Name: ホールマウントラット網膜における免疫組織化学的およびカルシウムイメージング法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-13T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 54 s
Description: 学ぶラット網膜ホールマウントにおける網膜神経節細胞の選択的カルシウムイメージング法。視神経断端へのカルシウム指示薬注入により、電位依存性カルシウムチャネルの寄与を定量的に評価できます。

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私たちは、カルシウムイメージングプロトコルへの貢献のために博士S.ステラとヘレンヴォンに感謝します。私たちは、インタビューのシーンを撮影するための博士K.シートに感謝します。私たちは、原稿の彼女のコメントに博士アーリーン平野に感謝します。この研究開発プロジェクトは、遠隔医療·先端技術UCLAの医学デビッドゲフィン学校で著者によって実施され、米国陸軍医学研究および資材コマンド（USAMRMC）により授与され、投与された請負契約により可能になるとW81XWH-10-2-0077：契約番号の下MDフォートデストリックで研究センター（TATRC）、、。これらの研究のためのサポートも、NIH EY04067およびVAメリットレビュー（NB）から来た。 NCBは、VAのキャリア研究員である。

全ての実験は、実験動物のヒューマンケアと使用に関する米国公衆衛生サービス規定とカリフォルニア大学ロサンゼルス校（UCLA）の動物研究委員会によって発行された実験動物の福祉のためのガイドラインに従って実施した。 3-5週齢の間にオスとメスの成体Sprague-Dawleyラット（チャールズリバー研究所、マサチューセッツ州ウィルミントン）を使用した。 ホールマウント網膜および免疫組織化学プロトコルのための1。動物および組織の準備<ol><li>解剖顕微鏡、非常に微細な先端、はさみ、セルロース濾紙、プラスチックピペット顕微鏡スライド2鉗子：以下の材料やツールを準備します。 </li><li>深くギロチンで断頭続い1〜3％イソフルランで動物を麻酔によって、閉じたチャンバー内にラットを安楽死させる。細胞外溶液を含むペトリ皿にアイリスハサミと場所一対の目を削除します。 A、エイムズ·ミー休止diumまたは生理的溶液を推奨します。 </li><li> [フルオ-4でRGCの埋め戻しが必要な場合は、オプションのステップ]。ステップ2.3から2.4に記載されているようにフルオ-4ラベリングを実行します。 </li><li>解剖顕微鏡（光強度：1.6×10 8の光子/ mm 2の⋅sec）を使用して、眼球の前部を切断することによって角膜を除去します。ピンセットで内側の網膜表面からレンズおよび硝子を外します。硝子体を除去するには、1の鉗子でしっかりと強膜を保持することによって眼球を安定させる。静かに他の鉗子と網膜の中心に向かって硝子体ベースをはがします。この段階での製造は、凍結切片のために使用されているアイカップ、呼ばれています。凍結切片についての詳細は参考文献14,15に記載されています。 </li><li>アイカップから網膜を削除します。その後、網膜が平らすることを可能にするために4つのカットを行う。静かに光受容体層を上にして顕微鏡スライド上に網膜をマウントします。網膜に、溶液の一滴を追加し、CEを入れる網膜上lluloseろ紙。網膜は、ろ紙に付着すると、溶液中に戻って網膜を配置します。必要に応じて、ブラシや鉗子で網膜を平らに。 </li><li>固定のために10〜15分間、4％PFAにwholemounted網膜を置きます。 </li><li> 0.1 Mリン酸緩衝液（PB）（pH7.4）中で30分間wholemounted網膜を3回洗浄する。 4°Cで一晩、0.3％のTriton-X 100および0.1％のNaN 3を含む0.1M PB中の5％正常ヤギ血清またはロバ血清で網膜をブロックする。私たちは、ブロッキングのソリューションおよび抗体を保存するためのすべてのステップを500μlの最終容量を推奨。 </li><li>翌日、4℃で一次抗体5-7日で網膜のwholemountsインキュベートする。最適な希釈は、ユーザによって決定されなければならない。 </li><li> PB、0.1Mで網膜3×30分を洗浄し、一次抗体（濃度1：1,000）の種に対して向けられる、対応するフルオロフォア結合二次抗体で4℃で一晩インキュベートする。 </li><li> PBで30分間ずつ3回の最終洗浄後、培地を実装する際の網膜をマウントします。長期保管のためのマニキュアでカバーガラスを密封。店舗のサンプルを4℃で、光から保護します。 </li></ol>カルシウムインジケーター色素でラットホールマウント網膜における神経節細胞および軸索の2ラベリング<ol><li>哺乳類リンゲル含む（mM単位）125のNaCl、3のKCl、2 CaCl 2を千ミリリットル、1.25のNaH 2 PO 4、1のMgCl 2、25 NaHCO 3、および95％O 2/5％COで泡立て10グルコースを準備&#173; 2。 </li><li>ステップ1.2〜1.4で説明したように解剖を行います。 </li><li>カルシウム指示薬色素で網膜神経節細胞（RGC）およびその軸索をロードするには、注射器を用いて眼球に視神経の切り株約1mm後方へのFluo-4 pentapotassium塩（H 2 O中の40mMストック）0.5μlのを注入。の[Caの神経節細胞の動的増加を測定する2+ </SUP&gt;] iのようなのFluo-4 345 nMで、そのK dでの高い親和性を持つ指標は、最適である。フルオ-4カルシウムと結合すると&gt; 100倍の発光増大をもたらす非常に高い量子効率を有するという付加的な利点を提供しています。 </li><li>哺乳類リンゲル、95％O 2/5％COで泡立てにアイカップを置きます&#173;暗所で室温で1時間2。 </li></ol>網膜神経節細胞および軸索のための3カルシウムイメージングプロトコル。 <ol><li>ステップ1.1から1.4で説明したように、目、レンズと硝子体を除去します。アイカップから網膜を分離し、象限に分ける。マウント1象限神経節細胞をスライドガラス上の面を上にし、それを安定させるためにハープスライスグリッドを使用しています。哺乳類リンゲルで暗順応他の作品は、95％O 2/5％COで泡立ててください&#173;後で使用するために氷上で2。 </li><li>哺乳類のリンゲル液で記録チャンバーを表面かん流すると95％O 2/5％CO 2で連続的にバブリングし、溶液を維持する。 </li><li>イメージ顕微鏡下で組織。室温（〜23℃）または行動実験は、ステージを温める試料の下に水浴を加熱又は試料の表面に温風を適用することによって、生理的温度を達成する。 注：これは、多くの細胞機能は、細胞内ホメオスタシス16を維持するのに重要な役割を果たして温度によって調節されることに留意することが重要である。しかしながら、温暖化対策の導入は、光退色の速度を増大させる媒体の蒸発と熱膨張17によるドリフトの焦点を合わせることができる。室温の使用は、フルオ-4 18の細胞内区画化を減少させます。 </li><li>薬が存在しない場合に2対に高K +パルスの制御を行います。アクティブにするために、各パルスの間に33秒のために60 mMまでの3mMからO [K +]を上昇させることによりRGCをし、RGC軸索を脱分極8チャンネル重力駆動型灌流システムとVGCCs。上昇したK +溶液中のisosmolarityを維持するために、57 mMのことではNa +を減らします。 </li><li>一般的または特定のカルシウムチャネル遮断薬を用いて、カルシウムシグナルに異なるVGCCsの寄与を評価する。例えば、非特異的なカルシウムチャネル遮断薬の投与後のカルシウムシグナルの減少、コバルトは、高K + -evokedカルシウムシグナルにVGCCsの寄与の半定量的尺度を提供した。 </li><li> （ 図2）関心のRGCの周囲の関心領域（ROI）を配置することによって蛍光強度値を取得する。 </li><li>最初の高K +ピークによって生成変化に対して第二の高K +ピークにより生じる蛍光強度の変化を正規化します。その後、特定のカルシウムチャネル遮断薬の試験のために、唯一の対の第二の高K +パルス中に薬物を適用し、これに対してピークを正規化最初のピーク値。高K +ピークに対する薬物の影響を測定するためには、最初のそれによって、第2のK +のピークの振幅を分割します。分析は、薬物の非存在下で測定対に高K +のピークに由来し、その一致したコントロールに対し、これらの値で実行する必要があります。 </li><li> 5秒間隔で画像を取得します。光退色を避けるために、できるだけ低いレーザー励起を維持する。光電子増倍管は、505 nmのLPフィルタを通して蛍光発光を収集しながら、アルゴンレーザーの488nmのラインによる励起を提供します。 </li></ol>

