Name: 神経発達障害のマウスモデルにおける空間学習した後、海馬ニューロン活動の免疫組織化学的可視化 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-12T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 43 s
Description: 学ぶ 海馬ニューロン活動の免疫組織化学的可視化法。モリス水迷路課題後のマウス脳切片でリン酸化変化を検出し、野生型とノックアウトマウスの認知機能差を明らかにする神経発達障害研究に応用可能です。

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私たちは支援のためCIBIO（トレント大学）とCNR神経科学研究所の管理スタッフに感謝したいと思います。ジョバンニProvenzanoはFondazione Veronesi（ミラノ、イタリア）からのポスドクフェローシップでサポートされています。この作品は、イタリアの大学研究省（PRIN 2008グラント＃YBに200894SYW2_002とPRIN 2010年から2011年のグラント＃2010N8PBAA_002）、トレント大学（YBにCIBIO起動グラント）とテレソン財団（へグラント＃のGGP13034によって賄われていましたYB）。

全ての実験は、欧州共同体指令63分の2010 / EUに準拠して行われた、健康のイタリアの省によって承認されました。 1.動物実験、住宅と治療<ol><li>各機関動物ケアのガイドラインに従ってマウスを使用して、すべての実験のプロトコルを実行します。 </li><li>食料と水自由摂取させ 、12時間の明/暗サイクルの動物を維持します。 </li><li>ハウス2-4の群のマウスには、おがくずや寝具材料と標準サイズのポリカーボネート製マウスケージに毎週変更しました。 </li><li>疾患に対する感受性は神経発達障害の異なるマウスモデルにおいて、年齢や性別に応じて変化することができるので、年齢と性別をマッチさせたマウスを使用してください。 </li><li>統計的有意性（免疫組織化学実験のための行動の研究と遺伝子型ごとに4匹のマウスについての遺伝子型あたり10匹のマウスの最小）に達するまで、動物の適切な数を選択してください。 </li></ol> 2.モリス水迷路（MWM） <ol><li>円形タンク（直径100センチメートル、高さ50センチメートル）を使用します。 <ol><li>タンク周りの部屋のディバイダーにいくつかの視覚的な手がかりを置き​​ます。 </li><li> 4架空の象限のうちの一つの中心にある固定位置にタンクに直径10cmのプラットフォームを配置します。すべてのトレーニングセッション全体のすべての試験について同じ象限内に隠されたプラットフォームをしてください。 </li><li>プラットフォームは水の表面の上1cmであるまで、水道水でプールを入力します。平衡化する水の温度は22℃に近くなければなりません。このステップは数時間かかることがあります。水の温度を平衡化するために必要な時間を短縮するお湯を加えます。 </li><li>水を不透明にするために白、非毒性塗料の約1.5〜2 Lを追加します。 </li></ol></li><li>トラックの取得手順<ol><li>標準のCCDカメラやビデオボードとMWMの追跡システムを設定します。このようなパスの長さのようないくつかの変数を監視し、分析するために、ビデオ·トラッキング·システムを選択して、ESCAPEの遅延、および時間は、各象限に費やされました。 </li><li> 4つの象限にアリーナを分割し、ライブトラッキングのための動物と背景との間の最適なコントラストを確保するために、検出設定を調整します。 </li><li>プラットフォーム領域を指定します。 </li><li> 60秒、最大試行時間を設定します。 </li></ol></li><li> MWMテスト<ol><li>行動試験の前に、マウスに彼らはプールや空間キューを見ることができない領域で20〜25分間の適応期間を可能にします。 </li><li> （それらの間に20〜30分間隔で2回連続の試験日）9日間各マウスを訓練します。 </li><li>パソコンとカメラに切り替え、ビデオ追跡システムソフトウェアを起動します。 </li><li>その頭は、4つの開始位置（北、南、東、西）のいずれかから開始し、プールの側に指摘して、その尾によってマウスを取り、水の中に配置します。各マウスについて、開始位置は異なり、試験全体でpseudorandomizedでなければなりません。 </li><li>マウスが泳いでみようとplatfを検索60秒の最大のためのORM。動物がプラットフォームに到達すると、それは20秒間プラットフォームに滞在することを可能にします。 </li><li>マウスがその時間内にプラットフォームを見つけることができなかった場合は、ゆっくりその尾をつかんでプラットフォームにマウスを案内し、それが20秒のためにそこに滞在してみましょう。動物はすべて2つの試験を完了した後、タオルでそれを乾燥させ、ケージに戻します。 </li><li>訓練期間のそれぞれの日は、同じ手順（手順を2.3.4-2.3.6）繰り返します。 </li><li>最後のトレーニングトレイルの後9日目に、プローブテストを実行します。 </li><li>プールからプラットフォームを削除します。 </li><li>マウスが泳いでみようと60秒の最大のためのプラットフォームを検索します。 </li><li>定期的に、それは同じ（22°C）であるべきであるように、水の温度をチェックし、プールを一掃。 </li></ol></li></ol>灌流動物からの切片の調製<ol><li> MWMの最後にマウスを生け贄に捧げます。遺伝子型あたり4匹のマウスをeuthanizの前に麻酔されなければなりませんローカルおよび国際的なガイドラインに従ってエーション。 </li><li> 10-15 PBS中の4％パラホルムアルデヒド、続いて4-5分間、リン酸緩衝生理食塩水（PBS）で（出血を可能にし、灌流するために左心室に蝶のカニューレを導入するシザーauriclewith権利をカット）経動物を灌流22分。 </li><li>解剖し、少なくとも12時間、4℃で4％パラホルムアルデヒドで脳をポスト修正。 </li><li>スライスのために必要とされるまで4℃で0.1 M PBSおよびストア内の0.02％アジ化ナトリウムを15 mlを含む50ミリリットルポリスチレンコニカルチューブに脳を置きます。 </li><li>ビブラ切断前に小脳をカットし、削除します。 </li><li>ビブラのホルダープレート上に、瞬間接着剤を使用して、切断部位で脳を直立接着。 </li><li>適切なビブラトームに、背側海馬を通してシリアルために、20〜40ミクロ​​ン厚の冠状切片に脳をカット。 </li><li>ペイントブラシでビブラトーム切片を収集し、2に転送各ウェルについて、0.1MのPBS 1 mlを含む4マルチウェルプレート。 </li><li> 4ºCで、PBS中の0.02％アジ化ナトリウムで、PBS中の短期または長期のためのショップのセクションでは、（組織には、最大1年間に使用されるかもしれません）。 </li></ol> 4.免疫組織化学<ol><li>各ウェルについて、0.1MのPBSを500μlを含む24マルチウェルプレートに転送3-5各マウスについて、背側海馬のセクションでは、。 </li><li> 0.1 M PBS（穏やかに振盪しながら5分間、3回）の500μlの各ウェルに含まれるセクションを洗ってください。 </li><li>穏やかに攪拌しながら20分間、PBS中の1％H 2 O 2のセクションをインキュベートすることによって、内因性ペルオキシダーゼ活性をクエンチします。 </li><li>穏やかな撹拌（3×5分）で、0.1M PBSでセクションを洗ってください。 </li><li>組織の透過性：PBS中の0.2％トリトンX-100で5分間のセクションをインキュベートします。 </li><li>上記の手順（4.4; 4.5）の間に、（numbe全実験のための十分なブロッキング緩衝液（PBS中10％ヤギ血清および0.1％トリトンX100）を作りますセクションのR×100μL×3段階）。 </li><li>注：（ビオチンに結合）二次抗体が作られたのと同じ種から使用血清を。 </li><li>穏やかに攪拌しながら室温（RT）で1時間バッファー（100μL/セクション）をブロック内のセクションをインキュベートすることによって非特異的抗体の結合を防ぎます。 </li><li>穏やかに撹拌しながら、4℃で一晩、ブロッキング緩衝液中で希釈した一次抗体（のpERK）のセクションをインキュベートします。 </li><li>穏やかな撹拌（3×5分）で、0.1M PBSでセクションを洗ってください。 </li><li>穏やかに攪拌しながら室温で1時間（ステップ4.6で使用したものと同じ）を、ブロッキング緩衝液中に希釈したビオチン（250 1）とコンジュゲート二次抗体でインキュベートします。 </li><li>アビジンとビオチン複合体に室温で少なくとも30分を必要とするため、同時にABC試薬を準備します。 </li><li>製造業者のプロトコルに従ってABC試薬の必要量を準備します。 </li><li>穏やかな撹拌（3×5分）で、0.1M PBSでセクションを洗ってください。 </li><li> IncubatABC試薬で室温で45分間のEセクション。 </li><li>穏やかな撹拌（3×5分）で、0.1M PBSでセクションを洗ってください。 </li><li> DABは発癌性や催奇形性であるとしてDAB作業溶液を調製し、DABを含むすべてのステップは、ドラフト内で行う必要があります。 </li><li>プラスチック転送ピペットで新しいプレートにDAB溶液を移します。 </li><li>手でDAB作業溶液にゆっくりと旋回プレートを含むプレートに置いてセクション、セクションの最大エクスポージャーを可能にします。 </li><li>適切な信号が発生するまで、顕微鏡のDAB反応（2-5分）を監視します。 </li><li> 0.1 M PBS（3×5分）で組織を洗浄することにより、所望の色の強さで反応を停止します。 </li><li>一晩換気フード内の残りのDAB基質溶液を不活性化し、実験室でのガイドラインに従ってこれを処分する漂白剤を使用してください。 </li><li>ゼラチンのマウント切片をPBSに浮遊させることによって、スライドをコーティングしました。次いで、室温で少なくとも3〜4時間でそれらを乾燥させます。 </li><li> 50％、70％、95％で連続切片を脱水100％の2分毎エタノール、および5分間、100％キシレン中で明確。 </li><li>マウンティング培地を用いてカバースリップし、一晩乾燥さヒュームフードのままにしておきます。 </li></ol> 5.セル数<ol><li>カウントのpERK陽性細胞は、背側海馬のレベルで三から五の項では、動物ごとに分析する必要があります。 </li><li>適切な顕微鏡を用いて200倍の倍率で各セクションからの複数の明視野画像を取得し、その後、画像処理ソフトウェアを使用して組み立てます。 </li><li> ImageJのフリーソフトウェアを使用して、TIFF-変換モザイク画像上の細胞数を実行します。 </li><li> 100×100μmの各2〜3カウントボックスの上に門と顆粒細胞層中のpERK染色細胞をカウントします。 </li><li>細胞密度は、ウィンドウをカウント当たりの標識細胞の数（100×100ミクロン）と表現します。 </li><li>遺伝子型の間に有意差を評価するために統計分析を実行します。これは、スチューデントのtを用いて達成することができます試験またはANOVAは、市販のソフトウェアを使用して、適切な事後検定を行いました。 P &lt;0.05で統計的有意性レベルを設定します。 </li></ol>

