streptomicina</td><td>MP Biomedicals</td><td>1670049</td><td></td></tr><tr><td>Polyvitex</td><td>Biomerieux</td><td>55651</td><td></td></tr><tr><td>Proteosio peptone</td><td>BD</td><td>211684</td><td></td></tr><tr><td>Terreno privo di siero</td><td>Gibco</td><td>10902-096</td><td></td></tr><tr><td>Inserti per colture cellulari Thincert per piastre a 24 pozzetti, dimensione dei pori 3 e micro; m</td><td>Greiner</td><td>662630</td><td></td></tr><tr><td>Pallone per colture tissutali 75 cm&sup2; tappo rosso sterile</td><td>Greiner</td><td>658175</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma</td><td>T8787</td><td></td></tr><tr><td>Volt-Ohm Meter Millicell-ERS2 con elettrodo MERSSTX01</td><td>Millipore</td><td>MERSSTX00</td><td></td></tr></tbody></table>

un coroide plesso epiteliali modello cellulare della barriera fluid sangue umano-cerebrospinale per studiare l&#39;infezione batterica dal lato basolaterale

A Choroid Plexus Epithelial Cell-based Model of the Human Blood-Cerebrospinal Fluid Barrier to Study Bacterial Infection from the Basolateral Side

Le cellule epiteliali del plesso coroideo (CP), situate nel sistema ventricolare del cervello, formano la barriera sangue-liquido cerebrospinale (BCSFB). Il BCSFB funziona separando il liquido cerebrospinale (CSF) dal sangue e limitando al minimo lo scambio molecolare. Un modello in vitro del BCSFB si basa su cellule derivate da un papilloma del plesso coroideo umano (HIBCPP). Le cellule HIBCPP mostrano funzioni di barriera tipiche, tra cui la formazione di giunzioni strette (TJ), lo sviluppo di una resistenza elettrica transepiteliale (TEER) e permeabilità minori per le macromolecole. Esistono diversi agenti patogeni che possono entrare nel sistema nervoso centrale (SNC) attraverso il BCSFB e successivamente causare malattie gravi come la meningite. Uno di questi agenti patogeni è Neisseria meningitidis (N. meningitidis), un batterio specifico per l'uomo. L'impiego delle cellule HIBCPP in un sistema di filtri per colture cellulari invertite consente di studiare le interazioni dei patogeni con le cellule del BCSFB dal lato basolaterale della cellula, il che è rilevante in vivo. In questo articolo, descriviamo la semina e la coltura di cellule HIBCPP su inserti di coltura cellulare. Inoltre, è stata dimostrata l'infezione delle cellule con N. meningitidis insieme all'analisi dei batteri invasi e aderenti tramite doppia immunofluorescenza. Poiché le cellule della CP sono coinvolte anche in altre malattie, tra cui malattie neurodegenerative come il morbo di Alzheimer e la sclerosi multipla, nonché durante le metastasi cerebrali delle cellule tumorali, il sistema modello può essere applicato anche in altri campi di ricerca. Fornisce il potenziale per decifrare i meccanismi molecolari e identificare nuovi bersagli terapeutici.

Qui si descrive la coltura e l&#39;infezione delle cellule HIBCPP in un sistema di coltura cellulare inserto invertita. Questo modello permette di studiare i meccanismi di invasione e le vie di segnalazione molecolari alla base dal lato delle cellule basolaterale, riproducendo una situazione fisiologica di batteri diffusione e che entrano cellule epiteliali attraverso il flusso sanguigno (Figura 1). Le cellule...

Le cellule epiteliali del plesso coroideo (CP) formano la barriera sangue-liquido cerebrospinale (BCSFB). Un modello in vitro del BCSFB impiega cellule di papilloma del plesso coroideo umano (HIBCPP). Questo articolo descrive la coltura e l'infezione basolaterale delle cellule HIBCPP utilizzando un sistema di filtri per colture cellulari.

Un Coroide Plesso epiteliali modello cellulare della Barriera Fluid Sangue umano-cerebrospinale per studiare l&#39;infezione batterica dal lato basolaterale

The epithelial cells of the choroid plexus (CP), located in the ventricular system of the brain, form the blood-cerebrospinal fluid barrier (BCSFB). The ...