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</ol>

著者は全く開示がない。

網膜神経節細胞とその軸索のカルシウム動態を解析するために、網膜wholemountsにおける神経節細胞へのFluo-4の局在化、2）カルシウムイメージングを示すために1）免疫組織化学：この記事では、2つの異なる技術を記載している。 wholemountsを用いた免疫組織化学は、げっ歯類網膜20-23におけるタンパク質の局在を明らかにするために使用されてきた。ただし、いくつかの制限があります。染色の質は、そのそれぞれの抗原および関心のある特定の層に網膜組織に浸透する能力を認識する抗体の能力に大きく依存する。これらの問題は、最大7日間、一次抗体でのインキュベーション時間を増大させるのTriton-Xの濃度を増加させ、および/または神経節細胞層を介して抗体の拡散を可能にするためにろ紙ことなく網膜をインキュベートすることによって向上させることができ、光受容体。他の制限はduratiです上および固定の濃度。他の抗体は、短い固定期間を必要としながら、いくつかの抗体は、組織は1時間固定した場合より良い仕事。特定の抗体は、4％PFA固定で最適に動作しながら、同様に、他の人が...

現在の1,2チャネルCaは全細胞のこれらの成分の薬理学的遮断を介して決定される網膜神経節細胞（RGC）は、L、N - 、P / Q-およびT-型VGCCを発現する。 VGCCは伝達物質放出、遺伝子転写、細胞調節とシナプス可塑性の3,4,5に関与している膜貫通多量体タンパク質である。チャネルの生物物理学的および薬理学的特性を確立するサブユニットを形成する大規模な、膜貫通α1細孔、2δサブユニットと細胞内のβサブユニットα、主に細胞外の補助：機能VGCCsはサブユニットの少なくとも3つの別個のクラスで構成されています。異なるα1サブユニットと、後者の2つのフォームヘテロメリック複合体および原形質膜6へのチャネルのゲーティング動態および人身売買を変える。 ここ数十年にわたり、多くの技術は、タンパク質expreを研究するために使用されてきたそのような免疫組織化学、酵素免疫測定法、ウエスタン分析およびフローサイトメトリーなどのssion、。これらの技術は、関心対象の所与のタンパク質の検出のための特異的抗体の使用を必要とし、異なる組織における特定のタンパク質の局在化および分布のための強力なツールを提供する。抗体が容易でない場合に、in situハイブリダイゼーション 、cDNAマイクロアレイおよびリボヌクレアーゼ保護アッセイにおいて 、ノーザンブロット分析、RT-PCRなどの特定のタンパク質のmRNA発現レベルを検出および定量するために使用される技法は、リアルタイム定量的RT-PCRは、別のアプローチを提供する入手可能であるか、または特定のタンパク質の発現レベルが7低い場合。しかし、このような分子技術の使用への1つの制限は、遺伝子配列の同定が必要である。 網膜中のタンパク質を局在化するために、免疫組織化学は、ホールマウント網膜上で実行することができる。 RGCのアクセシビリティ、ホールマウントにより準備はRGC細胞体とその軸索に特定のタンパク質の局在を研究するための優れたプラットフォームを提供します。 それらの局在に加えて、RGCの中VGCCsのいくつかの機能的特性は、カルシウムイメージング技術の使用によって実証することができる。私たちは、選択的に細胞内カルシウム動態を測定するためにカルシウム指示薬色素でのRGCを標識するカルシウムイメージングプロトコルを記述する。異なる細胞区画内カルシウムシグナルの異なるVGCCsの寄与は、サブタイプ特異的カルシウムチャネル遮断薬を用いて単離することができる。 おそらく、ここで説明するカルシウムイメージング法の最も有益な側面の一つは、同時に独立複数のRGCおよびその軸索を記録する機能である。例えば、全細胞パッチクランプ記録のような多くの生理学的技術は、高時間分解能の膜電流の記録を、体細胞またはthesというの軸索源を提供するが記録された電子電流が判別できず、記録は、一度に1つのニューロンから作ることができる。多重電極アレイ（MEAは）同時に多数のセルからのスパイクを記録することが可能であるが、カルシウムチャネルの、例えば、異なるサブタイプの活性化を検出することも、区別することもできない。 MEAは、優先的に大きなスパイク9を生成する細胞から、指定された電極8とレコードの近くに位置している細胞から記録します。光学イメージング方法は、単一細胞の微小電極およびパッチクランプ記録とMEAの記録から得られた情報と統合することができる細胞の全集団の同時かつ独立の録音を可能にするための代替戦略を提供する。ここで説明するカルシウムイメージング技術は、RGCのカルシウム動態を研究するために使用されたが、パッチクランプおよびMEAはまた、イオン電流およびRGCのスパイク特性を解明するために並列で使用することができる。 <pクラス= &quot;jove_content&quot;&gt;避難アマクリン細胞は10網膜マウスにおける神経節細胞層におけるニューロンの人口の約60％を占めているので、私たちの目標は、選択的に、合成カルシウム指示染料でのRGCを標識するローディング技術を使用していたホールマウントの準備。合成カルシウム指示薬色素が細胞内カルシウム動態の研究のための優れたプラットフォームを提供するが、その広範な使用が効果的に与えられたネットワーク内のニューロンの特定の集団をロードすることができないことによって妨げられてきた。そのようなバルク·ロード11及びエレクトロポレーション8,12などの多くの技術が、細胞の全体の集団が、しかしながら、このような技術は、特定の細胞型を区別しないロードするために行われている。遺伝的にコードされたカルシウム指示薬しかしながら、このような方法は、トランスジェニック動物13の生成を必要とする、選択的に細胞の特定の集団を標識する能力を提供する。私たちの技術は、メトを記述dは選択的にカルシウム指示薬色素の視神経の切り株の注射を介してホールマウント準備でのRGCを標識する。 総合すると、この資料に記載されている構造的および生理学的な技法は、RGCを、それらの軸索内局在およびカルシウムシグナルにVGCCsの寄与を研究するためのプラットフォームを提供します。

