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パラフィン包埋組織切片を含むスライドガラスを採取して、ヘマトキシリンとエオシンの染色を開始します。スライドをキシレンを含む脱パラフィン溶液に浸します - 組織周囲のパラフィン層を溶解し、後続のステップで染色にアクセスできるようにします。
組織切片を無水アルコールで処理してキシレンを除去します。濃度を下げたアルコールに組織を浸します。このステップでは、水溶性染料との相溶性を高めるためにアルコールを水に置き換えることで組織を再水和します。
酸化
した形で媒染剤 - 金属カチオンに結合する塩基性ヘマトキシリンで組織を染色する。この複合体はゲノム内の核酸に静電的に結合し、核を紫色に染めます。
染色切片を酸性分化溶液に浸して、細胞質から余分なヘマトキシリンを除去し、色素保持核をはっきりと見せます。組織をアルカリ性ブルーイング剤で処理して、遊離酸を中和します。これにより、紫色の染料の色が青に後退し、核のディテールが強調されます。
スライドを酸性エオシン溶液に浸漬し、細胞質の塩基性タンパク質成分と結合組織線維を赤からピンクの色合いに染色します。過剰なエオシンを除去するために、組織をアルコールで処理します。エタノールの濃度を上げて組織を脱水します。スライドをキシレンに浸して、残っている試薬を取り除きます。
イメージングすると、組織切片の細胞は透明な青色の核とピンク色の細胞質領域を示します。
スライドを100%キシレンに2回、毎回15分間浸して脱パラフィンします。次に、エタノール勾配でスライドを再水和します。各溶液について、液体がスライドからきれいに流れ落ちるまで、1回2秒間、8〜10回浸します。スライドを100%ろ過したハリスヘマトキシリンに4分間置きます。
4分後、脱イオン水の入った容器にすばやく移します。セクションから最も遠い容器の後ろの角に脱イオン水を流します。水が紫色でなくなるまで、定期的に容器を空にします。
グ
ースネックライトを使用して、解剖顕微鏡でヘマトキシリン強度をすばやく確認します。さらに染色が必要な場合は、スライドを100%ヘマトキシリンに1分間戻します。
目的のヘマトキシリン染色が得られたら、スライドを0.05%塩酸に2回浸し、すぐにきれいな脱イオン水を入れた容器に戻します。容器を空にして水を2回補充します。
スライドを95%エタノールの入った2つの容器にそれぞれ30秒間移します。スライドをエオシンYフロキシン-B溶液に2分間入れます。
2分後、スライドを前の95%エタノール容器に戻し、解剖顕微鏡で色の濃さを確認します。染色が十分でない場合は、エオシン溶液に30秒間戻します。必要に応じて繰り返します。
所望の強度の染色が得られたら、スライドを100%イソプロパノールに15秒間移します。新鮮な100%イソプロパノールと交換し、スライドをイソプロパノールにさらに15秒間戻します。このプロセスを合計6回のイソプロパノール洗浄で繰り返します。
100%キシレンに3分間浸漬した後、スライドを1枚取り外し、切片を覆うのに十分な封入剤を加えてから、スライドを100%キシレンに浸します。
スライドにカバーガラスを貼り、細い線だけが見えるまでペーパータオルで余分な封入剤を吸い取ります。次に、ティッシュをキシレンに浸し、スライドの裏側を拭いて滴り落ちた培地を取り除きます。
スライドを段ボールのように頑丈で可動性のある表面に平らに置き、キシレンをフード内で 10 分間蒸発させます。スライドを室温で一晩放置して、イメージング前に封入媒体を硬化させます。