Name: 結晶セルロース蓄積中の高解像度の定量化シロイヌナズナルーツは、組織特異的な細胞壁の変更を監視します (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-05-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 27 s
Description: 学ぶ結晶セルロースの高解像度定量化法。偏光技術を用いてシロイヌナズナの根の細胞壁組成を組織特異的に解析し、植物の成長と発達における細胞壁の役割を理解するのに役立ちます。

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私たちは、解剖学的切片のアドバイスと助けをくださったM.ローゼンバーグ博士に感謝します。また、D. Eisler 氏の技術支援にも感謝します。この研究は、FP7-PEOPLE-IRG-2008, Binational Agriculture research and Development (BARD;IS-4246-09)、イスラエル科学財団(ISF;592/13)など、さまざまな情報が含まれている。

1.植物成長<ol><li>表面の種子を滅菌します。 <ol><li>湿式または乾式法により（30ミリグラムまで）の種子を滅菌します。例として、乾燥滅菌法のために、少なくとも4時間、一晩まで、閉じたデシケーター中でガラスビーカーに、50ミリリットル漂白剤に1ミリリットルの氷のHCl 37％を追加します。化学フード内で、この手順を実行します。 </li></ol></li><li> 0.5×ムラシゲ＆スクーグ（MS）培地中の0.8％植物寒天を含むプレート上で無菌種子を広げます。パラフィルムまたは多孔質テープでプレートを包み、アルミホイルでカバーしています。 </li><li>均一な発芽を促進するために4日 - 1 4℃でプレートを保管してください。 </li><li> シロイヌナズナの苗を成長させるのに適した成長室にプレートを転送します。寒天培地の上に根の成長を維持し、侵入を防止するために、垂直方向に板を置きます。 </li><li> 7日発芽（DAG）の後固定液するために苗木を転送します。 </li></ol> 2.固定<ol><li> 50ミリリットルリチャードソンSolutioを準備蒸留水で1％のホウ砂（緩衝剤）、1％メチレンブルーおよび1％アズール（組織学的染料）の等容量を組み合わせることにより、n個。使用前に0.22μmのPVDFフィルターユニットを駆動シリンジで濾過。 </li><li> 0.05 Mナトリウムカコジル酸（緩衝剤）中の1.25％グルタルアルデヒド：固定液の50ミリリットルを準備します。 注：これらの物質は毒性があり、化学フード内で処理する必要があります。 </li><li>最終的な固定液を得るために、固定溶液にリチャードソン溶液100μlを（2.1を参照）（2.2を参照）を追加します。 </li><li>マーク対応するサンプル名で6ウェルプレートの各ウェル。 </li><li>苗木、一度転送は、完全に液体で覆われるように、ウェルに（2.3を参照）3ミリリットル、最終的な固定液を - 2を配置します。 </li><li>慎重に各ウェルに10苗まで、鉗子を使用して、転送します。パラフィルムを使用してプレートをシール。 4℃で、暗闇の中で、少なくとも一晩、一週間まで保管してください。 </li></ol> 3.脱水<ol> &lt;LI&gt;苗を脱水します。ここに記載されているように、エタノールの濃度の増加を含む、新たな6ウェルプレートのウェル間にそれらを転送する：10％エタノールを15分間、 15分間、30％エタノール。 15分間、50％エタノール。 15分間70％エタノール。 15分間85％のエタノール。 15分間、95％エタノール。一晩、最低でも4°C、95％エタノール。慎重にプラスチックピンセットで好ましく、その子葉、によってそれらを把握することにより、苗を処理します。 </li></ol> 4.潜入<ol><li>浸透媒体を準備します。小さなガラス瓶で50ミリリットルの基本的な樹脂液キットでhistoresinキット活性化因子の1袋の内容物を混合。 20分間磁石をかき混ぜます。