방법 논문

외과 마우스 모형에 있는 골관절염의 표준화한 조직 형측정 평가

DOI:

10.3791/60991

⸱

2020년 5월 6일

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Center for Orthopedic Research and Translational Sciences, Department of Orthopedics and Rehabilitation, Pennsylvania State College of Medicine, 2Department of Biochemistry and Molecular Biology, Pennsylvania State College of Medicine, 3Department of Pharmacology, Pennsylvania State College of Medicine

이 논문에서

요약

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

현재 프로토콜은 골관절염을 동반하는 형태학적 관절 변화를 정량화하기 위한 엄격하고 재현 가능한 방법을 확립합니다. 이 프로토콜의 적용은 질병 진행을 모니터링하고 골관절염의 치료 적 개입을 평가하는 데 유용 할 수 있습니다.

초록

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

미국에서 가장 널리 퍼진 관절 질환 중 하나, 골관절염 (OA) 관절 연골의 점진적 변성을 특징으로, 주로 엉덩이와 무릎 관절에, 이는 환자의 이동성과 삶의 질에 중요한 영향을 초래. 현재까지, 연골 변성을 늦추거나 억제 할 수있는 OA에 대한 기존의 치료 요법이 없습니다. 현재, OA 병리학을 이해하고 효율적으로 감속, 중지 또는 OA를 역전시킬 수 있는 새로운 치료 접근법 또는 에이전트를 발견하기 위한 광범위한 연구가 진행되고 있습니다. 따라서, 관절 연골, 수축기 및 골격 뼈에서 OA 관련 병리학 적 변화를 정확하게 평가하기 위해 정량적이고 재현 가능한 접근 법을 가지고하는 것이 중요합니다. 현재, OA 심각도 및 진행은 주로 골관절염 연구 학회 국제 (OARSI) 또는 만킨 채점 시스템을 사용하여 평가된다. 이러한 채점 시스템의 중요성에도 불구하고, 그들은 반정적이며 사용자 주관성에 의해 영향을받을 수 있습니다. 더 중요한 것은, 그들은 정확하게 초기 질병 상태 또는 초기 치료 단계 동안 연골의 미묘한, 아직 중요한 변화를 평가하는 데 실패. 여기서 설명하는 프로토콜은 전산화되고 반자동화된 조직체형 소프트웨어 시스템을 사용하여 OA의 공동 변경 평가를 위한 표준화되고 엄격하며 재현 가능한 정량적 방법론을 수립합니다. 이 프로토콜은 기존 시스템에 강력한 추가를 제시하고 관절의 병리학 적 변화를 보다 효율적으로 감지 할 수 있습니다.

서론

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

미국에서 가장 널리 퍼진 관절 질환 중 하나인 OA는 주로 엉덩이와 무릎 관절에서 관절 연골의 점진적 변성을 특징으로 하며, 이는 환자의 이동성 및 삶의질에중대한 영향을 미치며1,2,,3. 관절 연골은 마찰을 최소화하고, 운동을 용이하게하고, 관절 압축을 견딜 수 있도록 설계된 이단 관절의 특수 결합조직입니다 4. 관절 연골은 두 가지 주요 구성 요소로 구성되어 있습니다 : 연골 세포와 세포 외 매트릭스. 연골세포는 세포외 기매트릭스의 개발, 유지 및 수리에 1차적인 역할을4하는 전문화된 대사 활성 세포이다. 연골 세포 비대 (CH)는 OA 발달의 주요 병리학 적 징후 중 하나입니다. 그것은 증가 세포 크기, 감소 프로테오글리칸 생산, 결국 연골 변성으로 이어질 연골 매트릭스 분해 효소의 증가 생산을 특징으로5,,6,,7. 또한, 관절의 상골골과 경막의 병리학적 변화는 OA 발달 및진행에중요한 역할을 한다8,9,10,,11,,12.9 현재까지 연골 변성을 억제하는 기존 치료법은 없습니다1,2,23,,13,,14.3 따라서, OA 병리학을 이해하고 OA를 감속하거나 중지 할 수있는 새로운 치료 접근법을 발견하는 것을 목표로 하는 광범위한 지속적인 연구가 있습니다. 따라서, 관절의 연골, 수축기 및 아초골 골에서 OA 관련 병리학적 변화를 정확하게 평가할 수 있는 정량적 및 재현가능한 접근법에 대한 필요성이 증가하고 있다.