<table><tbody><tr><td>ストレートハサミ</td><td>WPI</td><td>14124-G</td><td>解剖ツール</td></tr><tr><td>ストレート鉗子</td><td>WPI</td><td>501985</td><td>解剖ツール</td></tr><tr><td>湾曲した虹彩はさみ</td><td>WPI</td><td>504487</td><td>解剖ツール</td></tr><tr><td>セルロース濾紙</td><td>ミリポア</td><td>HABP04700</td><td></td></tr><tr><td>冬眠 A</td><td>Invitrogen</td><td><a href="http://products.invitrogen.com/ivgn/en/US/adirect/invitrogen?cmd=catProductDetail&amp;productID=A1247501">A12475-01</a></td><td>media</td></tr><tr><td>ベクタシールド</td><td>ベクトル</td><td>H-1000</td><td><a href="https://www.google.com/url?sa=t&amp;rct=j&q=&esrc=s&ソース=ウェブ&cd=1&cad=rja&sqi=2&ved=0CC0QFjAA&url=http%3A%2F%2Fwww.vectorlabs.com%2Fcatalog.aspx%3FcatID%3D279&ei=VAHbUb_fBceeiQLK2IHIDw&usg=AFQjCNHijFTTB8p19FMPQ5hg_qTawXU9mA&sig2=FJCfB9fzKR_TmjxoGvhLcg&bvm=bv.48705608,d.cGE">Mounting Media for Fluorescence</a</td></tr><tr><td>>Fluo-4 pentapotassium</td><td>Invitrogen</td><td>F-14200</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Abbott Laboratories</td><td>05260-05</td><td>麻酔</td></tr><tr><td>顕微鏡スライド</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-178-277</td><td></td></tr><tr><td>Zeiss LSM 5 Pascal 顕微鏡</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Axioplan 40X (NA 0.8) 対物レンズレンズ</td><td>ツァイス</td><td></td><td></td></tr><tr><td>アレクサ フルーア 488 ヤギ 抗ウサギ IgG (H+L) 抗体</td><td>分子プローブ</td><td>A-11034</td><td>二次抗体</td></tr><tr><td>RBPMS</td><td>ProSci, Poway, CA</td><td></td><td>ウサギ ポリクローナル抗体&nbsp;RBPMSのN末端に対して生成された&nbsp;ポリペプチド(RBPMS4-24)、GGKAEKENTPSEANLQEEEVR、商業ベンダー(ProSci、Poway、CA)による。</td></tr></tbody></table>

