Name: 核の分布、蛋白質および細胞骨格を研究する線虫生殖細胞の解析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-19T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 1 s
Description: 学ぶCaenorhabditis elegans生殖細胞の自動解析法。核分布、タンパク質、細胞骨格構造を三次元再構成し、解析時間短縮とサンプルサイズ拡大を実現。発生生物学研究に有用です。

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彼らのテクニカル サポートありがとうモナッシュ マイクロ イメージング。いくつかの系統は、線虫の遺伝学センター研究インフラストラクチャ プログラム (P40 OD010440) の NIH のオフィスによって資金が供給されるによって提供されました。この作品は、モナッシュ大学生物医学発見交わり、NHMRC プロジェクト助成金 (GNT1105374)、NHMRC 上級研究員 (GNT1137645) と veski 社革新交わりによって支えられた: ロジャー ・ ポコックに VIF 23。

1. 準備とワームの飼育
注: すべての製品情報材料の表を参照してください。
<ol><li>OP50大腸菌文化: 文化ホストゲノム スープ (LB) (1% トリプトン、0.5% 酵母、0.5% の塩化ナトリウム、pH 7.0) 37 ° C 抗生物質なしで一晩で OP50 細菌。</li>
	<li>OP50 細菌線虫成長メディア (NGM) 板 (1.5 g の塩化ナトリウム、寒天、ペプトン、1 M CaCl2エタノール、1 M MgSO4の 1 mL 中 5 mg/mL のコレステロールの 1 mL の 1 mL の 1.25 g の 8.5 g の 400 μ L をシードします。、と 25 mL の 1 M KPO4バッファー)、空気乾燥 48 時間の細菌。</li>
	<li>シード NGM プレート ワームをピックアップし、15 ° C、20 ° c. で孵化させなさい<ol>
<li>大人の両性生殖細胞の分析、細菌の芝生に栄養の十分な L4 ワームをピックアップ、20 ° C で一晩インキュベート</li>
		<li>両性具有で精子数をスコアリングのため、ワームが L4/大人脱皮まで 12 h 20 ° C で L4 ワームを孵化させなさい。L4 段階にワームを同期するには、漂白剤溶液 (1 M NaOH と 1:1 の比率で漂白剤) でたくさんの卵と成虫を選ぶことによって卵を準備します。卵を孵化・ L4 動物実験のための選択を許可します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>テフロン顕微鏡スライドを準備するには、スライドにポリ L リジン溶液の 25 μ L を配置し、ピペット チップを使用して、ソリューションを拡散します。ペーパー タオルで余分なポリ L リジンを除去した後、自然乾燥し、15 〜 20 分の 65 ° C でスライドをインキュベートするスライドを許可します。</li>
</ol>2. 生殖解剖と染色6,13
<ol><li>22 × 22 mm coverslip の 0.01 %tetramisole (麻酔) の 10 μ L を発見し、それに 1 日の古い大人のワームをピックアップします。</li>
	<li>(5 mL) 注射器や針 (24"× 1") を使用してそれが鎮静になるように末尾にワームを解剖し、生殖細胞が破損していないことを確認します。 注: 解剖遂行されなければならない前にワームが完全に麻痺するワームとワームの動きに否定的な圧力援助生殖細胞の放出するようです。精子をスコアリングのため注意が必要、交尾を害することのない針で解剖時に。解離ポイント以外の針で、交尾後、生殖を触れないでください。生殖細胞のコンパートメントに分割がある場合、生殖細胞から任意放電が観察される、生殖細胞は分析のため使用しないでください。</li>
	<li>場所ポリ L リジン コーティング スライドの反転 coverslip スライドに切り裂かれた生殖細胞を維持します。</li>