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著者らは、開示することは何もありません

- / -マウス、神経発達障害のマウスモデルここでは、たEn2でMWM後の神経活性化を明らかにするためのpERKの免疫組織化学プロトコルを提供します。 - / - WTと比較して変異体たEn2のCA3サブフィールドで検出されたのpERKのレベルを減少させました。異なるCA3サブフィールド、のpERK陽性ニューロンの一般的な増加で観察されたものからではなく、両方の門で検出されたとEN2のGCL - / -マウスは、WTと比較しました。 ERKのリン酸化レベルでのこの逆の傾向の可能な説明は、MWM、次のpERK誘導のサブフィールド固有のメカニズムに依存している可能性があります。 プロトコルは、MWMデータ、脳の固定、抗体の選択および較正、洗浄手順、信号検出、および細胞計数手順の評価として、いくつかの重要なステップを含んでいます。これらのすべての重要なステップを慎重に高品質で再現性のある結果を保証するために実行する必要があります。例えば、脳は、Nである場合（3.2および3.3ステップ）が正しく固定されたOT、セクションで...

神経発達障害は、中枢神経系（CNS）の開発および成熟が中に早期に乱されたダウン症候群、脆弱X症候群（FXS）、レット症候群、神経線維腫症、結節性硬化症やASD、などの障害の広い異種基などが挙げられます出生前の期間1。これらの発達脳機能障害は、運動機能、言語、学習と記憶のプロセスに深刻な、生涯影響を引き起こす可能性があります。遺伝的要因と環境要因の過多は、ここ数年の間に2,3神経発達障害の病因に関与しています。臨床表現型の根底にある分子メカニズムは不明のままであっても、上記の知見は、これらの障害のいくつかのマウスモデルの開発を可能にしています。学習および記憶障害には、TSC1 +/-、TSC2 +/-としてこれらのマウスモデルの数が特定されています、NF1 +/-と EN2 - / -マウス2,4-7。神経発達障害の分野における重要な課題は、記憶や学習障害の基礎となる細胞および分子プロセスの同定です。学習または記憶の間に活性化、選択のシグナル伝達経路は、特定の遺伝子の転写を誘導し、最終的にデノボのタンパク質合成につながることができます。即時初期遺伝子（IEGs）の活性化およびタンパク質依存性シナプス修飾は、急速に神経活動と行動訓練8,9に応じて脳の神経細胞に誘導されます。 ニューロフィブロミンを含むシグナル伝達経路の欠損は神経発達障害における学習障害と関連しています。ニューロフィブロミンは、変異神経線維腫症1型の原因となるNF1遺伝子、神経系腫瘍によって特徴付けられる複雑な遺伝性症候群、行動、モータ遅延、および認知DISAの製品ですbilities 10。抑制性ニューロンに制限NF1欠失についてヘテロ接合マウスは、長期増強（LTP）の初期段階だけでなく、MWM 5,11,12、侵入した空間学習の欠損を示します。興味深いことに、このマウスモデルにおけるNF1欠損が増加ERKのリン酸化、最終的にこれらのニューロン5からのGABA放出の異常な増強を生じ、学習の間に介在阻害におけるRASシグナリングの過剰活性化をもたらします。 これらの知見に基づいて、行動タスク後の神経活動の可視化は、神経疾患に関与する特定の回路を再構成する方法を示しています。ここで説明する免疫組織化学プロトコルは、認知障害とASDマウスモデルにおいてMWMを次の海馬ERKリン酸化レベルを評価し、定量化することを目指しています。 MWMは広くげっ歯類13,14に海馬依存空間学習および記憶を調べるために使用され</s&gt;アップ。我々は、ERKは、学習と記憶形成の15において重要な役割を有することが示されたため、タスク依存海馬学習の分子読み出しとしてERKリン酸化を使用することを決定しました。また、ERK経路は、開発視覚野16における経験依存的可塑性のために必要です。最後に、CNSショーで2 ERKアイソフォーム（ERK2）のいずれかを欠損したマウスは、ERKシグナルは、ASDなどの神経発達障害の病因に重要な役割を果たしている可能性があることを示し、認知感情的、社会的行動17の異常をマーク。 神経発達障害のモデルとしてマウス（ - / -たEn2）私たちは、エングレイルド2ノックアウトを使用していました。 EN2 - / -マウスは、前脳の介在18の損失を含む解剖学的および行動「ASD様」機能では、ASD関連遺伝子19の発現低下を示し、社交性を減少し、損なわれた認知の柔軟性6,7,20。空間learni- / -マウス6,7および21 ASD患者で観察された認知機能障害に関連する可能性があるようなMWMで検出されたものとしてNGとメモリの欠陥は、たEn2、特に堅牢です。 - / -成体マウス7さらに、我々は、MWMにおける減損空間学習が減少ニューロフィブロミンの発現に関連するとEN2の門でのpERKレベルを増加させることが示されました。ここでは、このASDマウスモデルにおいてMWMを次のpERKの免疫組織化学的特性評価のための詳細なプロトコールを提示します。