현재, OA 심각도 및 진행은 주로 OARSI 또는 Mankin 채점시스템(15)을사용하여 평가된다. 그러나 이러한 채점 시스템은 반정적일 뿐이며 사용자 주관성에 의해 영향을 받을 수 있습니다. 더 중요한 것은, 그(것)들은 정확하게 질병 도중 또는 유전 조작 또는 치료 내정간섭에 응하여 합동에서 생기는 미묘한 변경을 평가하지 못합니다. 연골, 연골 또는 골격16,,17,,18,,19,,20,,21의조직 체형 분석을 설명하는 문헌에 산발적 인 보고서가 있습니다. 그러나 이러한 모든 관절 구성 요소의 엄격하고 재현 가능한 조직 체형 분석을 위한 상세한 프로토콜은 여전히 부족하여 현장에서 충족되지 않은 필요성을 야기합니다.

조직 형 분석을 사용하여 OA의 병리학 적 변화를 연구하기 위해, 우리는 내측 반월 상 연골 (DMM)의 불안정화를 통해 OA를 유도하기 위해 수술 OA 마우스 모델을 사용했다. murine OA의 확립 된 모델 중, DMM은 부상22,,23,,24,,25,,26의덜 외상성 메커니즘을 수반하기 때문에 우리의 연구를 위해 선택되었다. 반월 상 연골 인대 부상 (MLI) 또는 전방 십자 인대 부상 (ACLI) 수술에 비해, DMM은인간22,,24,,25,,26에서OA 발달과 유사한 OA의 보다 점진적인 진행을 촉진한다. 마우스는 관절 연골, 골격 및 경막의 변화를 평가하기 위해 DMM 수술 후 12주 동안 안락사시켰다.

이 프로토콜의 목표는 OA와 함께 제공되는 공동 변화를 평가하기 위해 표준화되고 엄격하며 정량적인 접근 방식을 수립하는 것입니다.

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프로토콜

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

12 주 된 남성 C57BL/6 쥐 잭스 연구소에서 구입 했다. 모든 마우스는 12시간 의 밝은/어두운 스케줄을 가진 방에 있는 마이크로 이솔레이터 케이지 당 3-5 마우스의 단으로 수용되었다. 모든 동물 절차는 국립 보건원 (NIH) 실험실 동물의 관리 및 사용에 대한 가이드에 따라 수행되었으며 펜실베니아 주립 대학의 동물 관리 및 사용위원회의 승인을 받았습니다.

1. 외상 후 골관절염 (PTOA) 수술 모델

  1. 케타민 (100 mg/kg)/xylazine (10 mg/kg) 복 강 주사를 통해 조합을 사용 하 여 마우스를 마 취, 관리 buprenorphine (1 mg/kg) 통증 완화를 위한 복 강 주사를 통해, 그리고 무릎 에 머리를 면도. 수술을 시작하기 전에 페달 반사의 부족을 확인합니다.
  2. 앞서 설명한 바와 같이 내측 반월 상 연골 (DMM) 수술의 불안정을 수행22,,23.
    참고 : 더 자세한 수술 프로토콜 정보22,,23에대한 참조 Glasson 외 및 싱 외 참조를 참조하십시오.
    1. 오른쪽 무릎 관절의 근위 경골 고원에 말단 슬개골에서 3mm 의 세로 절개를합니다. 봉합사를 사용하여 슬개골 힘줄을 대체하십시오.
    2. 관절 캡슐 내측을 힘줄로 열고 내측반지방패드를 이동하여 인터콘딜라 부위, 내측 반월상 연골 및 수막인대(23)를가시화한다.
    3. 내측 수막 인대를 경질하여 DMM을 완료하고 관절22,,23을불안정하게 합니다. 스테이플또는 봉합사로 절개 부위를 닫습니다.
  3. 유사한 절차에 따라 가짜 수술을 수행하지만 내측 수막 인대의 경면없이 수행하십시오.
    참고: 마우스는 DMM 또는 가짜 수술을 받기 위해 무작위로 하였다. 이전에 발표 된 문헌에 따르면, 마우스는 상당한 PTOA를 개발 12 DMM 수술 후 주22,,23,,24.