L'obiettivo generale di questo metodo è generare un modello basato su cellule epiteliali del plesso coroideo umano della barriera emato-encefalica liquorale. Permettendo lo studio delle infezioni batteriche a partire dal lato baso-laterale. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali riguardo le malattie infettive del Sistema Nervoso Centrale, ad esempio quali processi sono coinvolti durante le interazioni batteriche con l'epitelio del plesso coroideo.Il principale vantaggio di questa tecnica è che consente l'analisi delle interazioni tra patogeni e il lato basolaterale nero delle cellule epiteliali. Questo metodo può essere applicato anche ad altri studi, ad esempio all'indagine sulla transmigrazione di cellule immunitarie e cellule tumorali attraverso l'epitelio del plesso coroideo. Ebbi per la prima volta l'idea di utilizzare le cellule di papilloma del plesso coroideo umano, o cellule HIBCCP, per questo metodo quando lessi il manoscritto del 2005 di Shibata et al.che descrive la linea cellulare. Iniziare utilizzando pinzette sterili per posizionare inserti per coltura cellulare con area di crescita di 0,33 centimetri quadrati e pori di dimensione di tre micron, capovolti, in ciascun pozzetto di una piastra a dodici pozzetti. Successivamente, con una pipetta sierologica, riempire il pozzetto con circa tre millilitri di mezzo preriscaldato, aspirando la soluzione in eccesso, fino a quando il compartimento inferiore risulta appena riempito.Successivamente, aggiungere 100 micrometri di mezzo di subcoltura a 37 gradi, integrato con il dieci percento di FCS, sopra il filtro. Durante l'aggiunta del mezzo è molto importante evitare la formazione di bolle d'aria, poiché le bolle impedirebbero un adeguato nutrimento delle cellule. Una volta aggiunto il mezzo a tutti gli inserti, coprire la piastra e trasferire gli inserti in un incubatore a 37 gradi Celsius con cinque percento di CO2.Ora, lavare un flacone di cellule HIBCPP con dieci millilitri di PVS, due volte agitando. Dopo il secondo lavaggio, aggiungere tre millilitri di tripsina 0,25 percento con EDTA alle cellule e agitare il flacone. Quindi, incubare le cellule per circa venti minuti.Al termine dell'incubazione, verificare che le cellule si siano staccate dal fondo della fiasca e presentino una forma rotonda. Le cellule non si distaccano completamente l'una dall'altra e spesso si trovano in agglomerati. Ri-sospendere la coltura con 17 millilitri di mezzo per arrestare la reazione e trasferire la sospensione in un tubo da 50 millilitri.Quindi, centrifugare le cellule e risospendere il pellet in un volume appropriato di mezzo per il conteggio. Successivamente, diluire le cellule fino a una concentrazione di un milione di cellule per millilitro e capovolgere il tubo per distribuire uniformemente le cellule. Quindi, aggiungere 80 microlitri di cellule sulla parte superiore di ciascun inserto filtrante.Dopo aver seminato tutti gli inserti, coprire la piastra e riporla nell'incubatore per una coltura notturna. Il giorno successivo, aggiungere un millilitro di mezzo in ciascun pozzetto di una piastra a 24 pozzetti. Quindi, utilizzando delle pinzette, sollevare ciascun inserto e scartare il mezzo al suo interno, posizionando gli inserti con la parte superiore rivolta verso l'alto in pozzetti singoli della piastra a 24 pozzetti.Quando si trasferiscono i supporti con filtro dalla piastra a 12 pozzetti alla piastra a 24 pozzetti, fare attenzione a non toccare la membrana del filtro con le cellule che crescono sulla superficie superiore. Riempire i supporti con 0,5 millilitri di mezzo fresco e reinserire la piastra nell'incubatore. Trasferire i supporti in una nuova piastra a 24 pozzetti contenente mezzo fresco ogni due giorni, sostituendo così il mezzo nel compartimento superiore.Per misurare la resistenza elettrica transepiteliale, o TEER delle cellule, immergere prima le punte dell'elettrodo di un volt-ohmmetro per tessuti epiteliali nell'etanolo all'80 percento. Dopo 15 minuti, rimuovere l'elettrodo dall'etanolo per permettere all'elettrodo di asciugarsi. Successivamente, posizionare le punte in un'aliquote di mezzo di subcoltura per altri 15 minuti.Una volta che l'elettrodo ha raggiunto l'equilibrio, posizionare il braccio più lungo in modo che tocchi il fondo del compartimento inferiore di una pozzetta della piastra per colture cellulari, e il braccio più corto in modo che entri nel