Name: 潜在的細胞質置換療法のための骨髄間葉系幹細胞からの血漿膜小胞の調製 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-18T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 34 s
Description: 学ぶ骨髄間葉系幹細胞から血漿膜小胞を調製する方法。機械的押出しにより細胞質を封入し、マウスの腓腹筋へ投与して加齢関連表現型を改善する細胞質置換療法の基礎を確立する。

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この研究は、Li Ka Shing財団、中国の自然科学財団（http://www.nsfc.gov.cn/助成金番号30971665、広東省高水準大学プロジェクト「海洋産業のためのグリーンテクノロジー」） 81172894、81370925）、広東省の教育部（http://www.gdhed.edu.cn/助成金番号cxzd1123）を参照してください。

8〜12週齢のBALB / cマウスをShanghai Experimental Animal Center（上海、中国）から購入し、特定の病原体および空調された動物施設で飼育した。動物のケアおよび実験手順は、汕頭大学によって設立された実験動物の使用およびケアのためのガイドラインに従っていた。 1.装置の組み立て<ol><li>無菌性を確保するために、使用前に組織培養フードのUV光を30分間点灯させます。 </li><li>使い捨ての25 mmフィルターユニットを外し、75％エタノールで満たした200 mLのガラスカップにユニットのキャップと底部を30分間浸します。ユニットは医療グレードのポリプロピレン製です。 </li><li>鉗子を使用してキャップとユニットの底部を持ち上げ、残りのエタノールを手で振り落とし、部品をフード内で10分間空気乾燥させます。 </li><li> PBSで19 mmのポリカーボネート膜を湿らせ、ボトムの支持マトリックスの上に注意深く置きますユニットのm。ポリマーフィルムは滑らかで平坦な表面を有し、トラックエッチングされた3μmの孔を有する。 </li><li>キャップを底部にしっかりとねじ込むことによってユニットを組み立て直します。メンブレンが中心から外れていないことを確認してください。 </li><li> 1mLインスリン注射器の針を外し、1mLのPBSを採取する。シリンジをフィルターユニットに取り付け、PBSをユニットに押し込んでアセンブリを濡らし、漏れがないかどうかをテストします。 </li></ol> 2.血漿膜小胞（PMVs）の生成<ol><li> Nemeth らによって報告されているように、BMSC培養を確立する。 15 ％のFBSおよび1％のペニシリン/ストレプトマイシンを含むDMEM培地中で培養した。 37℃で5％CO 2を含む加湿インキュベーター内で6ウェルプレート中で細胞を培養する。 </li><li>細胞を増殖させるために、培地を除去し、0.5mLのカルシウムフリーPBSでウェルをすすぐ。 </li><li> 0.5mLの0.25％トリプシン-EDTAを添加し、細胞を37℃でインキュベートする3分間。細胞の剥離を容易にするために、プレートを手のひらに対して数回タップします。 1 mLの培地を加えて消化を停止する。 </li><li> 15mLコニカルチューブに細胞を集め、卓上遠心分離機で200×gで2分間回転させる。 4mLの培地に細胞を再懸濁し、細胞を6ウェルプレートの2つのウェルに分注する。 注：通常、細胞は約24時間でコンフルエンスに達する。 </li><li> PMVを生成するために、6ウェルプレートの1つのウェル（約5×10 5細胞）からトリプシン消化によって細胞を回収し、細胞を0.5mLの培地中に単分散する。 </li><li>インスリンシリンジに細胞をロードし、それをフィルターユニットに取り付け、プランジャーを素早く押して細胞をフィルターに押し込みます。内部には少数のPMVしかなければならないので、押出された媒体を捨てる。 </li><li>シリンジにさらに0.5 mLの培地をロードし、すばやくフィルターに通します。第2の押出物の媒体を回収した。様々なサイズのPMVがある。 </li><li>収集した培地150μLを35mmのガラス底の皿にロードし、PMVを約10分間底に沈降させる。 20倍の対物レンズを使用してCCDカメラを備えた倒立位相差顕微鏡下でPMVを検査する。 </li></ol> 3.共焦点顕微鏡を用いたPMV内の内容の検討<ol><li> BMSCでトランスフェクションを行うには、50μLの無血清DMEMに2μgのスーパーコイルプラスミドDNAと6μLのカチオントランスフェクション試薬（ 例えば PolyJet）を希釈します。ボルテックスしてよく混合し、チューブの側面から液体をすべて集めるために短時間回転させます。 </li><li>希釈した溶液（ステップ3.1から）を希釈したDNA溶液に滴下し、強く1分間ボルテックスし、短時間回転させ、室温で10分間インキュベートする。 </li><li>約30％のコンフルエンスで一晩播種したBMSC上の古い培地を新鮮な培地2mLで交換し、DNトランスフェクション混合物を滴下する。 </li><li>トランスフェクションの12時間後に2 mLの新鮮な培地と交換する。 </li><li>細胞質に局在するタンパク質を追跡するために、上記のように、EGFP発現カセット（pEGFP-N1）を含むプラスミドで細胞をトランスフェクションする。上記のように、PMV生成のためのトランスフェクションの48時間後にトリプシン消化により細胞を回収する。 </li><li>ミトコンドリアを追跡するために、ミトコンドリア色素（1μM、MitoTracker）を用いて37℃で30分間新鮮な培地で細胞を染色する。 </li><li> ミトコンドリアの膜電位を検出するために、シアニン色素JC-1（5,5 &#39;、6,6&#39;-テトラクロロ-1,1&#39;、3,3&#39;-テトラエチルベンズイミダゾリルカルボシアニンヨージド）（10μg / mL）を37℃で30分間インキュベートした。 <ol><li>上記のように、0.5mLのPBSで細胞を3回洗浄し、PMV生成のためにトリプシン消化によって細胞を回収する。 </li><li>採取したメディウム150μLを負荷するiumを35mmのガラス底の皿に入れ、PMVを約10分間底に沈降させる。 100倍の油対物レンズを使用して共焦点顕微鏡下でPMVを検査する。 </li></ol></li><li> EGFPまたはミトコンドリア色素を検出するには、488 nmレーザーをオンにし、505〜530 nmでシグナルを収集します。 JC-1を検出するには、488 nmおよび543 nmレーザーをオンにし、505〜530 nmと560〜615 nmの信号を収集します。ピンホール値を約1.4に設定します。 </li></ol> 4.遠心分離による濃縮PMVの調製<ol><li>トリプシン消化により細胞を回収し、0.5mLの培地中で上記のようにPMVを生成する。 </li><li>室温で5分間、卓上遠心分離機で1200xgでPMVを回転させる。慎重に上清を吸引し、穏やかな渦巻きで100μLの培地にペレットを再懸濁する。 </li><li> 35mmのガラス底のディッシュに50μLのPMVをロードし、約10分間室温で沈降させる。 PMVを調べる40倍の油対物レンズを用いた共焦点顕微鏡下で測定した。 </li><li>一連の希釈ポリエチレンイミン（PEI）溶液をBMSC培養液に1時間加え、細胞傷害性の兆候がないかチェックする。 注：BMSCでは毒性の兆候が検出されなかったので、ここでは2μg/ mLのPEIを選択した。 </li><li>トリプシン消化で細胞を採取し、2μg/ mLのPEIを1時間加えて凝集を防ぐ手段として細胞膜を充填する。上記のように、0.5mLの培地中でPMVを生成する。上記のように、PMVを濃縮し、共焦点顕微鏡下でそれらを調べる。 </li></ol> 5.腓腹筋にPMVを注入する<ol><li>膜を染色するために、CM-DiI（クロロメチルジアルキル - インドカルボシアニン）（10μM）色素を1mLの新鮮培地にBMSCに30分間添加する。 </li><li>トリプシン消化により細胞（約5×10 5 ）を採取し、0.5mLの培養培地にそれらを再懸濁する。 1に対してPEI（2μg/ mL）を添加するh。上記のように、PMVを生成し、100μLの培地に濃縮する。 </li><li>絶食の12時間後にナトリウムバルビタール（10mg / kg）を注射してBALB / cマウスを麻酔する。 </li><li> 75％エタノールで腓腹筋の外側をきれいにする。 30Gインスリン注射器を用いて腓腹筋にPMV（100μL）をゆっくりと注入する。 </li><li>麻酔を施した後、実験期間中、目の上にぬれたガーゼを置き、起きるまで白熱灯でマウスを暖める。個々の換気ケージにマウスを単独で収容する。 </li><li>手術12時間後に腓腹筋を採取するには、頚椎脱臼によりマウスを殺す。 </li><li>腓腹筋に75％エタノールを振りかけ、はさみで皮膚を開き、両端の腓腹筋全体を切り取ってください。 </li><li> PBSで筋肉をすすぎ、20倍の対物レンズを使用して蛍光顕微鏡下で調べます。 </li><li>筋肉をトリムするシャープなカミソリの刃は、蛍光のない部分を取り除きます。強い赤色の蛍光を発する部分を約9 mm 3の立方体に切断します。 </li><li>各キューブを最適な切断温度媒体（OCT）に埋め込み、5分間液体窒素に浸し、使用するまで-20℃の冷凍庫に保存します。 </li><li>クライオスタットを用いて凍結切片を20μmの厚さに切断し、各切片をガラススライドに接着させる。 PBSで1回洗浄します。 </li><li>染色サークルペンで切片の周りに円を描き、100μLのDAPI（1μg/ mL）を加える。暗所で室温で10分間インキュベートした後、DAPI溶液を吸引し、PBSで3回洗浄する。 </li><li>試料の上に油を落とし、ガラススリップで覆い、マニキュアでスライドを密封する。 100倍の油対物レンズを使用して、共焦点顕微鏡下のセクションを調べます。 </li><li> CM-DiIを検出するには、543 nmレーザーをオンにし、560-615 nmでシグナルを収集します。 DAPIを検出するには、405420〜480nmで信号を収集する。ピンホール値を約1.4に設定します。 </li></ol>