浸透媒体は、数週間、4℃で維持することができます。 </li><li>マーク・各対応するサンプル名で新しい6ウェルプレートのウェルと2でいっぱい - 浸潤培地の3ミリリットル。 </li><li>ピンセットを用いて浸透培地に95％エタノール溶液から苗木を移します。苗は府であることを確認しますLLY媒体によって覆われます。 </li><li>植物組織に最大の浸透を確実にするために、少なくとも4日間、4℃で保管してください。 </li></ol> 5.ブロックの準備<ol><li>金型を埋め込むの各ウェルの中に小さなラベル、サンプル名と鉛筆でマークされたが、置きます。 </li><li> 15 mlの浸潤培地（4.1を参照）1mLの硬化剤を添加することにより培地を埋め込む準備します。重合の問題を回避するために、15ミリリットル未満のボリュームを準備しようとしないでください。 </li><li>メディアを埋め込む200μlで金型内に各ウェルの半分を記入し、金型の形状に切断オーバーヘッドフィルム片で覆いますが、それぞれの側に大きなサイズに1ミリメートル。重合を可能にするために、少なくとも2時間室温でインキュベートします。 5時間を超えないようにしてください。 </li><li>培地を埋め込む追加のバッチを調製し（5.2を参照）、根の先端が金型内に配置されている間、重合を回避するために、氷上に保ちます。 </li><li>メスを用いて解剖スコープの下で各根端をカットし、非常に慎重に位置iトン：垂直方向の横断面または水平方向に縦断面のため、約2時 - 金型外周から3ミリメートル。オーバーヘッドフィルムで解決し、カバーを遮断して型を完全に埋めます。それが重合された後、ブロッキング溶液がわずかに縮小することに注意してください。 </li><li>最低でも、2時間室温で保管してください。 </li><li>ブロックを乾燥させるため、乾燥シリカゲルと箱に入れて、最低でも、室温で一晩おきます。 </li></ol> 6.セクショニング<ol><li>ナイフメーカーでガラス棒からガラスナイフを準備します。組織切片用にガラスナイフを使用してください。正方形にガラス棒をカットした後、ダイヤモンドスコアリングツールを使用して、2つのナイフを生産するために斜めの正方形をカットします。 </li><li>セクショニング機を使用して3ミクロン幅のスライス、 - 2へのセクションをブロックします。スライドガラスの上に置いてスライス、蒸留水の液滴の上に、低熱に設定したヒートブロック上にスライドを配置 - 水が蒸発するまで、（50〜60℃）。 </li></ol><ol><li>元の溶液の0.2％に（2.1を参照してください）​​リチャードソン液を希釈し、スライスをカバーするために、それの1ミリリットルを使用します。 5秒間ヒートブロック上に置き、次いで蒸留水で洗浄します。 </li><li>ホットプレート上でスライドを乾燥させます。解剖顕微鏡下で観察し、顕微鏡下で彼らの後に識別を容易にするために、関心のスライスの位置を示すために、マーカーでスライドの背面をマーク。 </li><li>マウンティング培地100μlを添加して、カバースリップでカバーしています。 </li></ol> 8.画像取得<ol><li>リター情報と偏光子/干渉光学フィルタ（ 図1 AD）を得るのに適しPolscopeシステムを装備した光学顕微鏡下でルートセクションを含む覆われたスライドを配置します。 </li><li>サンプル全体の明確な可視化を可能にする選択倍率（ 例えば 、本研究では40X）と顕微鏡の焦点を合わせますブロック部が、無根元セクションが含まれている空のフィールド上の電子。無傷できれいな地域を探してみてください。背景を設定するには、この領域を使用します。 </li><li>イメージング・システムおよびソフトウェアのパラメータを設定します。設定範囲を17 nmまで。 （8.2を参照）、「自動露出」を適用し、空のフィールドから背景画像を得ます。一つの背景画像は、実験ごとに使用されます。 </li></ol>セルロースミクロフィブリル配向の9 Polscope分析<ol><li>縦断面の分析。 <ol><li>顕微鏡下で長手方向部分を含むスライドを置き、それのリター画像を得ます。