1. 모바일 단계 만들기
2. 구성 요소 솔루션 만들기
만들어야 할 세 가지 구성 요소는 카페인 (0.8 mg / mL), 칼륨 벤조아테 (1.4 mg / mL), 아스파타메 (L-aspartyl-L-페닐라닌 메틸 에스테르) (6.0 mg/mL). 이러한 농도는 한때 같은 방식으로 희석되면 소다 샘플에서 발견되는 수준에서 표준을 넣습니다.
3. 7가지 표준 솔루션 만들기
세 가지 구성 요소는 모두 서로 다른 분포 계수를 가지며, 이는 각 단계가 모두 상호 작용하는 방식에 영향을 미칩니다. 분포 계수가 클수록 부품이 고정 단계에서 더 많은 시간을 소비하여 검출기에 도달하는 데 시간이 길어집니다.
4. HPLC 시스템의 초기 설정 확인
5. 샘플 및 데이터 수집을 수동으로 삽입

그림 1. 3 성분의 크로마토그램. 왼쪽에서 오른쪽으로, 그들은 카페인, 아스파타메, 벤조아테입니다.
6. 다이어트 탄산음료 샘플
다이어트 콜라, 다이어트 펩시, 콜라 제로는 "미지수"입니다. 그들은 거품이 HPLC 시스템에 좋지 않기 때문에 탄산을 제거하기 위해 하룻밤 동안 열린 용기에 빠져 나왔습니다. 이것은 충분히 샘플의 가스를 제거합니다.
7. 계산

그림 2. 곱해야 하는 곡선의 피크 높이와 너비의 기본 예입니다(높이 시간 폭은 1/2 높이).
출처: 폴 바우어 박사 - 퍼듀 대학교
고성능 액체 크로마토그래피(HPLC)는 액체 샘플의 성분을 분리하고 정량화하는 데 일반적으로 사용되는 중요한 분석 방법입니다. 이 기술에서 솔루션(제1 상)은 표면에 결합된 두 번째 위상을 가진 작은 다공성 입자의 포장을 포함하는 열을 통해 펌핑된다. 두 단계에서 샘플 구성 요소의 용해도가 다르면 구성 요소가 서로 다른 평균 속도로 컬럼을 통과하여 이러한 구성 요소를 분리합니다. 펌핑된 솔루션을 이동단계라고 하며 컬럼의 위상을 고정 위상이라고 합니다.
액체 크로마토그래피의 여러 모드가 있습니다, 고정 및 / 또는 모바일 단계의 종류에 따라 고용. 이 실험은 고정 단계가 극적이지 않으며 이동 상이 극성인 반전 위상 크로마토그래피를 사용합니다. 사용되는 고정 단계는 C18 탄화수소 그룹이 3μm 실리카 입자에 접합되는 반면, 이동상은 극성 유기 수정자(acetonitrile)가 첨가된 수성 완충제로 용출 강도를 변화시킵니다. 이 양식에서 실리카는 수용성 샘플에 사용할 수 있어 광범위한 응용 을 제공합니다. 이 실험에서, 다이어트 청량 음료에서 자주 발견 되는 세 가지 구성 요소의 혼합물 (즉 카페인, 벤조아테, 그리고 아스파타메) 분리. 3종의 알려진 양을 포함하는 7개의 준비된 해결책이 이용되고, 그들의 크로마토그램은 그 때 기록됩니다.
1. 모바일 단계 만들기
2. 구성 요소 솔루션 만들기
만들어야 할 세 가지 구성 요소는 카페인 (0.8 mg / mL), 칼륨 벤조아테 (1.4 mg / mL), 아스파타메 (L-aspartyl-L-페닐라닌 메틸 에스테르) (6.0 mg/mL). 이러한 농도는 한때 같은 방식으로 희석되면 소다 샘플에서 발견되는 수준에서 표준을 넣습니다.