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</ol>

著者は何も開示することはない。

この原稿で提案されている細胞質補充療法は、遺伝子、分子、細胞療法などの他の報告されたアプローチに比べて独自の利点があります。BMSCから生成されたPMVは、幹性遺伝子の産物だけでなく、老化に関連する老化表現型を改善するために不可欠な無傷の細胞小器官もカプセル化します。若い細胞質が老化細胞に送達されると、機能不全のメカニズムが一時的に緩和される可能性があります。同時に、エピゲノムを再プログラムして活性化して、長期的な効果をもたらすことができます。さらに、以前の研究で示されているように、外因性ミトコンドリアは増殖速度が速い可能性があります12。ミトコンドリアの機能不全は多くの老化性疾患に関連しているため、損傷したミトコンドリアの置換は不可欠です11。さらに、幹細胞とは異なり、摘出されたPMVは増殖できません。したがって、がん発症の懸念を引き起こす可能性は低いです。最後に、PMV に核 DNA が欠如しているため、DNA ランダム統合によるゲノム損傷のリスクも軽減されます。 
培養細胞は、正常...

<html>遺伝子、酵素および細胞置換療法のためのアプローチを確立することに多大な努力が注がれてきた。これは大きなブレークスルー、さらには臨床応用1,2,3をもたらしました。最近、核移植技術に基づいた議論の余地のあるミトコンドリア補充療法が、高齢の女性または致死的ミトコンドリアDNA突然変異を有する女性の体外受精に適用された 4 。アテローム性動脈硬化症、2型糖尿病、アルツハイマー病、および癌を含む、年齢関連疾患に見られる欠陥は、通常多面的である。脂質液滴の蓄積が報告されている。アミロイドタンパク質の沈着;小胞体における折り畳まれていないタンパク質の保持;オートファゴソーム、およびミトコンドリアの欠陥が、これらの疾患の発症または悪化に寄与する&quot;xref&quot;&gt; 5,6,7,8,9,10,11。現在、老化および老化表現型を引き起こす細胞質および細胞小器官における機能不全の直接修復を目的とした利用可能なメカニズムは存在しない。 私たちはこれまで、哺乳動物細胞の機械的な押し出しによる原形質膜小胞（PMVs）の生成について報告しています12 。核を除いて、膜または細胞質ゾル（タンパク質およびRNAを含む）ならびに細胞小器官（例えば、ミトコンドリア）の成分が、PMVにおいて見出された。本質的に、PMVは小型除核細胞とみなすことができる。さらに重要なことに、PMVとミトコンドリア欠損Rho0細胞との融合は、正常培養条件下で有糸分裂活性を回復させた。これは、最初の報告書です。潜在的に効率的な細胞質補充療法のアプローチを提案している。 骨髄間葉系幹細胞（BMSC）は、骨髄から日常的に生成され、培養において容易に増殖する多能性前駆細胞である。胚性幹細胞マーカーOct4、Nanog、およびSOX2は、MSCsにおいて低レベルで検出されている13 。テロメラーゼ活性も測定可能である。さらに、MSC上での共刺激分子およびヒト白血球抗原（HLA）クラスII分子の不在および低HLAクラスI発現は、それらを同種異系または「既製品」使用のための理想的な細胞にする再生医療と免疫調節アプリケーションの両方14 。 ここでは、3μm孔のポリカーボネート膜を介した押し出しによるマウスBMSCからPMVを調製する方法、ミトコンドリアの存在を決定する方法、およびコンポックを用いてPMVにおける膜電位の維持を調べる方法を説明する遠心分離によって濃縮されたが凝集していないPMVを調製し、マウスの腓腹筋にPMVをインビボで注入する。

