Name: ラット脳組織の疎水性組織除去法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-12-23T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 24 s
Description: 学ぶ ラット脳の疎水性組織除去法を用いた神経回路の可視化手法。F344/N対照およびHIV-1トランスジェニックラットモデルで組織の完全性を保ちながら高解像度イメージングを実現し、ドーパミン作動性経路などの分子レベル解析に応用可能です。

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この作品はNIH助成金によって資金提供されました: NS100624, DA013137, HD043680, MH106392 & T32トレーニンググラント5T32GM081740によって

すべての動物のプロトコルは、サウスカロライナ大学の動物ケアと使用委員会によって見直され、承認されました。
1. ストックソリューションの準備
<ol><li>溶液1(1 L):900mLの脱イオン化H2Oは、100mLのリン酸緩衝生理食塩水(PBS)と2mLのトリトンX-100を加える。</li>
	<li>溶液2(1 L):脱イオン化H2Oの900mLに、10x PBSの100mL、Tween-20の2mL、10mg/mLヘパリンストック溶液の1mLを加える。</li>
	<li>溶液3(500mL):溶液1の400mLに、グリシン11.5gとジメチルスルホキシド(DMSO)100mLを加える。</li>
	<li>溶液4(50mL):溶液1の42mLに、対応する血清3 mLとDMSOの5 mLを加える。</li>
	<li>一次抗体溶液(50 mL):溶液2の46mLに、DMSOの2.5mLおよび1.5mLの対応する血清を加える。</li>
	<li>二次抗体溶液(50 mL):溶液2の48.5mLに、対応する血清1.5mLを加える。 注:溶液4、一次溶液、および二次溶液については、二次抗体(例えば、ヤギ、馬、ウシ)に対応する血清を使用してください。</li>
</ol>2. サンプル準備
注:PFAへの露出を制限するため、ヒュームフードでステップ2.1〜2.7を実行してください。
<ol><li>セボフルランを使用して若い(3-6週間)ラットを深く麻酔します。ラットが応答せず、つま先と尾のピンチに応答しない場合は2.2に進みます。</li>
	<li>ラットを仰向けの位置に置き、アイリスはさみを使用して腹壁を切開します。</li>
	<li>マヨはさみを使用して、リブケージの両側の鎖骨にリブケージの底を切り抜きます。</li>
	<li>胸骨と肋骨を心臓と肺から離し、止まり止めをします。</li>
	<li>灌流ポンプに取り付けられた23G針で左心室を突き刺し、アイリスハサミで右心房を切ります。</li>
	<li>約75mLの100mM(1x)PBSで経心面灌流を行います。</li>
	<li>1x PBSで約100mLのパラホルムアルデヒド(PFA)緩衝を行い、経心透交を続けます。</li>
	<li>鉗子を使用して頭蓋骨から脳を取り除く。</li>
	<li>脳を矢状位置に置き、カミソリの刃とラットの脳マトリックスを使用して4等分(幅約3mm)にスライスします。</li>
	<li>各セクションを1x PBSで4%PFAで密閉し、5mLプラスチックチューブを4°Cで一晩シェーカーで固定します。</li>
	<li>シェーカー上で1時間、室温(RT)で1x PBSで4%PFAで1時間固定を続けます。</li>
	<li>RTで各セクションを1x PBSで30分間3回洗浄します。</li>
</ol>3. 脱水・脱色
<ol><li>試料を20%メタノール/80%脱イオン水溶液にインキュベートし、RTで1時間たたきます。</li>
	<li>サンプルを40%メタノール/60%脱イオン水溶液にインキュベートし、RTで1時間行います。</li>
	<li>サンプルを60%メタノール/40%脱イオン水溶液にインキュベートし、RTで1時間たたきます。</li>
	<li>サンプルを80%メタノール/20%脱イオン水溶液にインキュベートし、RTで1時間培養します。</li>
	<li>RTで100%メタノールで100%メタノールでサンプルをインキュベートし、100%メタノール以上で繰り返し、RTで1時間インキュベートする。</li>
	<li>サンプルを4°Cで100%メタノールで約10分間冷やします。</li>
	<li>66%ジクロロメタン(DCM)/33%メタノール溶液を調製します。</li>
	<li>サンプルをDCM/メタノール溶液に一晩RTでインキュベートし、振盪します。</li>
	<li>RTでメタノールを30分、2回洗浄します。</li>
	<li>サンプルを4°Cで100%メタノールで約10分間冷やします。</li>
	<li>冷蔵し、4°Cで一晩メタノール中に5%過酸化水素を調製した漂白剤。</li>
	<li>サンプルを80%メタノール/20%脱イオン水溶液にインキュベートし、RTで1時間培養します。</li>
	<li>サンプルを60%メタノール/40%脱イオン水溶液にインキュベートし、RTで1時間たたきます。</li>