3. 7가지 표준 솔루션 만들기
세 가지 구성 요소는 모두 서로 다른 분포 계수를 가지며, 이는 각 단계가 모두 상호 작용하는 방식에 영향을 미칩니다. 분포 계수가 클수록 부품이 고정 단계에서 더 많은 시간을 소비하여 검출기에 도달하는 데 시간이 길어집니다.
4. HPLC 시스템의 초기 설정 확인
5. 샘플 및 데이터 수집을 수동으로 삽입

그림 1. 3 성분의 크로마토그램. 왼쪽에서 오른쪽으로, 그들은 카페인, 아스파타메, 벤조아테입니다.
6. 다이어트 탄산음료 샘플
다이어트 콜라, 다이어트 펩시, 콜라 제로는 "미지수"입니다. 그들은 거품이 HPLC 시스템에 좋지 않기 때문에 탄산을 제거하기 위해 하룻밤 동안 열린 용기에 빠져 나왔습니다. 이것은 충분히 샘플의 가스를 제거합니다.
7. 계산

그림 2. 곱해야 하는 곡선의 피크 높이와 너비의 기본 예입니다(높이 시간 폭은 1/2 높이).
고성능 액체 크로마토그래피(HPLC)는 고정상과의 다양한 상호 작용을 기반으로 액체 혼합물의 구성 요소를 분리하는 매우 다재다능한 기술입니다.
HPLC는 컬럼 크로마토그래피를 개조한 것입니다. 컬럼 크로마토그래피에서 컬럼은 고정상(stationary phase)이라고 하는 마이크로 스케일 비드로 충전됩니다. 고정상 비드는 비드와 액체 또는 이동상에 위치한 혼합물의 구성 요소 사이의 상호 작용을 유도하는 화학 그룹으로 기능화됩니다. 혼합물이 컬럼을 통해 흐를 때 성분은 고정상과 다르게 상호 작용합니다.
HPLC에서 컬럼 크로마토그래피는 기존 컬럼 크로마토그래피보다 더 높은 유속과 더 높은 압력에서 수행됩니다. 이를 통해 표면적 대 부피 비율이 더 큰 더 작은 고정상(stationary phase) 비드를 사용할 수 있으며, 이는 이동상에서 고정상과 성분의 상호 작용을 크게 증가시킵니다.
이 비디오는 다양한 다이어트 소다의 성분을 분리하는 방법을 시연하여 HPLC 작동의 기초를 소개합니다.
실험실에서 사용되는 HPLC에는 분석용 HPLC와 분취용의 두 가지 유형이 있습니다. 분석용 HPLC에서 기기는 소량의 성분을 식별하는 데 사용되며 분석된 샘플은 폐기물로 폐기됩니다. 분취용 HPLC에서 기기는 혼합물을 정제하는 데 사용되며 원하는 양의 각 성분이 분획으로 수집됩니다.
HPLC 기기는 일련의 간단한 구성 요소로 구성됩니다. 먼저, 용매 저장조에 유지되는 이동상은 일정한 유속으로 하나 이상의 펌프에 의해 시스템을 통해 펌핑됩니다. 샘플은 샘플 주입기에 의해 이동상 스트림으로 주입됩니다. 이동상에 의해 희석된 샘플은 HPLC 컬럼으로 전달되어 샘플의 구성 요소가 분리됩니다. 그런 다음 검출기에 의해 성분을 분석하고 나중에 사용하기 위해 분획으로 저장하거나 폐기물 병으로 옮깁니다.
HPLC 컬럼은 시스템의 핵심 구성 요소입니다. 그것은 금속 또는 플라스틱 실린더로 구성되며, 고정상 또는 크로마토 그래피 수지의 마이크로 스케일 비드로 포장되어 있습니다. 샘플 혼합물은 일정한 유속으로 충전된 입자층을 통해 흐르고 각 구성 요소는 흐름에 따라 고정상과 상호 작용합니다.