関心の根元部に顕微鏡の焦点を合わせます。新しいファイル名を指定します。 </li><li> 「ライブAbrio &quot;窓からabrioの画像（位相差情報と画像）をキャプチャします。 図2Cに示すように、セルの周囲に沿って実行して染色されたセルロースによって識別することができ、細胞壁を含み、セクションをキャプチャするようにしてください。</li></ol></li><li>画像解析。 <ol><li>画像スタック内の関連する画像をダブルクリックします。 「表示設定」タブで「オリエンテーション擬似カラー」を選択します。 </li><li>セルロースミクロフィブリル角度を推定するには、カラーホイールの場合と細胞壁の対応する陰に一致します。 注： 図2Cにおけるカラーホイールは、ミクロフィブリルの長軸に沿った方向を示しているミクロフィブリルに沿って存在する光の遅相軸を反映しています。セルロースミクロフィブリル角度、色、セルの長軸により示される角度です。たとえば、インセットで伸長細胞は、細胞の長軸に対して約90°傾いたシアン色を示します。 </li><li>細胞壁の平均ミクロフィブリル傾角を定量化するために、ソフトウェアのツールバーから「燃性および方位角スタンプ」ツールを使用します。ツール、ポイントを選択し、一方で得られた画像中の関心領域をクリックしてください。 注：このウィル度の角度（方位）（ 図2C）の表示におけるリットル結果。 </li><li>プラグインメニューから代替オープンアクセス偏光画像解析ソフトウェアでは、ランチ「ポル・アナライザ」プラグイン。新しい開いたウィンドウで、「複屈折」タブを開いてを選択し、背景ファイルと画像ファイルを保存します。 </li><li>画像ウィンドウでは、「仕様」を選択します。そして、「ROIのピクセルサイズを「（この研究のために5ピクセルを使用）を調整。 &quot;仕様&quot;でウィンドウを選択し、「結果表内の値を示して」。 </li><li>画像ウィンドウ内の関心領域をマークするために、多角形ツールを使用してください。セルロースミクロフィブリルの配向を得るために、「オリエンテーションライン」を選択します。 注：これは度の角度（方位）の表示になります。 注：2つの方法のいずれかにより算出された平均角度は、その後、スライドに沿って根元部の位置に正規化する必要があります。からのずれを修正するにはスライドに沿って全体の根元部の水平位置、（セクションへと根の成長軸、 図2Cに沿って垂直つまり、）その長軸に沿ってセルに隣接するセル壁の平均ミクロフィブリル傾角を定量化します。根元部が正確スライドに沿って配置されている場合、この角度は180°です。ミクロフィブリル角度を計算するために、180°から隣接するセル壁の平均測定ミクロフィブリル角度を引きます。スライド上に平らに細胞壁の平均測定ミクロフィブリル角度になった違いを追加します。 </li></ol></li></ol>結晶セルロース蓄積の10 Polscope分析<ol><li>横（クロス）セクションを使用してください。彼らのセルロースミクロフィブリルは（9で決定されるように）同様の角度で整列しているときに、結晶セルロース蓄積が細胞のみの間で比較することができることに注意してください。 </li><li>画像スタック内の関連する画像をダブルクリックします。 P」を選択表示設定」タブ」の「seudo色。 </li><li>燃性を測定しました。ズームアップ画像に。 「リージョン」を選択し、関心のあるすべての領域をマークします。すべての値を「クリップボードにコピー」「測定」タブに移動します。 <ol><li> Excelにデータを転送し、（リターダンスの領域を意味する）必要な情報を抽出します。データを正規化します。 注：スライス間の厚さの違いを考慮するために、スライド内の特定の細胞壁のエッジに対する相対値を表します。標準化するために、同じ画像内の異なる細胞壁の平均リターダンスによって目的の細胞壁に対応する平均燃性を分けます。例えば、外側の表皮細胞壁は、私たちの研究では、内側皮質細胞壁に正規化しました。 </li></ol></li><li>サンプルあたり3根を最小限に抑えて、ルートごとに少なくとも3つのセクションのための測定を繰り返します。 </li></ol>