	<li>サンプルを40%メタノール/60%脱イオン水溶液にインキュベートし、RTで1時間行います。</li>
	<li>試料を20%メタノール/80%脱イオン水溶液にインキュベートし、RTで1時間たたきます。</li>
	<li>サンプルを1x PBSで1時間RTでインキュベートする。</li>
	<li>溶液1をRTで1時間、2回洗浄する。</li>
</ol>4. コレラ毒素サブユニットBラベル
<ol><li>1 mL シリンジの針先を、直腸核部位に挿入します。</li>
	<li>20秒以上の1%ビオチン-CTBの2.5 μLをゆっくりと注入する。</li>
	<li>針先を1分間所定の位置に置き、漏れを防ぐために10s以上ゆっくりと取り外します。</li>
</ol>5. 抗体アプリケーション
<ol><li>溶液3のサンプルを水浴中の37°Cで2日間インキュベートする。</li>
	<li>溶液4のサンプルを水浴中の37°Cで2日間インキュベートする。</li>
	<li>一次抗体を水浴中の37°Cで7日間インキュベートする。</li>
	<li>溶液2で5回洗浄し、1回の洗浄につき1時間インキュベートする。一晩RTでソリューション2に保存します。</li>
	<li>二次抗体を水浴中の37°Cで7日間インキュベートする。</li>
	<li>溶液2で5回洗浄し、1回の洗浄につき1時間のインキュベート。一晩RTでソリューション2に保管してください。 注: 5.6 以降のすべてのステップ (最終ストレージを含む) は、低照度で行う必要があります。サンプル管はアルミニウムホイルによって保護することができる。このプロトコルで抗体に使用された濃度は、TH 1:100、Iba1 1:200、2次抗体1:100でした。手順 5.1 ~ 5.6 にソリューション 2 を追加して、チューブが完全に充填されるようにします。</li>
</ol>6. 組織のクリアリング
<ol><li>試料を20%メタノール/80%脱イオン水溶液にインキュベートし、RTで1時間たたきます。</li>
	<li>サンプルを40%メタノール/60%脱イオン水溶液にインキュベートし、RTで1時間行います。</li>
	<li>サンプルを60%メタノール/40%脱イオン水溶液にインキュベートし、RTで1時間たたきます。</li>
	<li>サンプルを80%メタノール/20%脱イオン水溶液にインキュベートし、RTで1時間培養します。</li>
	<li>試料を100%メタノールで1時間RTでインキュベートする。</li>
	<li>RTで一晩新鮮な100%メタノールでインキュベート。</li>
	<li>66%DCM/33%メタノールで3時間、振動しながら室温でインキュベートする。</li>
	<li>ジベンジルエーテル(DBE)を振らずにインキュベートする。透明になるまでサンプルを DBE に残し、イメージングまで DBE に保存します。</li>
</ol>7. 取り付け
<ol><li>Visijet M3クリスタル樹脂(idisco.info のウェブサイトで入手可能なテンプレート)で作られた3Dプリントチャンバーを入手してください。</li>
	<li>エポキシを使用して顕微鏡スライドにチャンバーを固定します。</li>
	<li>チャンバーの中央にある正方形のスペースにサンプルを置きます。</li>
	<li>チャンバーをDBEで完全に充填します。</li>
	<li>厚さ0.17mmのカバースリップをチャンバーの上に置き、カバースリップがチャンバーの壁に完全に接触するまで圧力を加えます。</li>
	<li>エポキシを使用して、カバースリップの端をチャンバーに密封します。</li>
	<li>チャンバーを回転させて、気泡が充填入口から抜け出せるようにします。</li>
	<li>追加のDBEでチャンバーを充填します。</li>
	<li>充填インレットをエポキシで密封し、治癒を許可します。 メモ:マウント中に余分なDBEがこぼれます。</li>
</ol>8. イメージング
<ol><li>共焦点顕微鏡システムを使用して、4倍の倍率でZスキャンを実行します(付属の 3Dビデオを参照)。</li>
	<li>二次抗体で指定された波長と同様の波長で発光するレーザーセットを用いて、試料の蛍光励起を実現します。TH励起は、632nmで発光するように設定されたHeNeレーザーを利用して達成された。</li>
	<li>検出器をレーザー放射に近い波長に設定します。本プロトコルについては、THの検出器を650nmに設定した。</li>
	<li>目に見える信号が出るまで検出器のゲインを上げます。画像の650LPゲインは7.50 Bに設定されました。</li>
	<li>共焦点イメージングソフトウェアの スキャン オプションを使用して、サンプルが焦点になるまで顕微鏡のステージを移動します。</li>
	<li>すべての平野の組織を移動し、共焦点イメージングソフトウェアを使用して単一の画像またはZスタック画像を取得します。</li>
	<li>イメージングが完了したら、チャンバーからサンプルを取り出します。DBEで完全に充填されたチューブに戻し、RTで暗い場所に保管し、好ましくはアルミホイルで覆います。 注: サンプルは、蛍光信号が依然として強い場合に限り、再マウントおよびイメージ化できます。</li>
</ol>