2. 마우스 안락사 및 샘플 수집

  1. 마우스 안락사
    1. DMM 후 12주 후, 피하 주사를 통해 케타민(100 mg/kg)/자일라진(10 mg/kg) 조합을 사용하여 마우스를 마취시다.
    2. 흉부 를 따라 피부를 통해 중간 선 절개를하고 관류 고정을위한 심장을 노출하는 흉곽을 철회27.
      참고: 적절한 설치류 고정을 위한 프로토콜에 대한 추가 정보는 Gage 외 참조뿐만 아니라 적절한 장비 조립 및 절차의 비디오묘사(27)를참조하십시오.
    3. 제조업체의 프로토콜에 따라 관류 장치를 설정합니다.
    4. 혈액이 밖으로 삭제되고 간이 창백해질 때까지 좌심실을 통해 헤파린화 한 식염수를 교전하여 마우스를 안락사. 완전한 마우스 고정이 이루어질 때까지 10% 중립 버퍼링된 포르말린으로 마우스를 관유하십시오.
      참고: 성공적으로 퍼우신 마우스는 뻣뻣해집니다. 자동 펌프 시스템을 사용하는 평균 관류 시간은 5-7 분입니다.
  2. 샘플 수집 및 준비
    1. 대퇴골과 경골 중간경골에서 뼈를 절단하여 무릎을 분리하고 주변 근육 조직을 해부.
    2. 무릎 관절을 실온에서 24 시간 동안 10 % 중성 완충 포르말린에 저장한 다음 6 일 동안 4 °C에서 고정을 계속하십시오.
    3. EDTA 데칼화 버퍼에 샘플을 1주일 동안 저장하여 온화한흔들림(28)으로실온에서 뼈를 데칼화한다. 3일마다 탈석 버퍼 솔루션을 변경합니다.
      참고: 디칼화 완충액은 증류수 850 mL와 빙하 아세트산 15 mL의 용액에 140 g의 초순수 EDTA 테트라나트륨을 용해시킴으로써 제조되었다. 완충액을 용액에 빙하 아세트산을 드롭바이브하여 7.6으로 평형화시켰다. pH =7.6에 도달하면, 완충액을 증류수로 총 부피 1L로 가져왔다. 탈석 버퍼를 신선하고 제조한 후 1주일 이내에 사용하였다.
    4. 무릎을 50 % 에탄올로 씻은 다음 70 % 에탄올을 각각 15 분 동안 씻은 다음 임베딩을 처리하십시오.
      참고 : 유체 전달 처리는 펜 스테이트 밀튼 S. 허쉬 의료 센터에서 분자 및 조직 병리학 코어에 의해 수행되었다. 최적의 시료 처리에 대한 권장 사항은 기관의 역사학 코어에 문의하십시오.
    5. 파라핀 블록의 바닥면을 향하는 관절의 내측 측면과 함께 마우스 무릎을 파라핀에 포함시다. 경골 및 대퇴 표면이 가능한 한 동일한 평면에 가깝게 되도록 포함 하는 동안 관절의 경골 측에 약간의 압력을 적용 합니다.