화합물은 고정상과 다르게 상호 작용하므로 다른 속도로 컬럼의 길이를 따라 검출기로 이동합니다. 성분이 컬럼을 빠져나가거나 용리하는 데 필요한 시간을 머무름 시간이라고 합니다. 그 결과 머무름 시간 대 강도의 플롯 또는 크로마토그램이 생성됩니다. 보존 시간은 구성 요소를 식별하는 데 사용됩니다. 피크 크기, 특히 피크 아래 면적은 초기 용액에 있는 화합물의 양을 정량화하는 데 사용됩니다.
고정상의 선택은 샘플 혼합물에 있는 성분의 특성에 따라 달라집니다. 가장 일반적으로 사용되는 고정상은 실리카 비드(silica bead)로, 마이크로 스케일 비드를 형성하고 충분한 패킹 밀도를 달성하는 불활성 비극성 물질이기 때문입니다. HPLC의 가장 일반적인 유형은 역상 크로마토그래피로, 소수성 고정상, 일반적으로 비드 표면에 결합된 C18 사슬이 있는 실리카 비드를 사용합니다. 구성 요소는 극성이 감소하는 순서로 용리됩니다.
역상 크로마토그래피에 사용되는 이동상은 일반적으로 물과 아세토니트릴과 같은 유기 용매의 혼합물입니다. 샘플에 따라 이동상은 물과 유기 용매의 일정한 비율을 유지할 수 있으며, 이를 등용매 모드(isocratic mode)라고 합니다. 그러나 이것은 수분 함량이 높은 경우 넓은 피크 또는 유기물 함량이 높은 경우 겹치는 피크로 이어질 수 있습니다.
또한 이동상 비율은 분리 중에 선형 또는 단계적으로 변경하여 이동상 구배를 생성할 수 있습니다. 그래디언트 용리는 극성이 적은 성분의 피크 확장을 방지하여 분리를 개선하고 용리 시간을 단축할 수 있습니다.
이제 HPLC의 기본 사항을 설명했으므로 실험실에서 HPLC 기술을 시연할 것입니다. 이 실험에서 HPLC는 다이어트 소다의 세 가지 일반적인 구성 요소를 분리하고 정량화하는 데 사용됩니다.
먼저, 이동상을 준비하기 위해 정제된 탈이온수 1.5L에 아세토니트릴 400mL를 첨가합니다. 그런 다음 빙초산 2.4mL를 조심스럽게 첨가하십시오. 용액을 총 부피 2L로 희석합니다. 결과 용액의 pH는 2.8에서 3.2 사이여야 합니다.
보정된 pH 측정기를 사용하여 교반 용액에 40% NaOH를 적방울 방향으로 첨가하여 pH를 4.2로 조정합니다.
진공 상태에서 0.47μm 멤브레인 필터를 통해 이동상을 여과하여 용액의 가스를 제거하고 컬럼을 막을 수 있는 고형물을 제거합니다. 기포는 고정상에서 공극을 유발하거나 검출기 셀로 이동하여 측정을 불안정하게 만들 수 있으므로 용액의 가스를 제거하는 것이 중요합니다.
카페인, 벤조에이트, 아스파탐의 세 가지 구성 요소를 준비하며, 이는 다이어트 탄산음료의 세 가지 일반적인 구성 요소입니다. 그런 다음 이러한 구성 요소 솔루션을 사용하여 미지 물질을 결정하는 데 사용할 표준 솔루션을 준비합니다. 카페인과 벤조에이트 용액 500mL를 준비합니다.
아스파탐 성분 용액 100mL를 준비합니다. 사용하지 않을 때는 분해를 방지하기 위해 용액을 냉장고에 보관하십시오.
다음으로, 각각 다른 농도의 카페인, 벤조에이트 및 아스파탐을 함유한 7가지 표준 용액을 준비합니다. 각 성분을 적당량의 부피 플라스크에 피펫으로 주입하고 이동상으로 50mL 표시까지 희석합니다.