<ol><li>Chung, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+and+molecular+interrogation+of+intact+biological+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Structural and molecular interrogation of intact biological systems.</a> Nature. 497 (7449), 332-337 (2013).</li>
<li>Susaki, E. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-brain+imaging+with+single-cell+resolution+using+chemical+cocktails+and+computational+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Whole-brain imaging with single-cell resolution using chemical cocktails and computational analysis.</a> Cell. 157 (3), 726-739 (2014).</li>
<li>Ueda, H. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+clearing+and+its+applications+in+neuroscience%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Neuroscienc%22%5BJournal%5D)">Tissue clearing and its applications in neuroscience.</a> Nature Reviews Neuroscienc. 21, 298(2020).</li>
<li>Renier, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((iDISCO%3A+a+simple%2C+rapid+method+to+immunolabel+large+tissue+samples+for+volume+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">iDISCO: a simple, rapid method to immunolabel large tissue samples for volume imaging.</a> Cell. 159 (4), 896-910 (2014).</li>
<li>Renier, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+of+brain+activity+by+automated+volume+analysis+of+immediate+early+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Mapping of brain activity by automated volume analysis of immediate early genes.</a> Cell. 165 (7), 1789-1802 (2016).</li>
<li>Reid, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+HIV-1+transgenic+rat+that+develops+HIV-related+pathology+and+immunologic+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Science+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">An HIV-1 transgenic rat that develops HIV-related pathology and immunologic dysfunction.</a> Proceedings of the National Academy of Science U. S. A. 98, 9271-9276 (2001).</li>
<li>Vigorito, M., Connaghan, K. P., Chang, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+HIV-1+transgenic+rat+model+of+neuroHIV%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%2C+Behavior%2C+and+Immunity%22%5BJournal%5D)">The HIV-1 transgenic rat model of neuroHIV.</a> Brain, Behavior, and Immunity. 48, 336-349 (2015).</li>
<li>McLaurin, K. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synaptic+connectivity+in+medium+spiny+neurons+of+the+nucleus+accumbens%3A+A+sex-dependent+mechanism+underlying+apathy+in+the+HIV-1+transgenic+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Behavior+Neurosciences%22%5BJournal%5D)">Synaptic connectivity in medium spiny neurons of the nucleus accumbens: A sex-dependent mechanism underlying apathy in the HIV-1 transgenic rat.</a> Frontiers in Behavior Neurosciences. 12, 285(2018).</li>
<li>Fitting, S., Booze, R. M., Mactutus, C. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HIV-1+proteins%2C+Tat+and+gp120%2C+target+the+developing+dopamine+system%5BTitle%5D)+AND+%22Current+HIV+Research%22%5BJournal%5D)">HIV-1 proteins, Tat and gp120, target the developing dopamine system.</a> Current HIV Research. 13, 135-137 (2015).</li>
<li>Javadi-Paydar, M., Roscoe, R. F., Denton, A. R., Mactutus, C. F., Booze, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HIV-1+and+cocaine+disrupt+dopamine+reuptake+and+medium+spiny+neurons+in+female+rat+striatum%5BTitle%5D)+AND+%22PLos+One%22%5BJournal%5D)">HIV-1 and cocaine disrupt dopamine reuptake and medium spiny neurons in female rat striatum.</a> PLos One. 12 (11), 0188404(2017).</li>