	<li>1 分はすぐに針を用いたスライドの germlines coverslip を削除するため、液体窒素で観察して配置、スライドの隅にペーパー タワーを置くことによって、coverslip の下で余分な液体を削除します。</li>
	<li>-20 ° C のメタノール、商工会議所で 30-60 秒のためにスライドを転送し、作りたての定着液 (リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) 含む 0.08 M HEPES pH 6.9、1.6 mM MgSO4、0.8 mM エチレング リコール bis(beta-aminoethyl × 1 で 30 分間インキュベートエーテル)-N, N, N', N'-四酸 (グリコールエーテルジアミン四酢酸)、および 3.7% パラホルムアルデヒド) 室温で。</li>
	<li>1x PBS、pH 7.4 を含む商工会議所で配置することによって、スライドを洗う 0.1 %10 分トゥイーン 20 手順を繰り返しますこの一度。</li>
	<li>解決を妨げるの 30 μ L で germlines をブロック (ヤギ血清の 1700 μ L でヤギ血清の 900 μ L を追加することによって準備の 30% 蒸留 H2O および 10 x PBS の 300 μ L) 30 分間室温でプラスチックの箱で湿らせたペーパー タオルを使用して湿気のある商工会議所で。</li>
	<li>各サンプルに 1: 300 比で 30% ヤギ血清で REC 8 抗体溶液の 50 μ L を追加します。4 ° C で一晩インキュベートします。</li>
	<li>スライドを洗う 1x PBS で 0.1% を含む商工会議所に配置 10 分トゥイーン 20 手順を一度し、スライドの隅にペーパー タオルを置くことで余分な液体を削除します。</li>
	<li>緑蛍光 (発光波長 488 nm) 共役二次抗体 (1: 1000)、ファロイジンをアクチン染色 (1:4000)、および DAPI (DNA 染色、1:4000) を 30% ヤギ血清の希釈、二次抗体溶液を準備します。</li>
	<li>二次抗体溶液 50 μ L をスライドに追加します。</li>
	<li>室温で 1 時間インキュベートします。</li>
	<li>スライドを洗う 1x PBS で 0.1% を含む商工会議所に置くことによって 2 回 10 分のトゥイーン 20 余分な液体を拭き取る。</li>
	<li>スライドに試薬を固定の 30 μ L を追加し、上 1.5 μ m coverslip x 12 mm2の場所 4 ° C でスライドを一晩乾燥します。</li>
</ol>3. 共焦点顕微鏡
<ol><li>共焦点顕微鏡、レーザー、共振型スキャナーと共焦点顕微鏡のソフトウェアを入れます。63 X 目的上スライド ホルダーにステンド グラス germlines とスライドを配置します。</li>
	<li>生殖細胞、生殖細胞の上にフォーカスを検索し、共焦点顕微鏡のソフトウェアを使用してそれをマークします。同様に生殖細胞の下部に焦点を当てるし、合計生殖厚さを確立するマークします。</li>
	<li>0.5 μ m. マーク完全な生殖と開始取得まで各スライスの厚さを定義することによって全体の生殖のイメージ。8 回各スライスをスキャンし、画像の品質を改善するために値を平均します。共振型スキャナーは、画像中に漂白を避けるために高速スキャンが許可されます。顕微鏡に共振型スキャナーがあるない場合は、漂白を避けるために 4 つのスキャンの数を減らします。</li>
</ol>4 核の画像解析のポスト数と分布
注: は、ソフトウェア ツールと使用するボタンのスクリーン ショットのための補足図 1を参照してください。
<ol><li>8.4.1 Imaris またはそれ以降のバージョンのソフトウェアに画像をインポートします。</li>
	<li>各地域の核形態を識別することによって分裂地域、移行ゾーン、減数分裂地域、卵母細胞領域、および生殖細胞の交尾を定義します。</li>
	<li>ソフトウェアの表面機能ボタン (補足図 1 a) を使用すると、関心領域を選択します。</li>
	<li>自動サーフェス作成ウィザードをキャンセルし、三次元のスタックからのイメージの最初と最後のスライスの関心領域を手動で描画します。</li>