처음 3개의 솔루션에는 각각 하나의 성분이 포함되어 있어 피크 식별이 가능합니다. 다른 4개의 용액에는 피크 높이와 농도의 상관관계를 파악하기 위해 3가지 성분 모두의 농도 범위가 포함되어 있습니다.
각 표준 용액을 시료 랙의 라벨이 부착된 바이알에 붓습니다. 샘플과 함께 샘플 랙을 보관하십시오.amples와 나머지 용액은 냉장고에 보관합니다.
먼저 이동상과 폐기물 용기를 설정합니다. 폐기물 라인이 폐기물 용기에 공급되고 이동상으로 다시 재활용되지 않는지 확인하십시오. 입구 이동상선이 이동상 용기에 공급되는지 확인합니다.
이동상의 유속이 0.5mL/분으로 설정되어 있는지 확인합니다. 이 유속은 모든 성분이 5분 이내에 용리될 수 있도록 하지만 개별 피크의 분리능을 보장할 만큼 느립니다.
다음으로, 용매 전달 시스템의 최소 및 최대 압력을 확인합니다. 이 설정은 각각 누출 또는 막힘이 발생할 경우 펌프를 차단합니다.
감지기 전면 패널에서 "0"을 눌러 블랭크를 설정합니다. 100-을 헹굽니다. L 탈이온수로 주사기를 넣은 다음 7 작업 표준 중 1 개의 여러 볼륨으로 주사기를 사용합니다. 그런 다음 주사기에 해당 용액을 채웁니다. 각 성분의 피크를 식별하기 위해 3개의 단일 성분 샘플로 시작합니다.
다음으로, 주입기 핸들을 로드 위치에 놓아 용액을 수동으로 주입합니다. 천천히 주입 100 ? L은 격막 포트를 통한 용액입니다.
데이터 수집 프로그램이 300초 동안 데이터를 수집하도록 설정되어 있는지 확인하여 3개의 피크가 모두 검출기를 통해 용리될 수 있는 충분한 시간을 허용합니다. 시험을 시작할 준비가 되면 주입기 핸들을 주입 위치로 돌려 샘플을 이동상에 주입합니다. 즉시 데이터 수집 프로그램에서 "평가판 시작"을 클릭하십시오. 스캔이 완료되면 7가지 표준 솔루션 각각에 대해 프로세스를 반복합니다. 처음 3개의 표준물질 각각에 대해 3개의 봉우리 중 하나만 나타납니다. 성분을 식별하는 데 사용되는 피크의 위치를 기록해 둡니다.
3개의 다이어트 소다 샘플을 선택하고 탄산을 제거하기 위해 열린 용기에 밤새 그대로 두십시오.
밤새 가스를 제거한 후 각 다이어트 소다당 약 3mL를 플라스틱 주사기에 넣습니다. 다음으로, 필터 팁을 주사기에 부착하고 필터를 통해 소다를 유리 바이알에 밀어 넣어 고체 입자를 제거합니다.
각 샘플 2mL를 이동상 2mL로 희석하여 소다 농도를 절반으로 줄입니다.
100 무승부 ? 소다 샘플 중 하나의 L을 주사기에 넣고 샘플 루프에 주입합니다. 표준 솔루션과 동일한 매개 변수를 사용하여 평가판을 실행합니다. 각 소다 샘플에 대해 반복합니다.
먼저, 표준 샘플의 피크 면적을 알려진 농도와 연관시킵니다. 이를 위해서는 삼각형 분석법을 사용하여 각 표준물질 시료에 대한 크로마토그래프의 피크 면적을 측정하십시오. 높이의 절반에 있는 너비를 사용하여 피크 높이 시간을 계산하고 이 값을 피크 영역으로 사용합니다.
피크 면적과 알려진 농도를 사용하여 각 성분에 대한 검량선을 생성하고 각 검량선에 대한 최소 제곱 적합도를 결정합니다.