<li>Bertrand, S. J., Mactutus, C. F., Harrod, S. B., Moran, L. M., Booze, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HIV-1+proteins+dysregulate+motivational+processes+and+dopamine+circuitry%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Report%22%5BJournal%5D)">HIV-1 proteins dysregulate motivational processes and dopamine circuitry.</a> Science Report. 8, 6152(2018).</li>
<li>Denton, A. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+monoaminergic+and+histaminergic+circuit+dysregulation+following+long-term+HIV-1+protein+exposure%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+neurovirology%22%5BJournal%5D)">Selective monoaminergic and histaminergic circuit dysregulation following long-term HIV-1 protein exposure.</a> Journal of neurovirology. 25 (4), 540-550 (2019).</li>
<li>Berendse, H. W., Groenewegen, H. J., Lohman, A. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Compartmental+distribution+of+ventral+striatal+neurons+projecting+to+the+mesencephalon+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscienc%22%5BJournal%5D)">Compartmental distribution of ventral striatal neurons projecting to the mesencephalon in the rat.</a> Journal of Neuroscienc. 12 (6), 2079-2103 (1992).</li>
<li>Peyron, C., Petit, J. M., Rampon, C., Jouvet, M., Luppi, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Forebrain+afferents+to+the+rat+dorsal+raphe+nucleus+demonstrated+by+retrograde+and+anterograde+tracing+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Forebrain afferents to the rat dorsal raphe nucleus demonstrated by retrograde and anterograde tracing methods.</a> Neuroscience. 82 (2), 443-468 (1998).</li>
<li>Barrot, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Braking+dopamine+systems%3A+a+new+GABA+master+structure+for+mesolimbic+and+nigrostriatal+functions%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience%3A+The+Official+Journal+of+the+Society+for+Neuroscienc%22%5BJournal%5D)">Braking dopamine systems: a new GABA master structure for mesolimbic and nigrostriatal functions.</a> The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscienc. 32 (41), 14094-14101 (2012).</li>
<li>Roostalu, U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+whole-brain+3D+imaging+of+tyrosine+hydroxylase-labeled+neuron+architecture+in+the+mouse+MPTP+model+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Disease+Models+%26+Mechanisms%22%5BJournal%5D)">Quantitative whole-brain 3D imaging of tyrosine hydroxylase-labeled neuron architecture in the mouse MPTP model of Parkinson's disease.</a> Disease Models & Mechanisms. 12 (11), (2019).</li>
<li>Ransohoff, R., Cardona, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+myeloid+cells+of+the+central+nervous+system+parenchyma%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The myeloid cells of the central nervous system parenchyma.</a> Nature. 468, 253-262 (2010).</li>
<li>Rocha, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+Clearing+and+Light+Sheet+Microscopy%3A+Imaging+the+Unsectioned+Adult+Zebra+Finch+Brain+at+Cellular+Resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Neuroanatomy%22%5BJournal%5D)">Tissue Clearing and Light Sheet Microscopy: Imaging the Unsectioned Adult Zebra Finch Brain at Cellular Resolution.</a> Frontiers in Neuroanatomy. 13, 13(2019).</li>
<li>Richardson, D. S., Lichtman, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clarifying+tissue+clearing%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Clarifying tissue clearing.</a> Cell. 162 (2), 246-257 (2015).</li>
</ol>