	<li>作成するサーフェスをクリックします。 注: ソフトウェアは自動的に最初と最後のスタックとスタックを開発します。</li>
	<li>DAPI を除くすべてのチャンネルをマスクマスク チャンネルボタン (補足図 1 b ・ C) をクリックします。</li>
	<li>スポット機能ボタン (補足図 1 a) を使用して核の大きさのパラメーターを定義します。分裂の地域未定義 Z 直径はそのまま XY 直径 2 μ m を定義します。移行ゾーンの (補足図 1) は、1.5 μ m として XY 直径 2 μ m と Z の直径を定義します。 注: は、倍率と顕微鏡の仕様によると直径をトラブルシューティングします。現在のプロトコル使用目的だった 63 X、余分なイメージング中に 1.70 倍の倍率です。目的変更、例えば 40 X、直径はそれに応じて変更する必要があります。正しいパラメーターを確立する野生型 germlines で、トラブルシューティングを実行する必要があります。野生型生殖腕の分裂の地域は、約 250 の核を持っています。直径は、この値を達成するために変更する必要があります。直径の最適な値を決定するために少なくとも 15 germlines を使用します。同様のアプローチは遷移帯 (150-170 核) と減数分裂地域 (600-700 核) を調整するために使わなければなりません。</li>
	<li>最小しきい値 (補足図 1E) を定義することにより、スポットの検出を制限します。使用 DAPI 染色生殖細胞外表示されます最初のスポットまで、立体造形最小しきい値を増やすことにより最小しきい値を確立する野生型 germlines です。</li>
	<li>画像を保存し、ソフトウェアによって自動的に生成されたテーブルから核の数を取得します。TIF ファイルとしてイメージをエクスポートします。</li>
</ol>5. 投稿精子と染色体数をスコアリングのための画像解析
<ol><li>三次元レンダリングを実行するには、関心領域として、交尾を選択します。各精子を検出、0.75 - 間のスポット径を定義する x 1.0 μ m、Y 軸、Z 直径は未定義のまま。補足図 1に示すように、スポット機能ボタンを使用します。</li>
	<li>背景を刻 々 と過ぎで背景を引くボックスやソフトウェア (補足図 1) によって計算されたバック グラウンド補正値を使用して減算を行います。 注: Imaris ソフトウェアおすすめ高強度ポイントまず、関心の領域と背景の間に有意差がある限り、従って背景の影響も最小です。2 番目のメソッドは、バック グラウンドの値を必要に応じてそのバック グラウンド補正を手動で定義するを与えることができます。手動によるバック グラウンド補正は独立した試料の強度の比較が必要な場合は適切ななります。</li>
	<li>交尾 (補足図 1E) ですべての DAPI 染色精子を検出する三次元レンダリングしきい値を調整します。</li>
	<li>染色体を数える、スポット径を定義 < x 0.75 μ m と三次元モデルを開発する前に Y 軸。</li>
	<li>画像を保存し、TIF ファイルとしてエクスポートします。</li>
</ol>6 ポスト生殖細胞の細胞骨格の再構成のための画像解析
<ol><li>生殖細胞への関心の領域を識別してマスクのチャンネルボタンを押してファロイジンを除くすべてのチャンネルをマスクします。</li>
	<li>0.25 μ m の表面の詳細を定義するには、表面機能ボタン (補足図 1) を使用します。 注: つまり、三次元モデルにすべての 0.25 μ m になります。表面のディテールをすべての 0.25 μ m の 3次元形状モデルが作成されます生殖細胞の任意の領域の一定にすることができます。ただし、卵母細胞領域の表面のディテールを延長できます 0.35 - この地域で明確に定義されたアクチン繊維の存在により 0.5 μ m。</li>
	<li>背景を刻 々 と過ぎで背景を引くボックスやソフトウェア (補足図 1) によって計算されたバック グラウンド補正値を使用して減算を行います。</li>
	<li>立体構造解析 (補足図 1E) を必要に応じてしきい値を調整します。</li>
	<li>先進の 3次元画像を保存し、TIF ファイルとしてエクスポートします。</li>
</ol>