피크 영역에서 다이어트 소다의 각 성분 농도를 계산합니다. 탄산음료는 HPLC에 주입하기 전에 모두 2배로 희석되었음을 기억하십시오. 이 결과를 바탕으로 12온스 소다 캔에 있는 각 성분의 mg을 계산합니다.
위치당연히 테스트된 3가지 탄산음료에는 모두 거의 같은 양의 방부제 벤조에이트가 포함되어 있었습니다. 그러나 콜라 제품에는 더 많은 카페인이 포함되어 있었습니다. 모든 구성 요소에 대해 계산된 값은 제조업체가 보고한 값과 잘 상관되었습니다.
HPLC는 광범위한 분석에 사용되는 다목적 기기입니다.
HPLC는 종종 펩타이드 분자를 정제하는 데 사용됩니다. 이 예에서는 막관통 펩타이드 복합체를 준비한 다음 단백질을 이황화 결합으로 산화적 가교결합시켜 안정화했습니다.
그런 다음 단백질을 포름산에 용해시키고 역상 HPLC를 사용하여 정제했습니다. 그런 다음 두 용매의 선형 구배를 사용하여 샘플을 용리하고 질량 분석법으로 순도를 확인했습니다.
HPLC는 실험실에서 합성된 유기 화합물을 식별하는 데에도 사용할 수 있습니다. 밀러-유리(Miller-Urey) 실험에서는 원시 지구에서 유기 화합물의 비생물적 합성이 연구되었다. 메탄과 암모니아와 같은 원시 가스는 물이 들어있는 플라스크에 도입되어 초기 바다를 시뮬레이션했습니다. 그런 다음 원시 지구의 번개를 모방하여 전기 방전을 가했습니다.
그런 다음 질량 분석법과 결합된 HPLC를 사용하여 물을 분석하고 알려진 아미노산 표준물과 비교했습니다. 이 실험에서 23개의 아미노산을 합성하여 확인했습니다.
JoVE의 HPLC 소개를 시청하셨습니다. 이제 기기 실행 및 결과 데이터 분석의 기본 사항을 이해해야 합니다.
시청해 주셔서 감사합니다!
HPLC 실험 중에 고압 펌프는 인젝터를 통해 저수지에서 이동 단계를 수행합니다. 그런 다음 부품 분리를 위해 역상 C18로 포장된 열을 통과합니다. 마지막으로, 이동상은 흡수도가 220nm에서 측정되고 폐병으로 끝나는 검출기 세포로 이동합니다. 구성 요소가 인젝터 포트에서 검출기로 이동하는 데 걸리는 시간을 보존 시간이라고 합니다.
이 실험에서는 역상 컬럼에서 분리가 수행되는 액체 크로마토그래프가 사용됩니다. 컬럼 치수는 3mm(즉, 100mm) x 100mm이며 실리카 패킹(3-μm 입자 크기)은 C18 옥타데실린실레인(ODS)으로 기능성된다. Rheodyne 6 포트 회전 사출 밸브는 처음에 작은 루프에 샘플을 저장하는 데 사용되며 밸브의 회전 시 이동 단계에 샘플을 소개합니다.
검출은 220 nm의 파장에서 흡수 분광법에 의한 것입니다. 이 실험은 검출기가 가변적이지 않은 경우 254nm에서 실행할 수 있습니다. 검출기의 데이터에는 디지털 멀티미터(DMM)를 사용하여 측정되고 데이터 수집 프로그램이 로드된 컴퓨터에서 읽는 아날로그 전압 출력이 있습니다. 생성된 크로마토그램은 샘플의 모든 구성 요소에 대한 피크를 가지고 있습니다. 이 실험을 위해, 세 가지 구성 요소는 모두 5 분 이내에 elute.