<table><tbody><tr><td>IsoporeTMメンブレン</td><td>ミリポア</td><td>TSTP04700</td><td>3 mm ポア</td></tr><tr><td>ディスポーザブル フィルター ユニット</td><td>新亜、上海、中国</td><td>25 mm</td><td>医療グレード ポリプロピレン</td></tr><tr><td>インスリン シリンジ</td><td>BD</td><td>328446</td><td>1 mL</td></tr><tr><td>pN1-EGFP</td><td>Clontech</td><td>&nbsp;6085-1</td><td></td></tr><tr><td>MitoTracker</td><td>分子プローブ</td><td>M7514</td><td>グリーン FM、1 &mu;M</td></tr><tr><td>JC-1</td><td>中国・海門</td>市 <td>C2006</td><td>10 mg/mL</td></tr><tr><td>CM-DiI</td><td>中国・海門市</td><td>C1036</td><td>10 mM</td></tr><tr><td>PEI</td><td>Sigma</td><td>P3143</td><td>Mn = 75,000</td></tr><tr><td>蛍光顕微鏡</td><td>ニコン</td><td>Eclipse TE 2000</td><td>CCDカメラ付き</td></tr><tr><td>Confocol 顕微鏡</td><td>カールツァイス</td><td>LSM 510 メタ</td><td></td></tr><tr><td>ポリジェット</td><td>SigaGen</td><td>SL100688</td><td>細胞トランスフェクション用</td></tr></tbody></table>

潜在的細胞質置換療法のための骨髄間葉系幹細胞からの血漿膜小胞の調製

Preparation of Plasma Membrane Vesicles from Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells for Potential Cytoplasm Replacement Therapy

私たちはこれまで、哺乳動物細胞の機械的押出しによる原形質膜小胞（PMV）の生成について報告してきた。 PMVとミトコンドリア欠損Rho0細胞との融合は、正常培養条件下で有糸分裂活性を回復させた。アテローム性動脈硬化症、2型糖尿病、アルツハイマー病および癌は、様々な細胞型の細胞質ゾルおよび細胞小器官における複数の機械的および機能的欠陥に関連すると報告されている加齢性疾患である。骨髄間葉系幹細胞（BMSC）は、多能性を維持しながら自己再生能力を有する骨髄由来の独特の細胞集団を表す。 PMVの融合を介した自己BMSCからの若い細胞質による老化細胞の補充は、加齢に関連する表現型を改善する、または逆転させる有望なアプローチを提供する。このプロトコルは、押出によってBMSCからPMVをポリカーボネート膜を介して3つミオソンドリアの存在を判定し、共焦点顕微鏡を用いてPMV内の膜電位の維持を調べ、遠心分離によってPMVを濃縮し、マウスの腓腹筋にPMVのインビボ注入を行う。