ホールマウントラット網膜における免疫組織化学的およびカルシウムイメージング法

Immunohistochemical and Calcium Imaging Methods in Wholemount Rat Retina

本論文では、ツール、試薬、およびのために必要とされる実践的な手順を説明します。免疫組織化学のためのホールマウント網膜の1）成功した​​準備をして、網膜内カルシウムシグナル伝達を媒介する電位依存性カルシウムチャネル（VGCC）の研究のための2）カルシウムイメージング神経節細胞。われわれが記述するカルシウムイメージング法は、神経節細胞層内に変位アマクリン細胞の非特異的荷重に関する問題を回避する。

特異的抗体を用いて免疫標識は、網膜内の関心のある特定のタンパク質の局在を研究するためのプラットフォームを提供し、カルシウムイメージング技術は、網膜神経節細胞とその軸索のカルシウム動態にVGCCsの寄与の研究を可能にする。 選択したRGC 19を標識する神経節細胞タンパク質RBPMS（複数のスプライシングとRNA結合タンパク質）に対する抗体を使用することによって、私たちのFluo-4標識は神経節細胞（ 図1）に制限されていることを示すことができた。この技術から予想され得るような切り株注入は、全ての神経節細胞の標識化にはつながらない。 ウサギポリクローナル抗体は、商業ベンダー（ 表1）により、RBPMSポリペプチド（RBPMS 4-24）、GGKAEKENTPSEANLQEEEVRのN末端 ​​に対して作製された。 RBPMSは、哺乳動物の間で高度に保存され、ポリペプチド配列を使用<html>免疫化のために（NCBIタン...

免疫組織化学プロトコルは、網膜中の特定のタンパク質の局在化を研究するために使用される。カルシウムイメージング技術は、網膜神経節細胞および軸索のカルシウム動態を研究するために使用される。

In this paper we describe the tools, reagents, and the practical steps that are needed for: 1) successful preparation of wholemount retinas for ...