compartimento del filtro inserito. Misurare i valori di resistenza dei filtri per colture cellulari in mezzo privo di cellule per ottenere i valori di bianco. Successivamente, misurare il TEER di ciascun inserto seminato.Dopo la misurazione, riposizionare l'elettrodo nell'etanolo all'80 percento per 15 minuti, seguito dallo stoccaggio in un tubo asciutto. Quando i valori di TEER degli inserti seminati con HIBCPP superano i 70 ohm per centimetro quadrato, rinnovare il mezzo con mezzo di coltura fresco integrato con cinque microgrammi per millilitro di insulina e uno percento di FCS, quindi reinserire la piastra nell'incubatrice per colture cellulari per tutta la notte. Per determinare la permeabilità paracellulari delle colture negli inserti, aggiungere 50 microgrammi per millilitro di FITC-inulina appena preparata in mezzo di coltura fresco a basso contenuto di siero nel compartimento superiore del filtro di ciascun inserto, quindi reinserire le cellule nell'incubatrice.Quando le colture hanno raggiunto un valore di TEER di circa 500 ohm per centimetro quadrato, infettare le cellule con una sospensione batterica di interesse a una multiplicità di infezione di dieci e reinserire le cellule nell'incubatrice per il periodo di coltura appropriato. Successivamente, lavare le cellule tre volte trasferendo il filtro in una nuova pozzetta contenente un millilitro di mezzo privo di siero. Ogni volta, aggiungere il mezzo nel compartimento del filtro con 500 microlitri dello stesso mezzo. Infine, determinare la concentrazione di inulina che ha attraversato il compartimento del filtro attraverso lo strato cellulare dopo l'infezione batterica, raccogliendo campioni di mezzo dalla pozzetta inferiore di ciascun inserto per coltura cellulare con filtro e misurando tutti i campioni in un lettore per micropiastre confrontandoli con dieci diluizioni standard di FITC-inulina uno e due.Le cellule HIBCCP mostrano specifiche funzioni di barriera che permettono loro di limitare in modo modesto gli scambi molecolari. Ad esempio, analisi di immunofluorescenza del tipo di giunzione associata alle proteine ZO-1, Occludina e Claudina-1 rivelano un segnale continuo nei siti di contatto tra cellula e cellula, illustrando l'interconnessione delle cellule mediante filamenti continui di giunzioni strette.Quando coltivate in condizioni appropriate, le cellule HIBCPP mostrano un elevato potenziale di membrana, che raggiunge fino a circa 500 ohm per centimetro quadrato senza trattamento, mantenendo le tipiche funzioni di barriera della barriera emato-encefalica, come la formazione di un potenziale di membrana, nonché una bassa permeabilità per le macromolecole. Tuttavia, all'aumentare delle concentrazioni di DMSO, i valori di TEER diminuiscono in modo dose-dipendente, con una riduzione significativa simile osservata dopo il trattamento con Citocalasina D. Inoltre, l'aggiunta del due percento in volume di DMSO o di Citocalasina D determina un corrispondente aumento significativo della permeabilità al flusso di FITC-insulina.Inoltre, l'infezione batterica delle cellule HIBCCP provoca un'invasione significativa dello strato cellulare da parte di due ceppi batterici patogeni, MC58 e il suo mutante privo di capsula, mentre per il ceppo apatogeno alpha 14 si osserva soltanto una lieve invasione.Nel tentativo di eseguire questa procedura, è importante ricordare di non toccare la membrana del filtro dopo aver seminato le cellule, poiché il contatto potrebbe alterare lo strato integro di HIBCCP. Al termine di questa procedura, altri metodi come saggi di trasmissione *in vitro* possono essere eseguiti per rispondere ad ulteriori domande sui meccanismi di migrazione delle cellule immunitarie e tumorali attraverso le cellule epiteliali del plesso coroideo. Dopo il suo sviluppo, questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori nel campo della farmacologia per esplorare il trasferimento di substrati attraverso l'epitelio del plesso coroideo *in vitro*.Dopo aver visionato questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come preparare un modello cellulare HIBCCP della barriera emato-encefalica per l'infezione basolaterale con agenti patogeni. Non dimenticare che lavorare con agenti patogeni umani può essere estremamente pericoloso e che precauzioni, come ad esempio lavorare sotto una cappa di sicurezza adeguata, devono essere sempre adottate durante l'esecuzione di questa procedura.

