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DOI: 10.3791/61061-v
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This study presents an enhanced protocol for whole-mount preparation and immunostaining of Drosophila testes, aimed at improving antibody penetration and ensuring reliable labeling for confocal microscopy. The successful application of this protocol is demonstrated through 3D representation and quantification of colocalization experiments on large S4-S5 spermatocytes.
Presentiamo qui un protocollo migliorato per la preparazione a montaggio intero e l'immunostaining dei tester Drosophila, adatto per la microscopia confocale e che consente anche un'etichettatura riproducibile e affidabile. Illustriamo questo protocollo attraverso la rappresentazione 3D e la quantificazione degli esperimenti di colocalizzazione sui grandi spermatociti S4-S5.
La colorazione a montaggio intero dei tessuti di Drosophila, come i campioni di testicoli, è spesso problematica a causa della limitata penetrazione degli anticorpi. Il nostro protocollo di fissazione con NP40 ed eptano consente una marcatura uniforme e riproducibile. Mantenendo la forma del tessuto e consentendo la penetrazione profonda degli anticorpi, questa procedura facilita l'acquisizione riproducibile e quantificabile dell'immunocolorazione in tre dimensioni, sia singolarmente che in studi di colocalizzazione.
Per la valutazione delle cellule germinali diploidi, da zero a 15 ore dopo l'eclosione, anestetizzare le mosche con una breve esposizione all'anidride carbonica e trasferire le mosche su un cuscinetto per mosche. Posizionare il tampone sotto un microscopio da dissezione con un ingrandimento 10X e utilizzare una pinza per rimuovere le teste da cinque a 10 mosche maschi. Trasferisci i corpi di mosca decapitati in 100 microlitri di tampone di Ringer su un vetrino rivestito di silicone su un supporto di sfondo nero, e usa l'ingrandimento 40X e un paio di pinze numero cinque per afferrare una mosca tra il torace e l'addome.
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