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</ol>

著者には利益相反はありません。

解剖学的情報を維持しながら、ここでは、 シロイヌナズナの根を構成する異なる組織における結晶セルロースの蓄積を決意するための方法を提示します。このように、それは、細胞の解像度で、植物の成長過程を理解することに向けた追加のステップを提供します。この方法はまた、付加的な植物種および器官の研究に適用することができます。 この方法を適用する際のポイントの数を考慮しなければなりません。彼らのセルロースミクロフィブリルの配向が類似する場合、最初に与えられた根元部における結晶セルロース蓄積は組織間、異なる遺伝子型からのセクション間や治療間で比較することができます。セルロースミクロフィブリルの向きは、セル壁18の一面を含む縦断面において決定されます。したがって、外側から最も内側のものに、根の別個の組織をカバーする長手方向の一連のセクションは、analysを有効にします指定された発達段階で、異なる組織におけるセルロースミクロフィブリルの向きです。表皮の伸長細胞の平均セルロースミクロフィブリル角度で、より組織構造を有しながら、ここに示した例では、表皮の分裂細胞は、...

植物細胞壁は動的な構造です。増殖している細胞は、一次細胞壁、細胞を拡大することを可能にする組織で囲まれています。堆積物を植物の機械的支持を強化し、より剛性の二次壁を成長させることやめる細胞。両方の細胞壁は、異なる発達段階や組織1,2間で異なる別の構造（例えば 、ヘミセルロースおよびペクチン）の多糖類のマトリックス中に埋め込 ​​まれたセルロースミクロフィブリルで構成されています。セルロースはしっかり結晶構造のミクロフィブリルを形成するように整列されている（1,4）-β-D-グルカンの鎖として合成されます。アモルファスセルロースはグルカン鎖が少ない順序付けられている領域を意味します。結晶と非晶質領域との間の比が3それぞれ、機械的強度及び粘弾性特性を提供することにより、細胞壁の機械的特性に影響を与えると考えられて一つのパラメータです。いくつかの方法がありましたX線回折及び交差分極/固体NMR 4を回転マジック角を検出し、それらのうち、セルロース配置の二つの形態を定量化するために開発されました。 X線回折は、試料5中の非晶質セルロースドメインに対する結晶の割合を決定するために用いることができます。別の方法は、それぞれ、結晶質および非晶質セルロースまたは他のポリマーとの間で区別するために、酸不溶および酸可溶性物質に細胞壁コンテンツの分画を使用しています。このアプローチでは、標識グルコース（[14 C]グルコース）の組み込みは、セルロース6,7を定量化するために使用されます。これらの方法は、せいぜい、全臓器分析のための植物材料を大量に必要とし、従って、細胞壁構造における組織特異的な変化に対して不十分敏感です。セルラー解像度でセルロースミクロフィブリルの可視化の変化を同定することができる蛍光色素8,9、と組み合わせるライブイメージング研究で達成することができますセルロースミクロフィブリルの向き。これらの色素を定量化するために使用されていないが、それらは結晶セルロースに特異的ではなく、細胞壁8の正常な構造を妨害し得ます。 Polscopeは、光ビームを分割し、光10の一部を遅延させる結晶セルロースの能力に依存イメージング技術です。光の位相差は、光の伝播方向に垂直に横たわるミクロフィブリルのために最強です。同様の配向のミクロフィブリルのために、光のリターダンス11より大きい、結晶化度が高いです。したがって、polscope、セルロースミクロフィブリルの相対的なレベルと方向の両方を研究するために使用されます。 彼らは急速に12を展開する前に、根は、細胞分裂のシリーズを受け、根の先端に、細胞は、幹細胞ニッチに由来その間線形成長を示します。ルートを含む細胞は、単方向（異方性）に拡大します方法、セル壁13の特性に影響を与える小分子シグナル伝達ホルモンによって指示されます。ホルモンに対する微分応答は、時間と空間に、バランスのとれた臓器成長14を確保する手段を提供します。したがって、細胞壁構造の高分解能の分析は、より良い全体の臓器の成長に細胞型特異的応答との間の接続を理解するために必要な重要な情報を提供することができます。ここで、我々は高品質の解剖学のセクションで観察されるように、 シロイヌナズナの根に結晶セルロースの組織特異的な蓄積を研究するpolscopeの実装を報告しています。この方法は、最近、ホルモン活性15の空間的な摂動に応答して、結晶セルロースの細胞型特異的蓄積を明らかにしました。