本手順の全体的な目的は、視神経断端へのカルシウム指示薬の注入を通じて、全層標本（ホールマウント）における網膜神経節細胞を選択的に標識することです。まず、flow fourなどの非常に親和性の高いカルシウム指示薬を視神経断端に注入します。次に、網膜を眼球から分離し、ガラススライドに封入するために4つの領域に分割します。生理学的条件を模倣するように設定された記録室において、カルシウム信号に対する電位依存性カルシウムチャネルの寄与を解析します。網膜神経節細胞において、チャネル遮断剤を用いて脱分極した細胞での測定が可能です。最終的に、この結果から、高カリウム誘発性カルシウムシグナルのような信号に対する電位依存性カルシウムチャネルの寄与を半定量的に測定することができます。エレクトロポレーションやバルクロードなどの既存の手法に対する本手法の主な利点は、ホールマウント標本、解剖したラットの眼、および hibernate a aims medium または同様の溶液において、網膜神経節細胞とその軸索を選択的に標識できる点にあります。次に、カルシウムイメージング実験を行う場合は、Fluo-4を用いて網膜神経節細胞を逆行性に充填します。水で再構成した40 mMのFluo-4五カリウム塩 0.5 µLを、眼球から後方に約1 mmの位置にある視神経断端に注入します。その後、眼球を哺乳類用リンガー液に移します。95% oxygen、5% carbon dioxideを用いてバブリングを行うか、または室温で1時間静置します。調製物は暗所に保存してください。光強度を制御した顕微鏡下で眼球の解剖を行います。カミソリの刃を用いて眼球の前面に小さく丁寧に切開を加え、角膜を取り除きます。次に、ピンセットを使用して網膜の内表面から水晶体を取り除きます。強膜をしっかりと固定してください。もう一方のピンセットで硝子体を removing する際、硝子体基底を網膜の中心に向かってゆっくりと剥離します。こうして作成された I cup と呼ばれる標本は、免疫組織化学的なホールマウント標本の作製、カルシウムイメージング標本の作製、または免疫組織化学的なホールマウント標本を作製するための網膜横断切片の作製に利用できます。まず、網膜が平らに広がるように4箇所に切開を加えます。網膜の神経節細胞層を下に向けて、ガラスカバースライドの上に置きます。次に、網膜に溶液を1滴加え、必要に応じてセルロースフィルターペーパーで覆い、ブラシまたはピンセットで網膜を平らにします。網膜が完全に平らになり、フィルターペーパーから剥がれたら、再び溶液の中に戻します。まず試料を処理するため、4% paraform aldehydeに10〜15分間浸します。次に、pH 7.4の0.1 molar phosphate bufferで、1回につき30分間、計3回（合計90分間）網膜を洗浄します。その後、500 microlitersのブロッキング溶液中で、4°Cにて一晩インキュベートします。この溶液は、0.3% Tritonおよび0.1%アジ化ナトリウムを含むリン酸緩衝液に、5%の正常ヤギ血清またはロバ血清を加えたものです。その後5〜7日間、網膜を一次抗体溶液中で4°Cにてインキュベートします。この溶液の組成は、経験的に決定する必要があります。固定液を洗浄したときと同様に、一次抗体溶液を洗い流してください。次に、網膜を1:1000に希釈した二次抗体で、4°Cで一晩インキュベートします。二次抗体をリン酸緩衝液でさらに3回洗浄して除去します。その後、網膜を可視化のために封入し、マニキュアで密封します。これらのスライドは、4°Cの暗所で保存する必要があります。まず、リンガー液中のIカップを用いて、カルシウムイメージング用の全層標本作製を開始します。最初に、網膜組織を4等分に切断します。1つの象限を、神経節細胞層を上（光受容体層を下）にした状態で記録チャンバーに平らに置きます。周囲をキムワイプで慎重に拭き取り、グリスを塗布したハープを組織の上にそっと置きます。次に、網膜標本をリグにセットし、8チャンネルの重力駆動式灌流システムのセットアップを完了させます。ハープを設置した後に固定した網膜が動いた場合は、慎重にハープを取り外して洗浄してください。網膜周辺の領域を乾燥させ、再度ハープを固定します。記録チャンバーを哺乳類用リンガー液で満たし、95% oxygen、5% carbon dioxideで溶液を絶えずバブリングさせてください。まず、薬剤を添加しないコントロールとして、3 mMから60 mMへの高カリウムパルスを33秒間、2回ペアで実施します。調製が正しく行われていれば、脱分極によりRGCの電位依存性カルシウムチャネルが活性化するはずです。その後、本実験に進みます。L型電位依存性カルシウムチャネル遮断薬であるニフェジピンは、脱分極誘発性カルシウムシグナルに対するL型電位依存性カルシウムチャネルの寄与を評価するために一般的に使用されます。非特異的なカルシウムチャネル遮断薬を用いることで、電位依存性カルシウムチャネルを非選択的に遮断することが可能です。5秒ごとにプレパレーションをスキャンし、蛍光標識されたrgcの画像を可視化および取得します。レーザー出力は可能な限り低く設定して使用してください。励起波長は488 nanometersに設定し、蛍光は505 nanometer LPフィルターを用いて収集してください。上述のプロトコルに従い、複数のスプライシングフローを持つRNA結合タンパク質である神経節細胞タンパク質R-B-P-M-Sに対する免疫ラベル化を行いました。4。抗体の仕様に基づき、染色は実際に神経節細胞に限定されていました。次に、rgcから得られた蛍光強度値を用いて、RGCにおけるカルシウム信号への電位依存性カルシウムチャネルの寄与を検討しました。基底レベルにおいて、flow fourで標識されたRGCおよびRGC軸索が観察されます。蛍光強度値を取得するため、神経節細胞、細胞体、および/または軸索にROIを設定しました。ホールマウント標本に高カリウム溶液を投与すると、RGCの蛍光信号が増加しました。その後、2回目の高カリウムパルス時にコバルトを共存させたところ、蛍光強度値の減少が認められました。このビデオを視聴することで、全層標本において合成カルシウム指示薬色素を用いて網膜神経節細胞を選択的に負荷する方法について、十分に理解することができます。

immunohistochemical-calcium-imaging-methods-wholemount-rat

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

新生児マウスの網膜は血管新生を調節する別の遺伝子や薬剤の役割の調査を可能にし、血管新生のよく特徴付け生理学的モデルを提供...

