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ネストポリメラーゼ連鎖反応、ネストPCRは、特定の遺伝子配列を選択的に増幅できます。
標的ウイルス配列を検出するには、適切なバッファー中の標的ウイルス配列、dNTP、および熱安定性DNAポリメラーゼを含むより大きなDNA領域を相補的に含む外側プライマーを含むマスターミックスから始めます。
ウイルス感染細胞から抽出した二本鎖ウイルスDNAをこの混合物に加えます。チューブをサーモサイクラーに移します。最初のPCRサイクルを実行します。
変性中に、二本鎖DNAは2つの一本鎖テンプレートを生成します。適切なアニーリング温度では、外側のプライマーは対応する標的配列に結合します。その後、DNAポリメラーゼはdNTPを使用してプライマーを伸長し、増幅されたDNA内の特定の配列を含む大きなアンプリコンを生成します。
これらのアンプリコンを新しいチューブに移します。より大きな増幅DNA内のより小さく、より特異的な配列を標的とする内部またはネストプライマーを含む新鮮なマスターミックスで補完します。2 番目の PCR を実行します。
2回目のPCR中に、DNA鎖は変性します。変性後、ネストされたプライマーは一本鎖テンプレート上の標的部位に結合し、続いてポリメラーゼを介したプライマー伸長が続きます。
2回目のPCRサイクルを数回繰り返して、標的ウイルス配列を排他的に増幅します。
PCR産物を分析して、より小さなアンプリコンを視覚化し、特定のウイルス配列の存在を確認します。
必要な試薬を取り出し、使用する準備ができるまでクリーンルームで氷上に保管します。準備ができたら、試薬を解凍して渦にします。次に、テキストプロトコルの表2に概説されているように、1.5ミリリットルの遠心分離管で各サンプルに対して48マイクロリットルの第1ラウンドPCRミックスを調製し、反応混合物を0.2ミリリットルのPCRチューブに分割します。
テンプレートルームのPCRワークステーションで、cDNAの2マイクロリットルサンプルを第1ラウンドのPCRミックスに加えます。ポジティブコントロールとして2マイクロリットルのCVS-11 cDNAを、ネガティブコントロールとして2マイクロリットルの二重蒸留水を含めます。次に、密封されたチューブをPCRサーマルサイクラーに移し、テキストプロトコルの表3にリストされているパラメータを使用してサイクルします。
まず、テキストプロトコルの表4に概説されているように、1.5ミリリットルの遠心分離管で各サンプルに対して48マイクロリットルの第2ラウンドPCRミックスを調製し、反応混合物を0.2ミリリットルのPCRチューブに分割します。2マイクロリットルの第1ラウンドPCR産物を第2ラウンドPCRミックスに加えます。このPCRラウンドのネガティブコントロールとして二重蒸留水を含めます。次に、テキストプロトコルの表3にリストされているパラメーターを使用してPCRサーマルサイクルを実行します。