<table><tbody><tr><td>ムラシゲ&スクーグ (MS)</td><td>デュチェファ</td><td>M0221</td><td></td></tr><tr><td>ホウ砂</td><td>LOBA CHEMIE&nbsp;</td><td>6038</td><td></td></tr><tr><td>メチレンブルー</td><td>Σ</td><td>M-9140</td><td></td></tr><tr><td>アズール</td><td>シ</td>グマ <td>861065</td><td></td></tr> シ<tr><td>リンジ駆動 0.22 mm PVDF フィルター&nbsp;</td><td>MILLEX-GV</td><td></td><td></td></tr><tr><td>グルタルアルデヒド</td><td>EMS</td><td>16220</td><td></td></tr>カ<tr><td>コジル酸ナトリウム</td><td>シグマ</td><td>C-0250</td><td></td></tr><tr><td>ライカキットhistoresin&nbsp;</td><td>ライカ</td><td>7022 18 500</td><td></td></tr><tr><td>埋め込み金型</td><td>寒天科学</td><td>AGG3530</td><td></td></tr><tr><td>フィルム 100 & マイクロ;P.P.C.&nbsp;</td><td></td><td></td> www.Jolybar.com <td>オーバーヘッドフィルム</td></tr><tr><td>ナイフメーカー</td><td>LKB</td><td>7800</td><td></td></tr><tr><td>ウルトラトームIII</td><td>LKB</td><td>8800</td><td>ウルトラトーム</td></tr><tr><td>シャンドン immumount&nbsp;</td><td>サーモ</td><td>9990402</td><td>マウント中</td></tr><tr><td>光学顕微鏡</td><td>ニコン</td><td>Eclipse 80i</td><td></td></tr><tr><td>アブリオ イメージングシステム</td><td>CRI</td><td>アブリオ イメージングシステム</td><td></td></tr><tr><td>アブリオ V2.2 ソフトウェア</td><td>CRI</td><td>アブリオ V2.2 ソフトウェア</td><td></td></tr><tr><td>オープンアクセス偏光画像解析ソフトウェア &nbsp;</td><td>OPS</td><td>OpenPolScope</td><td><a href="http://www.openpolscope.org/">http://www.openpolscope.org/</a></td></tr></tbody></table>

結晶セルロース蓄積中の高解像度の定量化<em&gt;シロイヌナズナ</em&gt;ルーツは、組織特異的な細胞壁の変更を監視します

High Resolution Quantification of Crystalline Cellulose Accumulation in Arabidopsis Roots to Monitor Tissue-specific Cell Wall Modifications

植物細胞は細胞壁に囲まれており、その組成によって最終的なサイズと形状が決定されます。細胞壁は、結晶構造と非晶質組織のセルロース鎖の両方を形成するセルロースミクロフィブリルを含む多糖類を含む複雑なマトリックスで構成されています。セルロース繊維の配向とその濃度は、細胞の機械的特性を決定します。結晶性セルロースのレベルを決定するためにいくつかの方法が使用され、それぞれが利点と制限の両方をもたらします。 一部は、総セルロース内の結晶領域の割合を区別することができます。しかし、時空間情報が不足している臓器全体の解析に限られています。 ライブイメージングに依存する他のものは、不正確な染料の使用によって制限されます。ここでは、シロイヌナズナの根の断面における結晶性セルロースの蓄積を表す、相対的な光遅延の特異的定量化のための高感度偏光ベースのシステムを報告します。この方法では、細胞の分解能と解剖学的データが維持されるため、成長する根を構成するさまざまな組織を直接比較できます。このアプローチは、細胞壁の組成、細胞の挙動、および臓器全体の成長との間の関連性に光を当てる、新たな分析的次元を開きます。