3. 마이크로 토메 절편 및 슬라이드 선택

  1. 마이크로토메 단면화
    1. 마이크로톤의 블록 홀더에 있는 평면 조정 노브를 사용하여 샘플 블록을 적절하게 향하도록 합니다.
    2. 파라핀 블록을 직면하여 대퇴골의 말단 양상, 경골의 근위 영역, 및 내측 반월상 연골의 전방 및 후방 뿔이 섹션 컬렉션을 위해 동일한 평면에 나타나게한다(보충 도 1A). 내측 반월 상 연골의 전방 및 후방 뿔이 서로 분리되기 시작할 때 슬라이드에서 섹션을 수집하기 시작합니다.
    3. 구조 크기를 비교하여 경골, 대퇴골 및 반월 상 연골이 동일한 평면에 나타나는지 확인하십시오. 경골과 대퇴골은 비슷한 크기여야하며, 반월 상 연골 뿔은 크기와 모양이 비슷합니다(보충 그림 1A). 구조물이 구조물에 비해 너무 큰 것처럼 나타나면 추가 면이 필요하다는 것을 나타냅니다. 중요한 것은 조인트 공간이 그대로 유지되는지 확인합니다.
    4. 파라핀내장마우스무릎의 시상부분을 5 μm 섹션의 내측 관절 구획을 통해 취하고 슬라이드의 단면을 수집합니다. 파라핀 블록당 약 30개의 섹션을 수집합니다.
  2. 슬라이드 선택
    1. 다섯 번째 섹션(즉, 슬라이드 5, 15 및 25)부터 시작하는 각 샘플에 대해 50μm 간격으로 세 개의 대표 섹션을 선택합니다. 선택한 슬라이드는 후속 염색, OARSI 채점 및 조직 체형 분석에 사용됩니다.
      참고: 총 섹션이 30개인 블록에서 전체 샘플을 명확하게 나타내기 위해 세트의 시작 부분(슬라이드 5-10), 중간(슬라이드 15-20) 및 끝(슬라이드 25-30)에서 슬라이드를 선택합니다. 샘플 간에 비슷한 깊이 수준에서 슬라이드를 선택합니다.

4. 헤마톡실린, 사프란 오렌지, 패스트 그린 스테인드

  1. 자일렌의 세 가지 변경으로 선택한 슬라이드를 분리합니다. 100% 에탄올, 95% 에탄올의 두 가지 변화, 70% 에탄올의 한 가지 변화로 슬라이드에 수분을 공급합니다.
  2. 헤마톡실린으로 슬라이드를 7분 간 염색한 다음, 10분 동안 흐르는 물로 씻어내고, 10초 동안 1.0% 빙하 아세트산으로 헹구고, 사프란닌-O를 5분 간 적어 0.5% 빙하 아세트산으로 빠르게 헹굽습니다.
  3. 증류수의 두 가지 변화로 슬라이드를 헹구고 공기를 건조시키십시오.
  4. 5분 동안 세 번의 실렌 교체로 슬라이드를 클리어한 다음 자일렌 기반 마운팅 미디어와 커버슬립으로 장착합니다.
    참고: 헤마톡실린은 골수 의 영역을 식별하기위한 핵 얼룩 역할을합니다. Safranin-O는 연골, 프로테오글리칸, 뮤신 및 비만 세포 과립을 염색하는 데 사용됩니다. 빠른 녹색은 뼈의 카운터 스테인으로 사용됩니다.

5. 슬라이드 이미징

  1. 현미경 및 컴퓨터 기반 이미징 소프트웨어에 부착된 사용 가능한 카메라를 사용하여 Safranin-O 및 Fast Green 스테인드 슬라이드를 이미지화합니다.
  2. 이미징 소프트웨어를 열고(재료 표참조) 이미징 창 중앙에 무릎 관절 영역(ROI)을 정렬합니다. 회전 현미경 슬라이드 단계를 사용하는 경우, 경골 표면이 이미징 영역의 수평 축의 너비에 걸쳐 있도록 슬라이드를 정렬합니다.
  3. 샘플 집합을 이미지화하기 시작하기 전에 카메라의 화이트 밸런스를 설정합니다(추가그림 2). 4x 및 10x 배율모두에서 관절 구획을 이미지화하고, 경골 및 대퇴 관절 표면 및 경골 골격이 각각의 이미지 ROIs 내에 포함되도록한다(보조 도 1A, B). OARSI 점수 매기기에 사용할 세 가지 선택한 각 수준에 대한 이미지를 저장합니다.
    참고: 카메라의 화이트 밸런스 설정은 사용 중인 소프트웨어 및 카메라 시스템에 따라 달라집니다. 일반적으로 카메라 탭 또는 기본 이미징 메뉴로 이동하여 아래로 스크롤하여 화이트 밸런스 설정. 화이트 밸런스 설정을 선택하면 작은 커서 또는 아이콘이 나타납니다(추가 그림2A). 커서를 사용하여 조인트 공간과 같이 얼룩이 없는 이미지/샘플 내의 영역을 선택하여 화이트 밸런스를 설정합니다.