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<li>Fox, P. M., Schedl, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+Germline+Stem+Cell+Differentiation+Following+Loss+of+GLP-1+Notch+Activity+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Analysis of Germline Stem Cell Differentiation Following Loss of GLP-1 Notch Activity in Caenorhabditis elegans.</a> Genetics. 201 (1), 167-184 (2015).</li>
<li>Pasierbek, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Caenorhabditis+elegans+cohesion+protein+with+functions+in+meiotic+chromosome+pairing+and+disjunction%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+and+Development%22%5BJournal%5D)">A Caenorhabditis elegans cohesion protein with functions in meiotic chromosome pairing and disjunction.</a> Genes and Development. 15 (11), 1349-1360 (2001).</li>
<li>Klass, M., Wolf, N., Hirsh, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+the+male+reproductive+system+and+sexual+transformation+in+the+nematode+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Development of the male reproductive system and sexual transformation in the nematode Caenorhabditis elegans.</a> Dev Biol. 52 (1), 1-18 (1976).</li>
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<li>Laband, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromosome+segregation+occurs+by+microtubule+pushing+in+oocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Chromosome segregation occurs by microtubule pushing in oocytes.</a> Nat Commun. 8 (1), 1499(2017).</li>
</ol>

著者は利害の衝突を宣言しません。

このプロトコルの目標は、精度を向上させる・生殖細胞の解析に必要な時間を短縮することです。切り裂かれた germlines の標準的な準備の後、生殖核の三次元モデルは計算のレンダリングによって準備されます。空間における生殖核分布の観測を可能にしながら、三次元レンダリングは生殖細胞の特定の領域での核の数を計算します。本手法の重要な側面は、原子核のサイズと形状パラメーターの正確な定義です。これは染色と使用倍率の明快さに依存をイメージ。手動で分析されたデータの1を公開する比較することによって法の精度を確認しました。さらに提案手法の精度を確認、異なる条件の下で複数の突然変異体を使用し、発表された文献で結果を確認します。それはまた微妙な表現型 - を検出するメソッドの機能を確認したcpb 3とglp 1の変異体は、それぞれ。さらに、このメソッドは、核の大きさや形生殖細胞内もしくは系統間の変化への適応を示しています。このプロパティには、同定と染色体や精子などの生殖細胞でより小さい構造の得点もできます。このメソッドは、サイズと形状パラメーターの他のトラブルシューティング...

シグナル伝達経路の哺乳類の保全は、複数の生物学的プロセス1,2を研究するエクセレント モデル線虫をなります。私たちの研究室では、線虫の生殖を使用して、遺伝子発現、アポトーシス、幹細胞の開発を研究します。生殖細胞は立体構造が、多くの研究は三次元解析の時間のかかり、労働集約的な性質のため二次元です。二次元解析が生殖細胞の生体内でイベントを偽ることがあります可能性が高いです。線虫 c. エレガンス大人の両性具有者がそれぞれの家は遠位生殖細胞未分化状態3,4を維持体の遠位先端細胞 (DTC)、2 つの生殖腕。これらの生殖細胞はその影響をエスケープ、DTC から離れるにつれて分化を開始して生殖細胞の近位端に達する彼らと卵子と精子になります。このプロセス中に胚細胞核は減数分裂5,6に移行する前に有糸分裂を経る。精子の生産はその後卵母細胞は成人で作成される開発の幼虫 4 (L4) によって完了です。精子は、卵子の胚を生成する肥やす交尾に格納されます。
線虫核の数, アポトーシス イベント、染色体ダイナミクスとタンパク質の発現や局在7 の番号変更を伴う生殖細胞の発生に影響を与えることができる複数の遺伝子と環境要因があります。 ,8,9,10,11。これらのイベントの分析には、核の形態と分布に基づく分化の各段階の身分証明書が必要です。大規模なサンプル サイズを手動でこれらのパラメーターを正確に分析するには、手間と時間がかかるです。カウント核、核の分布、蛋白質の表現、線虫の生殖の三次元検査のための自動方法を開発したこれらの欠点を回避するために、解析の整合性を有効にするには、細胞骨格と構造体です。三次元レンダリングと共焦点顕微鏡を用いて生殖細胞分化の各段階の身分証明書のサイズと形状パラメーターを生成されます。さらに、このメソッドは、生殖細胞の核と精子のカウントに加えて各卵母細胞における染色体数の得点できます。
生殖細胞の 1 つ重要な構造が細胞骨格、生殖細胞コンパートメント、エイズ細胞質ストリーミングと生殖核12保護に安定性を提供します。計算のレンダリングを使用すると、生殖細胞骨格の 3次元再構築を実施し、生殖細胞内の異なる細胞骨格機能を識別.ここでは、線虫の生殖の共焦点イメージングにより包括的な分析と組み合わせる方法計算の分析を説明するためにステップバイ ステップのプロトコルについて述べる。
急速な線虫の生殖 (図 1) の三次元解析法を提案します。三次元解析を使用して、セル (図 2) 生殖細胞系列の細胞骨格 (の再構築の自動化 (図 2および図 3) 生殖核の三次元分布カウントを研究することが可能です。図 3)、タンパク質 (図 4) や、交尾で精子と卵母細胞 (図 5) の染色体数を得点の分布。メソッドは、生殖細胞を簡単かつ正確な数量化できるだけでなく、生理学的に関連する表現型を識別します。