著者の誰も宣言する利害の対立を持っていません。

組織のクリアリングは、従来のIHCプロトコルの限界に対するソリューションを提供します。透明な試料は、光の散乱および吸収を最小限に抑え、無傷の組織18,19への細胞レベルの光学的アクセスを提供する。組織クリア技術は、脱脂、脱色、および溶媒の投与による脱灰によって組織を透明にする。組織試料の屈折率が選択した撮像媒体の屈折率と一致すると、サンプルは完全に透明に見え、適切に画像化できる3。本疎水性プロトコルは、初期脱水工程で組織から水を除去し、光散乱を低減させる。組織は、深い抗体の浸透を可能にするために、前処理中に透過化されます。プロトコルを受けた組織は容易に扱うことができるし、数回イメージすることができる。適切に保存されていれば、組織は初期処理後1年間まで画像を提供することができます。
本プロトコルでは、Th、Iba1、CTBの染色にF344/NおよびHIV-1 Tgラット脳組織サンプルに疎水性組織除去技術を適用する。クリア...

いくつかの組織クリアリング技術は、脳内での使用のために検証されている:ヒドロゲル、親水性、および疎水性。これらの技術は、溶媒の投与を介して脱脂、脱色、および脱灰を通じて組織を透明にすることを目指しています。組織試料の屈折率が選択した撮像媒体の屈折率と一致すると、サンプルの鮮明な画像が得られる。CLARITYなどのヒドロゲルベースの技術は、それらをアクリルベースのヒドロゲルにリンクすることによって組織中の生体分子を固定し、タンパク質の構造的損傷および損失を防ぐ。しかし、ヒドロゲル技術は、より脆弱な組織を損傷する可能性を持つよりも過酷な化学物質を利用し、より密度の高い組織サンプルはヒドロゲルプロトコルと互換性がない可能性があります。ある種のヒドロゲル技術は、高価な機器を必要とするか、組織の膨張につながる可能性があります。親水性の技術は、CUBICのような、組織内の水素結合の形成を通じて3D構造を保存する2。組織の膨張はまた、特定の親水性プロトコルで起こり得る。親水性技術のクリア能は、疎水性技術が有する能力と一致しないことが多く、これはより密度が高く、より厚い組織3にとって重要である。
疎水性の技術は、通常、高速で、特別な機器を必要とせず、取り扱い、保管が容易なサンプルを製造します。iDISCOは、他の疎水性プロトコルで起こり得る収縮を排除する疎水性技術です。もともと、iDISCO組織除去技術は、マウスの胚および緻密な成人器官に対するRenier et4 によって記述された。この技術は、初期脱水工程で組織から水分を除去し、光散乱を低減させる。組織は、深い抗体の浸透を可能にするために、前処理中に透過化されます。遠赤色スペクトルのアレクサ蛍光色素は、低波長5で組織の自己蛍光を避けるために免疫標識に使用される。疎水性のクリアリングプロトコルを受けた組織は容易に扱うことができる、Alexa Fluor染料の長寿のために数回イメージすることができる。適切に保存されていれば、組織は初期処理後数ヶ月から1年の画像を提供することができます。
本プロトコルにおいて、チロシンヒドロキシラーゼ(TH)抗体、Iba1抗体、およびコレラ毒素サブユニットB(CTB)は、男性および女性の両方のコントロールおよびHIV-1トランスジェニック(Tg)ラット脳に使用された。HIV-1 Tgラットは、HIV-1ウイルスゲノムを構成する9つの遺伝子のうち7個を有し、これは長期HIV-1タンパク質暴露6、7、8の非感染モデルをもたらす。ドーパミン作動性変化は、HIV-1 Tgラットで以前に実証されており、HIV-1自体は炎症性疾患であるため、抗体選択は実験計画9、10、11、12に関連していた。CTBは、神経節側結合を介してニューロンに付着し、脳内の発泡性突起を追跡するために使用することができるトレーサーです。CTBは以前、副坐核から実質的なニグラ領域への突起を研究するために使用されてきたが、ドーパミン作動経路13、14、15に深く関与する脳の2つの領域。
このプロトコルでは、THはドーパミン産生のマーカーとして機能し、Iba1は活性化ミクログリアをマークします。TH抗体は、チロシンヒドロキシラーゼに対応する約62kDaで単一のバンドを選択的に標識します。Iba1抗体は、Iba1カルボキシ末端配列に対応します。両方の抗体はウサギで育てられ、ポリクローナルであった。CTBは、核accumbens領域から実質的なニグラ領域へのニューロンの逆行トレースに使用されます。現在のプロトコルはまた、2つの異なる方法で元のiDISCOプロトコルの調整のためのガイドラインを提供しています:1)ブロッキングステップで血清試薬を変更することによってバックグラウンド染色の全体的な減少、および2)より大きな組織サンプルに適したインキュベーション時間のスケーリング。全体として、本プロトコルは、疎水性除去技術がラットの脳組織において実現可能であり、HIV-1ウイルスタンパク質との識別可能な有害相互作用を有せず、TH抗体、Iba1抗体およびCTBと互換性があるという継続的な証拠を提供する。