6. 골관절염 연구 학회 국제 (OARSI) 점수15

  1. 모든 샘플에서 선택한 세 개의 Safranin-O 및 빠른 녹색 스테인드 슬라이드를 무작위로 지정합니다.
  2. 세 관찰자와 맹목적인 방식으로 OARSI 점수를 수행합니다. 간단히, 무작위로 한 번에 하나의 이미지를 표시하고 각 샘플에 대해 선택된 세 가지 수준 중 하나에 상관 관계, 각 이미지에 점수를 세 관찰자를 허용합니다.
    참고: 채점 척도15에대한 자세한 설명은 OARSI 점수 표를 참조하십시오.
  3. 각 관찰자의 개별 점수를 사용하여 각 섹션의 평균 점수를 계산합니다. 세 가지 대표 섹션의 평균 점수를 취하여 샘플당 평균 점수를 결정합니다.

7. 조직체학 분석

참고: 무릎 관절의 라이브 이미지는 현미경 카메라를 사용하여 터치 스크린 모니터에서 볼 수 있으며 스타일러스는 ROI를 수동으로 추적하는 데 사용됩니다. 히스토모퍼홈트립 소프트웨어의 기본 제공 알고리즘은 정의된 ROI에서 지정된 매개 변수(아래 프로토콜 참조)를 정량화합니다. 중요한 것은, OARSI 점수매기기에서 사용된 동일한 사프라닌-O 및 빠른 녹색 스테인드 섹션이 조직형 분석에 사용된다.