<table><tbody><tr><td>C. elegans株:野生型(N2、ブリストル)、rnp-8(tm2435)I / hT2[bli-4(e937)let-?(q782) qIs48] (I;III), cpb-3(bt17) I, glp-1 (e2141) III&nbsp;</td><td>Caenorhabditis Genetics Center (CGC)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>OP50 Escherichia coli bacteria</td><td>自家製</td><td></td><td></td></tr><tr><td>線虫成長培地(NGM)プレート</td><td>自家製</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ポリクローナルウサギ抗REC-8&nbsp;</td>ヤギで産生された<td>SDIX</td><td></td> 29470002 <td></td></tr><tr><td>Alexa 488標識抗体</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>A-21236</td><td></td></tr><tr><td>Cytoskeletal dye phalloidin&nbsp;</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>A-12380</td><td></td></tr><tr><td>DAPI&nbsp;</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック&nbsp;</td><td>62248</td><td></td></tr><tr><td>ポリ-L-リジン&nbsp;</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>P5899</td><td></td></tr><tr><td>テトラミソール&nbsp;</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P5899</td><td></td></tr><tr><td>MgSO4</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M7506</td><td></td></tr><tr><td>1M HEPES バッファー、pH 7.4&nbsp;</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>G0887</td><td></td></tr><tr><td>10X PBS pH 7.4&nbsp;</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>AM9625</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20&nbsp;</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P1389</td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>Sigma Aldrich</td><td>E3889</td><td></td></tr><tr><td>37% パラホルムアルデヒド溶液</td><td>Merck Millipore</td><td>1040031000</td><td></td></tr><tr><td>Normal goat serum</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G9023</td><td></td></tr><tr><td>Fluoroshield 固定試薬&nbsp;</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>F6182</td><td></td></tr><tr><td>エタノール&nbsp;</td><td>ミリポア&nbsp;</td><td></td><td></td>1009832511</tr><tr><td>メタノール</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>34860</td><td></td></tr><tr><td>20°;C&25°C;センター&nbsp;</td><td>任意のブランドの</td><td></td><td></td></tr><tr><td>光学顕微鏡</td><td>任意のブランドの</td><td></td><td></td></tr><tr><td>共焦点顕微鏡&nbsp;&nbsp;</td><td>任意のブランド(ライカ、ツァイス)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Imarisスーツ8.4.1以降のバージョンを搭載したコンピューター、ソフトウェアとMatlabソフトウェアを使用するためのフルライセンス。</td><td>Bitplane</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Phospho buffered saline, pH 7.4</td><td>自家製</td><td></td><td></td></tr><tr><td>テフロン顕微鏡スライド&nbsp;</td><td>テクドン&nbsp;</td><td>&nbsp;〒941-322-8288</td><td></td></tr></tbody></table>