이 실험은 동위 동위 제일 상이라고 하는 단일 이동 단계 및 펌프를 사용합니다. 분리하기 어려운 샘플의 경우 그라데이션 모바일 단계를 사용할 수 있습니다. 이는 초기 이동 단계가 주로 수성 단계이며 시간이 지남에 따라 두 번째 유기 적인 모바일 단계가 점차 전체 모바일 단계에 추가되는 경우입니다. 이 방법은 시간이 지남에 따라이 단계의 극성을 제기하여 구성 요소의 보존 시간을 낮추고 가스 크로마토그래프의 온도 그라데이션과 유사하게 작동합니다. 컬럼이 가열되는 경우도 있습니다(일반적으로 40°C)는 주변 온도 변화와 관련된 보존 시간 오류를 없애는 경우가 있습니다.
역상 HPLC에서 컬럼 고정 위상 패킹은 일반적으로 C4, C8 또는 C18 패킹입니다. C4 컬럼은 주로 큰 분자량을 가진 단백질을 위한 반면, C18 컬럼은 펩타이드와 저분자량을 가진 기본 샘플을 위한 것입니다.
흡수 분광법에 의한 검출은 성분의 흡수 스펙트럼이 모두 쉽게 사용할 수 있기 때문에 압도적으로 선택의 검출 방법입니다. 일부 시스템은 전도도 또는 암페어와 같은 전기 화학 적 측정을 검출 방법으로 사용합니다.
이 실험을 위해, 이동상은 주로 20% 아세토닐릴과 80% 정제된 디온화(DI) 물이다. 소량의 아세트산이 첨가되어 이동상pH를 낮추어 고정된 패킹 단계에서 실라놀을 유지하여 비소화 상태로 유지합니다. 이렇게 하면 흡착 피크가 테일링에서 감소하여 더 좁은 피크를 제공합니다. 이어서, pH는 40% 수산화나트륨으로 조정되어 pH를 높이고 성분의 보유 시간을 줄이는 데 도움을 줍니다.
각 그룹은 표준 용액의 상이한 농도를 포함하는 7 개의 바이알 세트를 사용합니다(표 1). 처음 3은 각 피크를 식별하는 데 사용되며 마지막 4는 각 구성 요소에 대한 교정 차트를 만드는 것입니다. 표준 1-3은 교정 차트에도 사용됩니다.
| 수 | 카페인 (mL) | 벤조아테 (mL) | 아스파타메 (mL) |
| 1 | 4 | 0 | 0 |
| 2 | 0 | 4 | 0 |
| 3 | 0 | 0 | 4 |
| 4 | 1 | 1 | 1 |
| 5 | 2 | 2 | 2 |
| 6 | 3 | 3 | 3 |
| 7 | 5 | 5 | 5 |
표 1. 7개의 제공된 작업 표준을 준비하는 데 사용되는 재고 표준의 볼륨(각 표준의 총 부피는 50mL).
HPLC 크로마토그램은 표준의 교정곡선(그림 3)에기초하여 모든 샘플에 대해 각각 3개의 성분을 정량화할 수 있다.
이 실험 세트에서, 이러한 다이어트 소다의 12 온스 캔각각 성분의 다음 금액을 포함 결정 했다:
다이어트 콜라: 50.5 mg 카페인; 217.6 mg 아스파타메; 83.6 mg 벤조아테.
콜라 제로: 43.1 mg 카페인; 124.9 mg 아스파타메; 85.3 mg 벤조아테.
다이어트 펩시: 34.1 mg 카페인; 184.7 mg 아스파타메; 79.5 mg 벤조아테.
당연히, 모든 3 벤조아테의 대략 동일한 금액을 했다, 그것은 단지 방부제. 콜라 제품은 카페인이 조금 더 많았고, 콜라 제로는 다른 두 탄산음료보다 아스파탐이 훨씬 적었으며, 일부 향료에 구연산을 함유하고 있습니다.