<table><tbody><tr><td>EthoVision XT 8</td><td>Noldus Information Technology</td><td></td><td>このソフトウェアプラットフォームは必須ではありません。市場には他にも多くの動作ソフトウェアがあります。</td></tr><tr><td>テンペラペイント</td><td>ジョット - フィラグループ会社</td><td></td><td>白と液体、無毒。モリス水迷路で不透明な水を準備するために使用されます。</td></tr><tr><td>Vibratome</td><td>Leica</td><td>VT1200</td><td>他社相当モデルが使用可能です。</td></tr><tr><td>24ウェルプレート</td><td>シグマ</td><td>CLS3524</td><td></td></tr><tr><td>100%エタノール</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>A406-20</td><td>スライドマウント前の脱水のためのエタノールグラジエントを作るために使用されます。</td></tr><tr><td>キシレン</td><td>VWR</td><td>66004-950</td>有毒 <td>- ボンネットの下で使用します。キシレンは用途に応じて毎月交換してください。</td></tr><tr><td>アジ化ナトリウム</td><td>シグマ</td><td>&nbsp;S2002</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Sigma</td><td>P3813-10PAK</td><td></td></tr><tr><td>ddH2O</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>トリトン X-100</td><td>Sigma&nbsp;</td><td>T-8787</td><td></td></tr>過<tr><td>酸化水素</td><td>シグマ</td><td>H1009-100ML</td><td></td></tr><tr><td>通常のヤギ血清</td><td>アブカム</td><td>G9023-10MLABC</td><td></td></tr><tr><td>キットベクタステイン&nbsp;</td><td>ベクターラボラトリ</td><td>ーズPK-6100</td><td>5 mlのPBSに試薬Aを2滴加え、混合し、次に試薬Bを2滴加えて混合します。</td></tr><tr><td>DABペルオキシダーゼ基質</td><td>Vector Laboratories</td><td>SK-4100</td> 5 <td>mLのddH2O:2滴の緩衝液を加えて混合し、4滴のDABと混合、2滴のH2O2を加えて混ぜる。</td></tr><tr><td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td>pERK抗体</td><td>Cell Signaling Technologies&nbsp;</td><td>4370</td>希釈<td>1:500</td></tr><tr><td>ビオチン化ヤギ抗ウサギIgG抗体</td><td>ベクターラボラトリーズ</td><td>BA-1000&nbsp;</td><td>希釈 1:250</td></tr><tr><td>SuperFrostスライド&nbsp;</td><td>Carl Roth</td><td>1879</td><td></td></tr><tr><td>Coverslips</td><td>Fisher</td><td>12-548-B</td><td></td></tr><tr><td>DPX</td><td>Sigma</td><td>317616</td><td>スライド用埋込媒体です。同等の封入剤をご使用いただけます。</td></tr><tr><td>顕微鏡</td><td>&nbsp;ツァイス&nbsp;</td><td>Axio Imager.M2</td><td>相当の顕微鏡が使用可能です。</td></tr><tr><td>Adobe Photoshop</td><td>Adobe Systems、カリフォルニア州</td><td></td>サンノゼ <td>画像を組み立てる。</td></tr><tr><td>ImageJ Software</td><td>National Institute of Health</td><td></td> Free <td>software http://rsb.info.nih.gov/ij/</td></tr> <tr><td>SigmaPlot 11.0</td><td>Systat Software Inc. (USA)</td><td></td> でダウンロードできる統計<td>解析用相当のソフトウェアが利用できます。</td></tr><tr><td>Prism 6</td><td>GraphPad Software, Inc.(米国</td><td></td>カリフォルニア州ラホーヤ)<td>統計解析用と同等のソフトウェアが使用可能です。</td></tr></tbody></table>

神経発達障害のマウスモデルにおける空間学習した後、海馬ニューロン活動の免疫組織化学的可視化

Immunohistochemical Visualization of Hippocampal Neuron Activity After Spatial Learning in a Mouse Model of Neurodevelopmental Disorders