私たちは、モデルの臓器15-17としてシロイヌナズナの根を使用して、ブラシノステロイド（のBR）への細胞型特異的応答の影響を研究しています。 BR受容体BRI1を対象としているときに、BRI1変異体のバックグラウンドで、非有毛細胞（ 図2A、B）と呼ばれる表皮細胞のサブセットには、隣接セルの一方向性の細胞増殖を阻害し、そして全根の成長15。 Polscope分析は、この阻害の基礎となるメカニズムを明らかにするために行きました。非有毛細胞にBRI1を発現している野生型からや線から得られたルートの縦断面は、セルロースミクロフィブリルの同様の方向性を示した（ 図2C、D、および9.2.3で説明したように）、結晶性の相対的蓄積の比較を可能にしますこれらのゾーン（ 図2E、F）から取られた断面を使用して、分裂と伸長細胞、中のセルロース。この分析は、correlatを示しましたBRI1の非有毛細胞中での発...

結晶性セルロースは、植物の細胞壁の重要な構成要素です。しかし、細胞分解能での定量化は技術的に困難です。 本稿では、偏光技術と根断面を用いて、細胞壁組成の情報を時空間分解能で取得する方法について報告する。

Plant cells are surrounded by a cell wall, the composition of which determines their final size and shape. The cell wall is composed of a complex matrix ...