다음 숫자는 3 다이어트 소다의 12 온스 캔에 카페인과 아스파타메의 실제 금액 (카페인 함량은 코카콜라와 펩시 웹 사이트에서 얻은. 아스파탐 콘텐츠는 LiveStrong.com 및 DiabetesSelfManagement.com 모두에서 얻었습니다.):
다이어트 콜라: 46 mg 카페인; 187.5 mg 아스파타메
콜라 제로: 34 mg 카페인; 87.0 mg 아스파타메
다이어트 펩시: 35 mg 카페인; 177.0 mg 아스파타메
샘플 계산(표 2):
STD#1의 카페인 농도: 카페인성분용 용액은 0.400g의 카페인을 500mL = 0.500 l → 0.800 g/L = 0.800 mg/mL로 희석했습니다.
STD#1은 이 솔루션의 1mL을 50.0 mL로 희석시켰습니다.
0.800 mg/mL * (1.0 mL / 50.0 mL) = 0.016 mg /mL = 16.0 mg / L.
STD#2는 이 솔루션의 2mL를 50.0 mL로 희석시켰습니다.
0.800 mg/mL * (2.0 mL / 50.0 mL) = 0.032 mg /mL = 32.0 mg / L.
세 가지 교정그래프(그림 4)의결과는 다음 방정식을 산출했습니다.
카페인 피크 지역 = 0.1583*[카페인 mg/L] - 0.574
아스파타메 피크 지역 = 0.02696*[아스파타메 mg/L] - 0.405
벤조아테 피크 지역 = 0.1363*[벤조아테 mg/L] - 1.192
다이어트 콜라: 카페인 피크 지역 = 10.68 = 0.1583*[카페인 mg/L] - 0.574
[카페인 mg/L] = (10.68 + 0.574)/ (0.1583) = 주입된 샘플에서 71.1 mg/L.
샘플은 2의 요인에 의해 희석되었기 때문에, 다이어트 콜라는 141.2 mg / L 카페인을 했다.
12 온스 당 금액 = (141.2 mg/L)(0.3549 mL/12-온스 캔) = 50.5 mg 카페인/캔.

그림 3. 5 가지 표준및 3 개의 샘플의 HPLC 크로마토그램.

그림 4. 3개의 구성 요소 각각에 대한 보정 곡선입니다.

표 2. 교정 곡선을 생성하는 데 사용되는 HPLC 평가판의 데이터 테이블입니다.
HPLC는 많은 응용 분야에 대한 분리 및 검출에 널리 사용되는 기술입니다. 가스 크로마토그래피(GC)는 시료가 가스 상에 있어야 하기 때문에 비휘발성 화합물에 이상적입니다. 비 휘발성 화합물은 설탕을 포함, 비타민, 약물, 그리고 대사 산물. 또한, 그것은 비 파괴적이다, 이는 각 구성 요소를 수집 할 수 있도록 추가 분석을 위해 (질량 분광법 등). 모바일 단계는 실질적으로 무제한이며, pH의 극성을 변경하여 더 나은 해상도를 달성할 수 있습니다. 그라데이션 모바일 단계를 사용하면 실제 시험 중에 이러한 변경 이 사항이 가능합니다.
인공 감미료 아스파타메와 관련 될 수 있는 가능한 건강 문제에 대 한 우려가 있다. 현재 제품 라벨링은 식이 음료 내부에 이러한 구성 요소의 양을 표시하지 않습니다. 이 방법은 카페인과 벤조아테와 함께 이러한 양을 정량화 할 수 있습니다.
다른 응용 프로그램은 물에 살충제의 양을 결정하는 포함; 진통제 정제에서 아세트아미노펜 또는 이부프로펜의 양을 결정; 선수의 혈 류에 존재 하는 성능 향상 약물 인지 여부를 결정; 또는 단순히 범죄 실험실에서 약물의 존재를 결정. 이러한 샘플의 농도와 종종 구성 요소의 ID를 쉽게 확인할 수 있지만, 한 가지 제한사항은 여러 샘플이 동일한 보존 시간에 가깝게 유지되어 동례를 할 수 있다는 것입니다.
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