リン酸化され、細胞外調節キナーゼ（のpERK）の誘導は、学習に依存する神経活動の信頼性の分子読み出しです。ここでは、神経発達の起源の認知障害によって特徴づけられるマウスモデルにおける空間学習課題への曝露後の海馬ニューロンの活性化のプロファイルを研究するためのpERK免疫組織化学プロトコルを記述します。マウス、自閉症スペクトラム障害（ASD）のモデル具体的には、エングレイルド-2ノックアウト（ - / -たEn2）におけるモリス水迷路（MWM、古典的海馬依存性学習課題）後の神経の活性化を研究するためのpERK免疫染色を使用していました。野生型（WT）対照と比較して、たEn2 - / -マウスは、MWMにおける重要な空間的学習障害を示しました。 WT動物と比較して、マウス- / - MWM後、pERKの陽性ニューロンの数の有意差は、特定の海馬たEn2のサブフィールドで検出されました。したがって、我々のプロトコルは、ロバストの違いを検出することができますASDのマウスモデルにおいて、海馬依存性学習障害に関連付けられているのpERK陽性ニューロン。より一般的には、我々のプロトコルは、認知障害の両方により特徴づけられる遺伝的または薬理学的なマウスモデルにおいて、海馬ニューロンの活性化のプロファイルを調査するために適用することができます。

ここで説明するプロトコルは、免疫組織化学により、可視化するために設計された、神経発達障害のマウスモデルにおいて、MWM後の海馬ニューロン活動の特定のマーカーの発現。ここに示したすべての実験データは、我々の最近の仕事7から採取しました。男性と女性のWTとEN2 - / - （3-5ヶ月齢;重量= 25〜35グラム）年齢をマッチさせた大人の同腹子ヘテロ接合交配から得られたが使用されました。二十個のマウス（遺伝子型当たり11）MWMのために使用しました。 8匹のマウス（遺伝子型あたり4）はMWMプローブ試験の終了時に屠殺し、免疫組織化学実験に使用しました。 たEn2の空間学習障害の評価- / -マウス - / -特にたEn2の空間学習障害の存在を調べるために、マウスを、我々は、MWM試験、古典的海馬依存性の空間学習課題13,14を使用していました。 traininの1日目G試験、待ち時間と...

我々は、神経発達の起源の認知障害によって特徴づけられるマウスモデルにおける空間学習課題への曝露後の海馬ニューロンの活性化のプロファイルを研究するために免疫組織化学プロトコルを記述します。このプロトコルは、認知障害によって特徴付けられる遺伝的または薬理学的両方のマウスモデルに適用することができます。

Induction of phosphorylated extracellular-regulated kinase (pERK) is a reliable molecular readout of learning-dependent neuronal activation. Here, we ...