核の分布、蛋白質および細胞骨格を研究する線虫生殖細胞の解析

Computational Analysis of the Caenorhabditis elegans Germline to Study the Distribution of Nuclei, Proteins, and the Cytoskeleton

線虫(C. elegans) 生殖細胞、幹細胞の開発、アポトーシスと染色体のダイナミクスを含むいくつかの重要な生物学的プロセスの研究に使用されます。生殖細胞はエクセレント モデルが、解析は、しばしば 2 つの時間と労力を三次元解析による寸法です。このような研究の主要な読み出しは、核と生殖細胞内のタンパク質分布の位です。生殖細胞数と生殖細胞の各地域で核の位置を決定する共焦点顕微鏡と計算のアプローチを使用しての自動解析を実行する方法を紹介します。本手法は、また異なる遺伝背景の蛋白質の表現を立体的に調べることができる生殖細胞蛋白質の分布を分析します。さらに、我々 の研究は、特定の空間発達要件に対応することができる生殖の異なる領域で細胞骨格のアーキテクチャでバリエーションを示します。最後に、提案手法は、各生殖の交尾で精子の自動カウントできます。一緒に取られて、私たちのメソッドは、線虫の生殖の迅速かつ再現性のある表現型分析できます。

図 1は、生殖細胞の三次元分析に必要な時間を示します。20 ° C で培養した L4 両性具有は、germlines を分離するために解剖、DAPI、ファロイジン、および生殖細胞のタンパク質に対する抗体で染色しました。共焦点顕微鏡を用いた Germlines が作成されます。完全な生殖核の位置と数をカウント、特定蛋白質の分布、細胞骨格構造やスコア分析に 10-15 分を必要とする、染色と共焦点顕微鏡は約 24 時間解析を必要とする、精子の数です。完全な手動解析生殖細胞あたり 2 時間以上を必要とする演算子の影響を受けるは、したがって、私たち自動化されたハイスループット法分析時間を短縮し、再現性を高めます。
得点生殖腕住宅約 1,000-1,200 核 (図 2C) 以前に公開されたマニュアル得点データ...

線虫生殖.の三次元再構成のための自動化手法を提案します。本手法は、数と生殖と生殖細胞蛋白質の分布の解析と細胞骨格構造内にある各核の位置を決定します。

The Caenorhabditis elegans (C. elegans) germline is used to study several biologically important processes including stem cell development, apoptosis, and ...