<table><tbody><tr><td>コレラ毒素サブユニットB(組換え体)、Alexa Fluor 488</td><td>Invitrogen</td><td>C34775</td><td></td></tr><tr><td>DBE</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>108014-1KG</td><td></td></tr><tr><td>DCM</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>270997-100mL</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>472301-1L</td><td></td></tr><tr><td>Glycine</td><td>Fisher Chemical</td><td>G46-500</td><td></td></tr><tr><td>ヤギ抗ウサギ Alexa Fluor Plus 647</td><td>Invitrogen</td><td>A32733</td><td></td></tr><tr><td>ヤギ血清</td><td>Sigma Life Science</td><td>G9023-10mL</td><td></td></tr><tr><td>ヘパリン</td><td>Acros Organics</td><td>41121-0010</td><td></td></tr><tr><td>Iba1 一次抗体</td><td>富士フイルム 和光</td><td>019-19741</td><td></td></tr><tr><td>Kwik-sil エポキシ</td><td>VWR</td><td>70730-062</td><td></td></tr><tr><td>メタノール</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>34860-1L-R</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>フィッシャーバイオ試薬</td><td>BP2944-100</td><td></td></tr><tr><td>灌流機</td><td>VWR70730-062</td><td>ミニポンプ可変流量</td><td></td></tr><tr><td>PFA</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>158127-3KGTH</td><td></td></tr><tr><td>一次抗体</td><td>ミリポアシグマ</td><td>AB152</td><td></td></tr>トリ<tr><td>トンX-100</td>フィ<td>ッシャーバイオ試薬</td><td>BP151-500</td><td></td></tr>トゥ<tr><td>イーン-20</td><td>フィッシャーバイオ試薬</td><td>BP337-500</td><td></td></tr></tbody></table>