本実験の総合的な目的は、神経発達障害のモデルであるGrailed 2ノックアウトマウスを用い、空間学習後の海馬におけるirkリン酸化の変化を検出することである。まず、野生型およびGrailed 2ノックアウトマウスの両方をモーリス水迷路でテストする。次に、マウスの脳を取り出し、バイブラトム切片作成法により野生型およびノックアウトマウスの切片を作製する。次に、野生型およびノックアウトマウスの脳切片を免疫組織化学的に処理し、海馬におけるリン酸化の変化を検出します。免疫組織化学染色の光学顕微鏡観察の結果、野生型とgrail twoノックアウトマウスの間で海馬RCのリン酸化に差があることが示されました。この手法により、モリス水迷路のような海馬依存的な空間学習タスク後に活性化される海馬ニューロンの特定のサブセットを特定することが可能になります。私たちは、自閉スペクトラム症のマウスモデルであるgrade twoノックアウトマウスにおける分子的な欠損の根底にある分子カスケードを調査することを決定した際に、この手法の着想を得ました。まず、関心のある様々なバックグラウンドを持つマウスを、モーリス水迷路のような空間学習タスクで訓練します。付属のテキストプロトコルに記載されている訓練レジメンに従ってください。訓練期間の終了後、マウスを安楽死させ、脳を固定して摘出します。手順を続行する準備ができたら、メスを使用して小脳を除去します。次に、脳の残りの部分をバイブレトームのホルダープレート上に垂直に瞬間接着剤で固定します。背側海馬全体にわたって、脳を20〜40 micronの厚さで連続切片に切り出します。各切片を、1 mLの0.1 M PBSを満たした24ウェルプレートの各ウェルに移します。マウス1匹につき3〜5枚の背側海馬切片を、それぞれ500 µLの0.1 M PBSを含む24ウェルプレートのウェルに移します。各ウェル内の切片を500 µLの0.1 M PBSで洗浄します。特に断りのない限り、すべての洗浄およびインキュベーションは室温で、緩やかに攪拌しながら行います。ドラフトチャンバー内で、内因性ペルオキシダーゼ活性を消去するため、40% メタノールおよび1% 過酸化水素を含む0.1 M PBS中で切片を20分間インキュベートします。0.1 molar PBSでさらに3回洗浄した後、500 µLの0.2% Triton X 100中で5分間インキュベートし、切片を透過処理します。切片のインキュベーション中に、実験全体に十分な量のブロッキングバッファーを調製してください。その後、透過処理液を除去し、各ウェルに100 µLのブロッキングバッファーを添加します。切片を1時間インキュベートします。次に、ブロッキングバッファーを除去し、リン酸化細胞外信号調節キナーゼ（phosphorylated extracellular regulated kinase）一次抗体で切片を覆います。一次抗体はブロッキングバッファーで1:500に希釈して使用します。切片を4 °Cで緩やかに攪拌しながら一晩インキュベートし、翌日、0.1 M PBSで5分間の洗浄を3回行います。各切片を、ブロッキングバッファーで1:250に希釈したビオチン標識二次抗体と共に、室温で1時間インキュベートします。Avidin-Biotin Complex（ABC）試薬は、Avidinとビオチンの複合体が形成されるのに十分な時間を確保するため、使用の少なくとも30分前に調製してください。切片を0.1 M PBSでさらに3回洗浄した後、ABC試薬を加え、試料と共に45分間インキュベートします。次の3回のPBSによる洗浄を行っている間に、メーカーの指示に従ってドラフトチャンバー内でDAB作動溶液を調製し、プレートに分注します。次に、切片をDAB作動溶液が入ったウェルに移動させ、プレートをゆっくりと回転させて、切片が溶液に最大限に接するようにします。十分なシグナルが得られるまで、顕微鏡でDAB反応を観察します。約2〜5分後、目的の色強度に達したところで、組織を0.1 molar PBSで洗浄して反応を停止させます。さらにPBSで3回洗浄した後、切片をゼラチンコートスライドに封入し、室温で少なくとも3〜4時間乾燥させます。風乾後、スライドをドラフトチャンバーに移し、段階的なエタノール溶液にそれぞれ2分ずつ浸して切片を脱水させ、その後100%xyleneで5分間透明化処理を行います。封入剤を用いてスライドをカバーガラスで封入し、乾燥させるため、ドラフトチャンバー内に一晩放置します。その後、カメラと20倍対物レンズを装着した明視野顕微鏡にスライドを移します。各切片の背側海馬領域をカバーするように、200倍の倍率で複数の明視野画像を撮影します。動物1匹につき3〜5枚の切片を使用します。野生型マウスおよびGrailedノックアウトマウスの背側海馬領域の切片を、リン酸化Extracellular regulated signal transducer and activator of transcription 3（pSTAT3）で染色した図を示します。これは学習依存的なニューロン活性化の信頼できる分子的な読み出し指標となります。これらのマウスは、いずれも屠殺前に、古典的な海馬依存性空間学習タスクであるモリス水迷路試験を受けていました。試験の最終日において、Grailed 2ノックアウトマウスは、野生型マウスと比較して著しい空間学習能の低下を示しました。マウスの脳切片を解析するため、海馬のさまざまな領域全体で陽性細胞の総数をカウントしました。CA3錐体細胞層において、野生型マウスはノックアウトマウスよりも、単位面積あたりのリン酸化RK陽性細胞数が有意に多い結果となりました。hiliおよび顆粒細胞層（GCL）では、相反する結果が得られました。このビデオを視聴することで、認知機能低下を特徴とする神経発達障害の遺伝学的および薬理学的マウスモデルの両方において、海馬の脳切片を用いてphos処方を調査する方法について深く理解できるはずです。この技術は、他の脳領域におけるirk力処方の変化を研究する場合や、Morris水迷路とは異なる認知行動課題の後の研究にも適用可能です。DIAベンジンを用いた作業は極めて危険であるため、本手順の実施中は、適切な保護具の着用など、常に安全上の予防措置を講じてください。

immunohistochemical-visualization-hippocampal-neuron-activity-after

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

私達は非常にフィーダーグリア細胞層を使用せずに出生マウスの脳から海馬神経細胞の精製培養のためのプロトコルを提供しています。...