この解剖学的断面標本作製の全般的な目的は、細胞レベルの解像度で結晶およびセルロースの相対的な蓄積量を定量化し、シロイヌナズナの主根における異なる組織間の直接的な比較を可能にすることです。この手法は、特定の細胞型の細胞組成が器官全体の成長にどのように影響するかなど、植物生理学および発生学分野における重要な疑問への回答に寄与します。テキストプロトコルに従ってシロイヌナズナの種子を滅菌した後、0.8% plant agarと0.5X M mediumを含むプレート上に滅菌種子を播種してください。プレートをパラフィルムで巻き、アルミホイルで覆います。均一な発芽を促進させるため、プレートを4 °Cで1日から4日間保存します。その後、プレートをArabidopsisの苗の育成に適した成長チャンバーに移し、根がアガー培地の上で成長し続けるよう、プレートを垂直に配置します。テキストのプロトコルに従ってリチャードソン溶液を調製します。使用前に、シリンジ駆動の0.22 micron PVDフィルターユニットでろ過してください。次に、化学薬品用フード内で、0.5Mカコジル酸ナトリウム38 mlにグルタルアルデヒド2.5 mlを混合し、固定液50 mlを調製します。その後、固定液にリチャードソン溶液100 $\mu$lを添加し、最終的な固定液を作成します。あらかじめマークしたプレートを使用し、苗が完全に浸るように、各ウェルに最終固定液を2～3 mlずつ分注します。プラスチック製ピンセットを用いて、各ウェルに最大10株の苗を慎重に移します。パラフィルムでプレートを密閉し、4 °Cの暗所で少なくとも一晩から最大1週間保存します。固定した苗を脱水させるには、ピンセットで植物を摘み上げ、ここに記載された時間に合わせて、濃度の異なるエタノールを含む印を付けた新しい6ウェルプレートのウェルに移します。Historesin Activator 1袋の内容物を基本レジン液 50ml と混合し、小型ガラス瓶の中で浸透媒を調製します。マグネットストライナーを投入し、スターラープレート上で20分間撹拌します。ラベルを貼った6ウェルプレートの各ウェルに、浸透媒を 2 ～ 3 ml 注入します。苗が完全に脱水されたら、ピンセットを用いて95% ethanol溶液から浸透剤へと移し、苗が完全に浸透剤に浸かっていることを確認します。植物組織への浸透を最大化するため、サンプルを4 degrees Celsiusで少なくとも4日間保存します。ブロックを準備するために、サンプル名を鉛筆で記入した小さなラベルを各埋め込みモールドのウェル内に入れます。浸透媒 15ml に硬化剤 1ml を加えて、包埋剤を調製します。モールドの各ウェルの半分まで、約 200 µL の包埋剤を満たします。次に、モールドの上部をフィルムで覆い、両側にさらに 1ml ずつ加えます。部分的な重合を促すため、型を室温で少なくとも2時間インキュベートします。次に、埋め込み剤をさらに一回分調製し、根端を型に配置している間に重合が進まないよう、氷上に保持します。小さなプレートに埋め込み剤を加え、1つの苗を培地の中に配置します。実体顕微鏡下でメスを用いて各根端を切り取り、転移切片用には垂直に、縦切片用には水平に、モールドの周辺から2〜3 mm離れた位置に非常に慎重に配置します。組織を配置した後、包埋剤をモールドに完全に充填し、オーバーフィルムで覆います。その後、室温で最低2時間インキュベートします。ブロックを乾燥させるには、乾燥シリカゲルを入れたデシケーターに配置し、室温で一晩放置してください。ダイヤモンドスコアリングツールを備えたナイフメーカーを使用して、ガラス棒からガラスナイフを作製します。まずガラス棒を正方形に切り出し、次にその正方形を対角線上に切断して2本のナイフを作製します。両方のナイフのエッジが鋭利であることを確認してください。ブロックをホルダーに固定します。次に、片刃の工業用カミソリを用いて、根端から1 mmのところまで余分なブロック材を取り除き、ピラミッド状にします。整形したブロックを2～3 µmの幅で薄切し、切片を印をつけたガラススライドに転送します。その後、切片の上に水滴を滴下します。分析データのばらつきを最小限に抑えるため、厚みが均一な切片を準備することが重要です。水分が蒸発するまで、低温に設定したヒートブロックの上にガラススライドを置きます。偏光顕微鏡で観察するためのスライドを準備するには、リチャードソン溶液を元の溶液の2%に希釈し、約1mlを用いて切片を覆ってください。次に、サンプルをヒートブロックに5秒間置き、蒸留水で洗浄します。ホットプレートでスライドを乾燥させた後、解剖顕微鏡下で切片を観察し、目的の切片の位置を示すためにマーカーでスライドの裏面に印を付けます。カバーガラスで覆う前に、封入剤を100 µL加えます。テキストプロトコルに従ってイメージングおよび解析を行います。ここでは、非根毛細胞、根毛細胞、および皮層を含む、構成細胞と組織の放射状の構造を持つシロイヌナズナの主根の横断面を示しています。この共焦点画像は、隣接する細胞の一方向への拡大および根全体の成長を抑制するBRI1変異体背景における、非根毛細胞でのBRI1-GFPの発現を示しています。ここで示されているように、野生型および非毛細胞でBRI1を発現する系統から得られた根の縦断面では、セルロース微繊維が同様の配向を示し、移行帯の細胞と比較して分裂組織細胞では角度のばらつきが大きいことがわかります。これにより、ここに示す横断面のように、2つの遺伝的背景における対応する分裂組織細胞と伸長細胞でのセルロース中におけるクリスタルの相対的な蓄積量を比較することができ、非毛細胞におけるBRI1の発現と、セルロース中の局所的なクリスタルの高蓄積との相関が明らかになります。一般的に、この方法に慣れていない方は、包埋手順中に根を適切に配向させることが困難であるため、苦労することがあります。したがって、切片作成用に複数のブロックを準備する必要があります。習得すれば、1つのブロックの切片作成は2〜3時間で完了します。この手順を行う際は、縦断切片によって決定されるセルロース微細繊維の配向が同様である場合、細胞間のセルロース中の結晶蓄積量は同等であるということを念頭に置くことが重要です。このビデオを視聴することで、Arabidopsisの苗の固定方法、ブロックへの埋込方法、および根の縦断および横断断面の作製方法について十分に理解することができます。また、偏光顕微鏡を用いることで得られるデータについても深い知見を得ることができます。

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Biology

生物学

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学ぶ結晶セルロースの高解像度定量化法。偏光技術を用いてシロイヌナズナの根の細胞壁組成を組織特異的に解析し、植物の成長と発達における細胞壁の役割を理解するのに役立ちます。

結晶セルロース蓄積中の高解像度の定量化

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