ラット脳組織の疎水性組織除去法

A Hydrophobic Tissue Clearing Method for Rat Brain Tissue

疎水性組織のクリアリング方法は、容易に調整可能で、速く、そして、不変の組織サンプルの目的の分子の研究を可能にする低コストのプロシージャである。従来の免疫標識法では、サンプルを薄い部分に切断する必要があり、無傷の構造にラベルを付け、検査する能力が制限されます。しかし、処理中に脳組織がそのまま残る場合、構造や回路は解析のためにそのまま残ることができます。以前に確立された清算方法は、組織を完全にクリアするのにかなりの時間がかかり、過酷な化学物質はしばしば敏感な抗体を損傷する可能性があります。iDISCO法は、組織を迅速かつ完全にクリアし、多くの抗体と互換性があり、特別なラボ機器を必要としません。この技術は、マウス組織での使用のために最初に検証されたが、現在のプロトコルは、制御およびトランスジェニックラット脳の半球を画像化するためにこの方法を適応させる。これに加えて、本プロトコルは、より少ない背景染色でより鮮明な画像を提供するために、既存のプロトコルにいくつかの調整を行います。Iba-1およびチロシンヒドロキシラーゼに対する抗体は、本疎水性組織除去法を用いてHIV-1トランスジェニックラット及びF344/N対照ラットで検証された。脳は、構造が互いに別々よりも頻繁に一緒に働く織り交ぜられたネットワークです。個々の部分の組み合わせとは対照的に、システム全体として脳を分析することは、この脳全体のクリアリング方法の最大の利点です。

F344/NおよびHIV-1ラットの両方の脳組織の大きなセクションの完全なクリアは、この修飾された疎水性組織クリアリングプロトコルを使用して達成された。 図1 は、立証ニグラ領域におけるTHの典型的な共焦点像を示す。 図1Aは 、密な正の染色を示す。このような密集した領域は、正の染色と適切な細胞形態を確認するために「Z」平面を通して焦点を合わせると解析することができます。 図1B は、THニューロンの明確な形態によって同定することができる疎な陽性染色を表す。 図1C は、積極的に染色されていないが、バックグラウンド信号のためにまだ濃い青色の組織を表しています。完全に黒く表示される画像の領域は、その領域に組織が存在しなくなることを示しています。画像内の完全に黒い領域は、サンプルの端にあるか、サンプル内にある穴、または焦点が合っていない組織に起因する可能性があります。
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ここでは、インタクトな脳構造の一部として標的分子を観察することを可能にする疎水性組織クリアリング法を提示する。この技術は現在、両方の男女のF344/ NコントロールおよびHIV-1トランスジェニックラットについて検証されている。

Hydrophobic tissue clearing methods are easily adjustable, fast, and low-cost procedures that allows for the study of a molecule of interest in unaltered ...