胎児マウスから海馬ニューロンの単離および培養

このビデオは、成体海馬の神経新生を調べるために使用される免疫蛍光染色法を示しています。最初に、マウスの脳切片は、ニューロン前駆細胞のニューロン新生に関連するマーカータンパク質に向けられた一次抗体による治療を受けます。次に、蛍光色素でタグ付けされた二次抗体で標識します。次に、脳切片を共焦点顕微鏡で観察し、マーカータンパク質の異なる組み合わせの発現パターンに基づいて、前駆細胞のさまざまなサブタイプを区別します。...

成体海馬神経新生を検出するための免疫蛍光染色法

このビデオは、ニューロンの成熟と接続性を分析するために、マイクロ流体チップ内で培養されたラット海馬ニューロンの免疫蛍光染色を示しています。...

マイクロ流体チップ内のラット海馬ニューロンの蛍光免疫染色

このビデオでは、EdU取り込みを使用して脳組織切片で新たに増殖した神経幹細胞を染色し、続いて免疫蛍光法で特定のタンパク質を可視化する手順を示し、細胞の動態と増殖の理解を深めます。...

マウス脳切片における増殖神経幹細胞の可視化のための免疫蛍光染色

出典:McLeod, F., et al.海馬のげっ歯類の脳スライスにおけるシナプス密度の評価。J. Vis. Exp.

免疫蛍光法を用いたマウス海馬切片のシナプスの顕微鏡解析

出典:Provenzano, G., et al. Immunohistochemical Visualization of Hippocampal Neuron Activity after Spatial Learning in a Mouse Model of Neurodevelopmental Disorders.J. Vis. Exp.

マウス脳切片における海馬ニューロン活性化のイメージング

出典:Ulivi, A. F., et.al.Longitudinal Two-Photon Imaging of Dorsal Hippocampal CA1 in Live Mice. J. Vis. Exp. (2019) }このビデオは、生きたマウスの蛍光標識されたピラミッド型ニューロンの縦方向の2光子イメージングを示しています。...

生きたマウス海馬における蛍光標識ニューロンの縦断的2光子イメージング

この方法は、生きているマウスの海馬への光学的アクセスを可能にする慢性的な調製を記述する。この調製は、数週間の期間にわたって神経構造可塑性および活性誘発細胞可塑性の縦方向光学イメージングを行うために使用することができる。...

生きたマウスにおける後部海馬CA1の縦方向2光子イメージング

この記事では、注入カニューレを補ったカスタムメイドのイメージングウィンドウの準備と、マウスの海馬のCA1領域への移植を示す。...

マウスの振る舞いの海馬における神経活動を可視化するための頭蓋骨管制法

本稿では、精密制御手術と二光子顕微鏡を用いて、マウス海馬CA1の静止ミクログリアをin vivo...

インビボ マウス海馬におけるミクログリアの慢性二光子イメージング

ニューロンプログラミングによって生成されたヒト多能性幹細胞由来のGABA作動性ニューロンの移植は、神経発達障害の潜在的な治療アプローチとなる可能性があります。このプロトコルは、ヒト幹細胞由来のGABA作動性ニューロン前駆体の生成と新生児マウスの脳への移植を記述しており、移植されたニューロンの長期的な調査とその治療可能性の評価を可能にします。...

ヒト幹細胞由来GABA作動性ニューロンの生後早期マウス海馬への移植による神経発達障害緩和

学ぶ 海馬ニューロン活動の免疫組織化学的可視化法。モリス水迷路課題後のマウス脳切片でリン酸化変化を検出し、野生型とノックアウトマウスの認知機能差を明らかにする神経発達障害研究に応用可能です。

神経発達障害のマウスモデルにおける空間学習した後、海馬ニューロン活動の免疫組織化学的可視化

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