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Questo video mostra un modello in vitro per studiare i patogeni che attraversano la barriera emato-encefalica (BEE). Le cellule endoteliali microvascolari, che esprimono giunzioni strette, formano uno strato endoteliale nella camera superiore, mentre i neuroni, gli astrociti e la microglia rappresentano il parenchima cerebrale nella camera inferiore, separati da una membrana porosa. L'infezione virale nel modello BBB imita l'agente patogeno che passa dal sangue al cervello. Dopo l'introduzione...

Un modello in vitro per lo studio dell'attraversamento patogeno della barriera emato-encefalica e dell'infezione delle cellule cerebrali

Istituzione di modelli umani della barriera emato-encefalica (BBB) ​​può beneficiare la ricerca sulle condizioni del cervello connesse con il fallimento BBB. Descriviamo qui una tecnica migliorata per la preparazione di un modello BBB contatto, che consente coculturing di astrociti e cellule endoteliali cervello sui lati opposti di una membrana porosa.

Migliorata metodo per la preparazione di un cell-based, Contact modello umano della barriera sanguigna del cervello

Qui, descriviamo un modello di barriera emato-encefalica umana che consente di studiare la trasmigrazione dei linfociti nel sistema nervoso centrale in vitro.

L&#39;analisi dei linfociti stravaso utilizzo di un<em&gt; In Vitro</em&gt; Modello del Sangue-Cervello umano Barriera

Capillari cerebrali isolate da tessuto cerebrale umano possono essere utilizzati come un modello preclinico per studiare la funzione di barriera in condizioni fisiologiche e fisiopatologiche. Qui, presentiamo un protocollo ottimizzato per isolare i capillari cerebrali da tessuto cerebrale umano fresco.

Isolamento dei capillari cerebrali da tessuto cerebrale umano fresco

Qui presentiamo un protocollo che descrive l'impostazione di un cellulo in BBB (barriera ematoencefalica)-cultura di poliestere membrana porosa Minibrain inserire il sistema al fine di valutare il trasporto di biomolecole o agenti infettivi attraverso un Bee umano e loro impatto fisiologico sulle cellule cerebrali adiacenti.

Un modello di interfaccia sangue-cervello umano per studiare barriera attraversamenti di agenti patogeni o farmaci e loro interazioni con il cervello

Qui, dimostriamo come impostare un mitemetro a volt poco costoso con frequenza di uscita programmabile che può essere utilizzato con elettrodi bacchette disponibili in commercio per misurazioni transepiteliali/endoteliali di resistenza elettrica.

Un approccio semplice per eseguire misurazioni TEER utilizzando un Amperemetro Volt-Amperemeter self-made con frequenza di uscita programmabile

La barriera emato-encefalica umana previene selettivamente la penetrazione di molecole idrofile e patogeni nel cervello. Diverse patologie, tra cui meningite e delirio postoperatorio, sono associate a una maggiore permeabilità della barriera emato-encefalica. Qui, descriviamo un modello di coltura cellulare endoteliale per testare la permeabilità della barriera mediante attraversamento microbico.

Analisi della permeabilità della barriera sangue-encefalica attraverso l'attraversamento microbico attraverso le cellule endoteliali microvascolari

Questo protocollo descrive un metodo per stabilire un modello umano di barriera emato-encefalica (BBB) in vitro . Le cellule endoteliali e i periciti sono seminati su ciascun lato di un filtro inserto (compartimento sanguigno) e gli astrociti sono seminati nel pozzetto inferiore (compartimento cerebrale). Il modello caratterizzato è stato utilizzato per esperimenti di trasporto di nanoparticelle.

Un sistema di cellule a tripla coltura che modella la barriera emato-encefalica umana

Questo studio utilizza la citometria a flusso e due diverse strategie di gating su plessi coroidi cerebrali di topi perfusi isolati; questo protocollo identifica i principali sottoinsiemi di cellule immunitarie che popolano questa struttura cerebrale.

Isolamento e caratterizzazione delle cellule immunitarie da plessi coroidi di topo microsezionati

Il plesso coroideo (CP), un tessuto poco studiato nelle neuroscienze, svolge un ruolo chiave nella salute e nella malattia del sistema nervoso centrale. Questo protocollo descrive una tecnica di microdissezione per isolare il CP e l'uso della microscopia elettronica a scansione per ottenere una visione d'insieme della sua struttura cellulare.

Visualizzazione della microscopia elettronica a scansione di microdissezione e montaggio intero del plesso coroideo del topo

Scopri come generare un modello cellulare epiteliale del plesso corioideo per studiare le infezioni batteriche dal lato basolaterale della barriera sangue-liquido cerebrospinale umana.

Un Coroide Plesso epiteliali modello cellulare della Barriera Fluid Sangue umano-cerebrospinale per studiare linfezione batterica dal lato basolaterale (Video) | JoVE Journal

Un Coroide Plesso epiteliali modello cellulare della Barriera Fluid Sangue umano-cerebrospinale per studiare l'infezione batterica dal lato basolaterale

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