PMVをうまく調製するための鍵は、1mLのPBSをメンブレンに通して試験することができるフィルターユニット（ 図1 ）の正しい組み立てに大きく依存します。漏れが発生した場合は、フィルタユニットを再度組み立て、再度テストしてください。しかし、漏出は、細胞が膜を通って押し出されたときにのみ確実に試験することができる。 10倍の対物レンズを使用する通常の顕微鏡下で少数のPMVしか検出されない場合、またはPMVのサイズが主に約1μmである場合、不正確な組み立てのために細胞の大部分がユニット内に閉じ込められることを示す。直径約3μmの範囲のサイズを有するPMVは、20倍対物レンズ（ 図2 ）を用いて位相差顕微鏡下で検査したときに優勢であった。ナノメートルサイズのPMVは容易に可視化されなかったので、PMVの数の点での割合は低かった。シリンジをすばやく押して再起動すると便利です明らかに球状PMVを形成することができない膜破片の量を増加させる。さらに、より小さいサイズ（1μm未満）のPMVが第1の押出媒体中に見出され...

加齢性疾患は、細胞質成分の複数の欠陥に関連している。ここでは、骨髄間葉系幹細胞から原形質膜小胞を調製するためのプロトコールを提示する。この技術は、加齢に関連した表現型を改善する、またはそれを逆転させるための細胞質置換療法の手段として潜在的に使用することができる。

We have previously reported on the generation of plasma membrane vesicles (PMVs) through the mechanical extrusion of mammalian cells. The fusion of PMVs ...