血管新生を調査するために新生児マウス網膜の全体のマウント免疫蛍光染色<em生体内で&gt;</em

ここで説明するプロトコルは、全量網膜製剤の構造評価のためのものです。これには、組織解剖、親水性ポリテトラフルオロエチレン(PTFE)メンブレンインサートへのマウント、蛍光マーカーによるボーラスローディング、細胞およびシナプス成分の免疫組織化学的分析のためのカルボジイミドおよびパラホルムアルデヒドによる固定の比較の説明が含まれます。...

イメージングと免疫組織化学のための網膜ホールマウントの準備のために最適化されたプロトコル

我々は、マウス網膜のex vivoでのスライス標本を用いて、錐体光受容体の軸索末端におけるCa 2+動態を監視するためのプロトコルを記述します。このプロトコルは、重要な哺乳動物モデル系におけるコーンのCa 2+シグナル伝達の包括的研究、マウスを許可します。...

イメージングカルシウム<sup&gt; 2+</supマウス網膜の光受容コーン軸索末端で&gt;ダイナミクス

ラット網膜血管ペリサイト、すなわち、低温セクション、全体-マウント、および血管ネットワークの低張性分離の免疫組織化学的可視化のための 3...

網膜の低温電子顕微鏡セクション全体-マウント、および微小血管の免疫組織化学的可視化の低張性分離血管準備

in vivoイメージングは、健康と疾患における生物学の研究のための強力なツールです。このプロトコルは、標準的な2光子顕微鏡によるマウス網膜の経瞳孔イメージングについて説明しています。また、網膜の複数の細胞コホートを蛍光標識するためのさまざまなin...

経瞳孔二光子マウス網膜のin vivoイメージング

我々は、腹側から成虫マウスの脳幹を暴露するプロトコルを提示する。ミニチュア顕微鏡で傾斜屈折率レンズを用いることで、インビボでのオリーブ神経ソマタの活性を調べるためにカルシウムイメージングを用いることができる。...

インビボ マウス劣オリーブにおけるカルシウムイメージング

本プロトコルは、フードラップ、透明シリコーン、およびカバーガラスを使用して、大きな(6 x 3 mm2)頭蓋窓を作成することについて説明しています。この頭蓋窓は、同じマウスでの in vivo...

インビボ 大きな頭蓋窓を用いたマウスからの広視野および2光子カルシウムイメージング

このプロトコルは野生型マウスの皮質をそのまま残している間2光子の顕微鏡検査との単一ニューロンの活動をイメージ投射すること、および部分皮質の突然変異体のマウスの広視野顕微鏡検査が付いている全体のSCをイメージ投射することを含む目がさめているマウスの優秀なcolliculus (SC)のカルシウム応答を、イメージ投射するためのプロシージャを詳述する。...

マウス上結腸におけるカルシウムイメージング

人工網膜には、視覚を発生させる能力があります。新しいプロテーゼの開発を進めるためには、移植前にデバイスを試験する ex vivo...

電気刺激フラットマウント網膜におけるカルシウムイメージング

遺伝子コードされたカルシウム指標(GECI)は、感覚ニューロンシグナル伝達の堅牢な集団レベルの分析を可能にします。本研究では、ラット三叉神経節ニューロン活性の in vivo GECI可視化を可能にする新しいアプローチを開発しました。...

生体内 ラット三叉神経節における感覚ニューロンのカルシウムイメージング

このプロトコルは、ホールマウントマウス網膜を単離し、免疫染色を実施してすべての網膜神経節細胞(RGC)を標識する手順を説明しています。このプロセスに続いて、AIベースのソフトウェアを使用してRGCをイメージングし、自動的にカウントし、マウス網膜全体のRGCを定量するためのシンプルで高速かつ正確な方法を提供します。...

マウス網膜神経節細胞のホールマウント免疫染色および自動計数(英語)

学ぶラット網膜ホールマウントにおける網膜神経節細胞の選択的カルシウムイメージング法。視神経断端へのカルシウム指示薬注入により、電位依存性カルシウムチャネルの寄与を定量的に評価できます。

ホールマウントラット網膜における免疫組織化学的およびカルシウムイメージング法

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