この方法の全体的な目標は、線虫の生殖細胞系の解析を自動化して、その核、タンパク質、および細胞骨格の分布を研究することです。この方法は、生殖細胞系の核と精子の数、核分布、および細胞骨格構造に関するC.Elegans分野の主要な質問に答えるのに役立ちます。この手法の主な利点は、分析時間を短縮し、サンプルサイズを大きくし、手動分析に関連する人為的エラーを排除することです。サンプルをイメージングするには、染色された生殖細胞系のあるスライドを共焦点顕微鏡の63倍対物レンズの上のスライドホルダーに置き、生殖細胞系を見つけます。生殖細胞系の上部に焦点を合わせ、共焦点顕微鏡ソフトウェアで印を付けます。総生殖細胞系の厚さが確立されたら、各スライスの厚さを最大0.5マイクロメートルまで定義し、完全な生殖細胞系をマークします。次に、取得を開始し、各スライスを8回スキャンし、値を平均化して画質を向上させます。すべての画像を取得したら、適切な画像解析ソフトウェアプログラムに画像をインポートし、表面機能ツールを使用して有糸分裂領域を選択します。生殖細胞系の遠位端の画像が表示されます。自動サーフェス作成ウィザードをキャンセルし、3 次元スタックの画像の最初と最後のスライスで、有糸分裂領域の周囲に関心領域を手動で描画します。Create Surface をクリックし、次に Mask Channel をクリックして、DAPI チャネルを除くすべてのチャネルをマスクします。スポット関数ツールを使用して、XY直径が2マイクロメートル、Z直径が未定義の有糸分裂領域のサイズパラメータを定義します。背景を減算をクリックして、背景を減算します。最小しきい値を定義するには、DAPI で染色された野生型生殖細胞系列の最小 3D レンダリングしきい値を、最初のスポットが生殖細胞系列の外側に表示されるまで増やし、各領域の 3D モデルを生成します。画像を保存したら、表をクリックして、ソフトウェアによって自動的に生成された原子核の数を表示し、画像をTIFFファイルとしてエクスポートします。遷移ゾーンについては、前に説明したようにサーフェスを作成します。次に、「チャネルのマスク」をクリックして、DAPIチャネルを除くすべてのチャネルをマスクします。スポット機能を使用して、XY直径を2マイクロメートル、Z直径を1.5マイクロメートルに定義し、[背景の減算]をクリックして背景を減算します。最小しきい値を定義するには、DAPI で染色された野生型生殖細胞系列の最小 3D レンダリングしきい値を、最初のスポットが生殖細胞系列の外側に表示されるまで増やし、各領域の 3D モデルを生成します。画像を保存したら、表をクリックして、ソフトウェアによって自動的に生成された原子核の数を表示し、画像をTIFFファイルとしてエクスポートします。精子数をスコアリングするには、核領域で示されているように、関心領域として精子を選択し、スポット関数ツールを使用してXY直径を0.75〜1マイクロメートルで定義し、Z直径が未定義で各精子を検出します。[背景の減算] ボックスを選択し、ソフトウェアによって計算された背景の補正値を使用して背景を減算します。次に、3Dレンダリングのしきい値を調整して、精子内のDAPI染色された精子をすべて検出します。卵子の染色体カウントでは、卵子を選択し、XY直径を0.75マイクロメートル未満に定義し、しきい値を定義してから3Dモデルを開発します。次に、エクスポートする画像をTIFFファイルとして保存します。細胞骨格の生殖細胞系を再構築するには、生殖細胞系の目的の有糸分裂領域を特定し、前に示したように表面マスクを作成します。「チャネルのマスク」をクリックして、ファロイディンチャネルを除くすべてのチャネルをマスクし、表面関数ツールを使用して 0.25 マイクロメートルの表面詳細を定義します。背景を差し引いた後、3Dレンダリングのしきい値を調整して、現像した3D画像をTIFFファイルとして保存してエクスポートします。核の分布は分化の段階に依存します。例えば、有糸分裂領域では、内側のアクチンは、核が組織化される固体の塊として現れます。野生型の生殖細胞系では、有糸分裂領域には約250個の核が含まれており、他の生殖細胞系と比較して核が密集しています。しかし、核が遠位端から離れるにつれて、核は生殖細胞系の円周に近づき、遷移帯から始まり、減数分裂の前期の第3段階に入ると分布の変化が終わります。遷移帯では、生殖細胞系の内側のアクチンはより円筒形の構造をとり、パキテンに到達すると中空の円柱になります。アクチンの2番目の層は内層を覆い、生殖細胞系を形作っています。円柱状のアクチン構造内のこの円柱は、卵子領域に向かって消失し、その時点でアクチンは卵子を覆う太い繊維として現れます。精子では、アクチンも厚い繊維の束を形成しますが、これらの繊維は卵母細胞領域よりも密集しているように見えます。実証されているように、生殖細胞系の近位端の3次元レンダリングは、各精子に平均151個の精子を明らかにします。一度習得すれば、この分析は生殖細胞系列ごとに10分で完了することができます。この手順を試行する際には、実験で生殖細胞系を視覚化するために使用される対物レンズの倍率に応じて分析パラメータを定義することを忘れないでください。このビデオを見れば、生殖細胞系の自動解析を行う方法、細胞骨格構造を研究する方法、生殖細胞系内の核の数をスコアリングする方法を十分に理解できるはずです。

computational-analysis-caenorhabditis-elegans-germline-to-study

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

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学ぶCaenorhabditis elegans生殖細胞の自動解析法。核分布、タンパク質、細胞骨格構造を三次元再構成し、解析時間短縮とサンプルサイズ拡大を実現。発生生物学研究に有用です。

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