この透明化技術の全体的な目標は、ラットの脳の組織透明化方法を確立することです。このプロトコルは、HIV-1トランスジェニックラットにも使用できます。この技術の主な利点は、ラットの脳組織を無傷のままにしてクリアリングできるため、完全な回路レベルの分析が可能になることです。この手順を実演するのは、私の研究室の博士課程の候補者であるKristin Kirchnerと、私の研究室の研究員であるHailong Liです。3〜6週齢のラットで経心灌流を行った後、鉗子を使用して頭蓋骨から脳を取り出します。次に、矢状位置に置き、かみそりの刃とラットの脳マトリックスを使用して、幅3ミリメートルの4つの等しいセクションにスライスします。各セクションを4%PFAで密閉された5ミリリットルのプラスチックチューブに、摂氏4度のシェーカーで一晩固定します。翌日、室温で1時間固定を続けます。各セクションをPBSで3回、1回の洗浄で約30分間洗浄します。洗浄した切片を20、40、60、80、および100%メタノール溶液でそれぞれ1時間連続インキュベートします。100%メタノールで脱水を繰り返します。次に、サンプルを100%メタノールで摂氏4度で10分間冷却します。66%DCMと33%メタノールを含む溶液を調製し、この溶液中の冷却切片を室温で一晩振とうしながらインキュベートします。翌日、サンプルをメタノールで30分間2回洗浄し、100%メタノールで摂氏4度で10分間冷却します。漂白するには、サンプルをメタノール中の新鮮な5%過酸化水素に入れ、摂氏4度で一晩インキュベートします。一晩インキュベーションした後、サンプルを80%、60、40、および20%メタノール溶液に室温でそれぞれ1時間連続インキュベートします。次に、サンプルをPBSで1時間インキュベートし、溶液中で2回、1回の洗浄で1時間1回洗浄します。1ミリリットルの注射器に2.5マイクロリットルの1パーセントビオチン-CTBを入れ、20秒かけて側坐核部位にゆっくりと注入します。針先を1分間そのままにし、漏れを防ぐために10秒かけてゆっくりと取り外します。サンプルを溶液3でインキュベートし、次に溶液4でそれぞれ2日間、摂氏37度のウォーターバスでインキュベートします。その後、一次抗体を添加し、7日間インキュベーションを続けます。サンプルを溶液2で1回の洗浄につき1時間5回洗浄し、溶液2に室温で一晩保存します。サンプルを二次抗体と共生し、摂氏37度のウォーターバスで7日間インキュベートします。最後に、1回の洗浄につき1時間、溶液2で5回洗浄し、室温で2溶液に一晩、暗い場所で保管します。サンプルを20、40、60、80、および100%メタノールで室温でそれぞれ1時間連続してインキュベートします。その後、新鮮な100%メタノールで一晩インキュベートします。翌日、新たに調製した66%DCM、33%メタノール溶液でサンプルを室温で3時間インキュベートします。3時間後、サンプルが透明になるまで振とうせずにジベンジルエーテルでインキュベートします。その後、イメージングするまでジベンジルエーテルに保存します。3Dプリンターのチャンバーを入手し、エポキシを使用して顕微鏡スライドに固定します。チャンバー中央の正方形のスペースにサンプルを置き、チャンバー内にジベンジルエーテルを完全に充填します。厚さ0.17mmのカバースリップをチャンバーにかぶせ、圧力を加えてチャンバーの壁に完全に接触するようにします。次に、エポキシを使用してエッジをシールします。気泡が充填入口から逃げるように、チャンバーを回転させてください。チャンバーに追加のジベンジルエーテルを充填します。次に、充填入口をエポキシで密封し、硬化させます。共焦点顕微鏡システムを使用して標本を観察し、4倍の倍率でz-スキャンを実行します。疎水性に透明化された組織サンプルを4倍倍に拡大した共焦点像は、黒質領域に密集したTH染色、黒質に隣接するまばらなTHニューロン、およびTHニューロンを欠く組織の暗い黒色の領域を示しています。20倍の拡大でTH陽性ニューロンの典型的な形態は、大きな体細胞といくつかの分岐プロセスを持っています。一方、IBA1で染色されたミクログリアは、細胞体が小さく、延長プロセスが短いです。理想的な共焦点像は、黒質領域における正の高密度TH染色を示し、適切な蛍光ゲインを示します。共焦点画像が不十分な例としては、蛍光利得が大きすぎる不適切な焦点の画像、組織の他の部分と焦点が合っていない明るいスポットによる偽陽性染色、二次抗体と一致しないブロッキング血清を使用した結果としてバックグラウンド染色が高くなるなどがあります。ラットの脳におけるCTB陽性染色がここに示されている。細長い線維は、ドーパミン作動性経路に沿った求心性突起です。THとCTBの共局在化により、側坐核領域の注入部位を、蛍光が密集した緑色の円として可視化することが可能になります。ここでは、黒質におけるTHとCTBの共局在を示します。この手順を試みる際に覚えておくべき最も重要なことは、サンプルがすべての抗体溶液でインキュベートするのに十分な時間を確保し、イメージング前に完全にクリアするのに十分な時間を確保することです。サンプルは、サンプルを損傷するため、空気への曝露を制限する必要があります。この手法は非常に汎用性が高く、脳のさまざまな領域で関心のある多くの異なるタンパク質を調査するために使用できます。本技術は、神経科学者がラットの脳を回路レベルで調査する道を開くのに役立ち、これはシステム全体としての脳の研究に不可欠です。

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出典:Kirchner, K.N., et al., A Hydrophobic Tissue Clearing Method for Rat Brain Tissue.J. Vis. Exp.

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ラット脳組織の疎水性組織除去法

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