この手順の全体的な目的は、マウスの骨髄間葉系幹細胞（BMSC）由来の細胞膜小胞（PMV）を用いて、新規の細胞質置換療法をマウスの腓腹筋に導入することです。この手法は、他のBMSCから得られた若い細胞質をPMV融合によって補給することで、加齢に伴う表現型を改善または回復させることができるかという疑問に対する答えを得るのに役立ちます。この技術の主な利点は、BMSCの細胞質をPMVに封入でき、機械的な押し出しによって即座に誘導できる点にあります。この手法を実演する際は、押し出しおよび構築のステップを単に試行するだけでなく、完全に習得することが困難であるため、非常に重要です。PMVを生成するには、まずマウスBMSCを、6ウェルプレートの1ウェルにおいて、37 °C、5% CO2の加湿インキュベーター内で完全DMEM培地を用いて培養します。細胞が90%コンフルエントに達したら、ウェルを0.5 mLのカルシウムフリーPBSで洗浄し、0.5 mLの0.25% trypsin-EDTAで細胞を剥離させます。37°Cで3分間後、手のひらでプレートを数回軽く叩いて細胞の解離を促進させ、1 mLの培地を加えて消化を停止させます。細胞を5 mLコニカルチューブに移して遠心分離し、ペレットを4 mLの新鮮な培地で再懸濁します。その後、細胞を新しい6ウェルプレートの2つのウェルに分注し、プレートを細胞培養インキュベーターに戻して24時間培養します。翌日、先ほど示した通り、トリプシン消化によって1ウェルから細胞を回収します。遠心分離により回収後、ペレットを0.5 millilitersの新鮮な培地で再懸濁します。細胞を1 milliliterのインスリン用注射器に充填し、注射器をフィルターユニットに取り付けます。プランジャーを素早く押し下げて細胞をフィルターに通し、押し出された培地は廃棄します。次に、先ほど示した方法で、追加の培養培地0.5 millilitersをフィルターにロードして分注し、2回目の押し出しで得られた培地を回収します。回収した培地150 microlitersを35 milliliterのガラスボトムディッシュに播種し、小胞が沈殿するまで約10分間静置します。次に、CCDカメラを搭載した倒立位相差顕微鏡を用い、20倍の対物レンズでPMVの存在を確認します。PMV内のミトコンドリアの封入状態および膜電位を追跡するため、90%コンフルエントなBMSC培養物を、新鮮な培地中でそれぞれ適切なミトコンドリア染色剤またはミトコンドリア膜電位プローブを用いて、37°Cで30分間染色します。その後、1回あたり0.5 mLのPBSで細胞を3回洗浄し、共焦点顕微鏡による可視化のために、先ほど示した方法でトリプシン消化により細胞を回収してPMVを調製します。PMVタンパク質の細胞質内局在を追跡するため、まず、EGFP発現カセット用の超らせん状プラスミドDNA 2 µgと、カチオン性トランスフェクション試薬 6 µLを、それぞれ50 µLの無血清DMEMを含む個別の0.5 mLチューブに希釈します。チューブをボルテックスし、その後、短時間遠心分離を行います。次に、希釈したDNA溶液を含むチューブに、トランスフェクション試薬を滴下して加えます。DNAトランスフェクション混合物を1分間激しくボルテックスし、その後、室温で10分間インキュベートした後に短時間遠心分離します。次に、6ウェルプレート内のコンフルエンシー30%のBMSC培養系に、2 mLの新鮮な培養培地を添加し、DNA混合物を細胞に滴下して加えます。トランスフェクションの48時間後に、トリプシン消化によりBMSCを回収し、上述した方法でPMVを調製します。その後、100倍の油浸対物レンズを用いた共焦点顕微鏡によりPMVを解析します。PMVを注入する前に、BMSC培養物を1 mLの新鮮な培地中で、膜染色用蛍光細胞トラッカー染料を用いて37 °Cで30分間ラベルし、トリプシン消化によって細胞を回収します。ラベルした細胞を、1 µgのポリエチレンアミンを添加した0.5 mLの新鮮な培地に再懸濁し、実演した通りにPMVを調製します。次に、遠心分離によってPMVsを濃縮し、ペレットを100 µLの新鮮な培地で緩やかに撹拌しながら再懸濁します。続いて、細胞を30ゲージの針を装着した1 mLインスリン用注射器に充填し、麻酔をかけたBALB/cマウスの腓腹筋の外側を75%エタノールで消毒します。その後、PMVsの全量を筋肉内にゆっくりと注入し、動物をヒートランプの下で回復させます。12時間後、筋肉の上に75%ethanolを散布し、ハサミで皮膚を切開して、腓腹筋の両端を含めた全量を採取します。筋肉をPBSで洗浄し、蛍光顕微鏡下に置きます。20倍の対物レンズを使用し、鋭利なカミソリ刃で蛍光を発していない筋肉組織を除去し、強い赤色蛍光を発している残りの部分を約9mm³の立方体に細切します。各キューブを最適なOCTコンパウンド（最適凍結切片用埋込剤）に埋め込みます。次に、キューブを液体窒素に5分間浸します。その後、分析まで組織サンプルを−20°Cで保存します。20倍の対物レンズを用いた位相差顕微鏡による観察の結果、BMSCから作製されたPMVは主に直径約3 µmの範囲のサイズであることが示されました。蛍光発現カセットを用いてBMSCを48時間トランスフェクションしたところ、PMVによってEGFPタンパク質が細胞質内に封入されていることが明らかになりました。さらに、蛍光ミトコンドリア染色により、PMVの大部分にミトコンドリアが含まれていることが示されました。その大部分はミトコンドリア膜電位染料で陽性に染色され、ミトコンドリアの機能性が示されています。生体内投与前のポリエチレンアミン処理により、細胞成分除去のための遠心濃縮時におけるPMVの凝集が防止されます。PMV作製前にBMSCを膜染料で標識することで、蛍光追跡可能なPMVの作製が容易になります。実際に、標識したPMVを筋注投与した後の腓腹筋の凍結切片を視覚化したところ、PMVが恐らくエンドサイトーシスを介して筋細胞の細胞質に導入されていることが示されました。PMVの作製手順を試みる際は、フィルターで細胞をフラッシングする際にプランジャーを素早く押し下げるため、シリンジに適切な数の細胞を充填することを忘れないでください。この技術の開発により、幹細胞治療分野の研究者がマウスにおける加齢関連疾患の治療を探索する道が開かれました。このビデオを視聴することで、マウスの腓腹筋に細胞質を導入するための、BMSCからのPMVの調製方法について十分に理解できるはずです。

preparation-plasma-membrane-vesicles-from-bone-marrow-mesenchymal

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

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遺伝子送達の強化を目的とした間葉幹細胞膜包覆ナノ小胞の開発

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学ぶ骨髄間葉系幹細胞から血漿膜小胞を調製する方法。機械的押出しにより細胞質を封入し、マウスの腓腹筋へ投与して加齢関連表現型を改善する細胞質置換療法の基礎を確立する。

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