  1. 소프트웨어 설정 및 측정 준비
    1. 현미경, 카메라, 컴퓨터 및 터치스크린 모니터를 켭니다. 소프트웨어 아이콘을 클릭하여 소프트웨어 프로그램을 시작합니다. 슬라이드를 현미경 스테이지에 놓아 볼 수 있습니다.
    2. 측정 창 내에 샘플을 가운데에 두는 것입니다. 측정 그리드가 현미경에서 사용되는 목표에 맞게 적절한 배율로 설정되어 있는지확인합니다(보조 그림 3).
    3. 화면 상단의 파일 탭으로 이동하여 아래로 스크롤하여 설정 읽기를 클릭합니다. 설정 창을 열고 측정할 매개변수에 적합한 설정 파일을 선택합니다.
    4. 화면 오른쪽에 있는 목록에서 측정할 매개변수를 선택합니다(추가그림 3). 스타일러스 또는 마우스 커서를 사용하여 특정 조직 ROI를 측정하기 위해 아래에 설명된 단계에 따라 이미지를 추적합니다. 각 측정이 완료되면 마우스 오른쪽 버튼을 클릭하여 측정을 종료하고 다음 매개 변수로 계속합니다.
      참고: 측정할 매개 변수 목록은 설명된 ROI를 측정하기 위해 소프트웨어 회사와 협의하여 설정된 고유한 기본 설정 파일을 통해 작성됩니다. 전체 설정에 대한 자세한 내용은 토론을 참조하십시오.
    5. 모든 측정을 완료한 다음 소프트웨어 화면 하단의 요약 데이터 탭으로 이동합니다(추가그림 3). 화면 창을 클릭하고 키보드의 삽입 키를 누르거나 데이터를 복사하여 별도의 스프레드시트에 붙여넣습니다.
      참고: 무작위 및 블라인드 방식으로 조직 체형 분석을 수행합니다. 모든 샘플에 대한 모든 파라미터 측정을 완료한 후 데이터를 구성하고 각 샘플의 세 슬라이드에서 측정값을 평균으로 합니다.
  2. 총, 석회화 및 석회화되지 않은 연골 영역의 측정
    참고: 시판되는 소프트웨어(재료 표참조)를 사용하여 이러한 단계를 수행합니다. 이 섹션 전체에 걸쳐 논의된 연골 부위, 접합부 및 골격 부위에 대한 설명을 위해 보충 그림 1B,C를 참조하십시오.
    1. 연골이 관절 공간을 만나는 경골 연골 표면의 우수한 가장자리를 가로 질러 선을 그립니다. 석회화된 연골이 연골골 뼈와 만나는 연골-골착 접합부에서 두 번째 선을그립니다(그림 1B). 소프트웨어 영역 기능을 사용하여 총 연골 면적 측정값을 자동으로 얻을 수 있습니다.
    2. 연골의 석회화 및 석회화되지 않은 영역을 분리하는 자연 발생 라인인 조수표시를 따라 선을 그립니다. 석회화된 연골이 연골골 뼈와 만나는 연골-골착 접합부에서 두 번째 선을그립니다(그림 1B). 소프트웨어 영역 기능을 사용하여 석회화된 연골 영역 측정을 자동으로 얻을 수 있습니다.
    3. 총 연골 영역에서 석회화 된 연골 면적을 빼서 비석연성 면적을 계산합니다(그림 1B).
  3. 연골 세포 수와 표현형의 결정
    1. 조직 체 소프트웨어의 설정 내에서 별도의 카운트 함수를 생성하여 매트릭스 생산 및 매트릭스 비생산 연골세포(그림 1B)를구별합니다.
    2. 스타일러스를 사용하여 연골세포생성 또는 연골세포 생성 여부를 결정하여 지정된 표현형을 발현하는 각 연골세포 위에 작은 점을만든다(도 1B).
      참고 : 매트릭스 생산 (즉, 강한 Safranin-O 염색) 또는 매트릭스 비 생산 (즉, 매우 희미하거나 사프란노 얼룩 없음)으로 자신의 표현형에 따라 세포를 계산합니다.
  4. 경골 관절 표면 둘레의 측정
    1. 경골 연골의 표면을 가로 질러 선을 추적하여 절대 경골 관절 표면 둘레를 측정하여 개별 세동을 신중하게 정의합니다(그림 1C).
    2. 조도표시를 따라 두 번째 선을 그려 각 섹션의 평면에 대한 내부 제어 역할을합니다(그림 1C).
    3. 경골 관절 표면 둘레를 조수 경계로 나누어 경골 관절 표면 세동 지수를 계산합니다.
      참고: Tidemark 둘레는 일반적으로 샘플 간에 동일하므로 sham과 DMM 사이의 관절 표면 둘레의 차이는 일반적으로 절대 둘레 또는 세동 인덱스가 사용되었는지 여부에 관계없이 작습니다.
  5. 연골 골수 및 골수 공간 영역의 측정
    1. 헤마톡실린으로 염색된 하부 연골 영역의 영역을 개략적으로 개략적으로 하여 영역 기능을 이용하여 아초골 골수 공간 영역을 측정하여(즉, 패스트 그린에 대해 음수) 골격 골격 내의 총 골수 공간 영역을 결정합니다. 경골 골격 내의 모든 골수 공간의 총 면적을 결정하기 위해 이들 영역의 둘레에 선을그립니다(도 2B).
    2. 콘드로-골지 접합부와 성장판의 우수한 경계 사이의 영역을 개략적으로 개략적으로 개략적으로 하여 영역 함수를 이용하여 전체 경골 영역을 측정하고, 전방 및 후방 골형성물의 영역으로 측면으로 연장한다(도2B).
    3. 총 연골 영역으로부터 골격 근구 공간을 빼서 연골골 골격 면적을 계산한다(도2B,C).
  6. 전방 및 후방 골형성 부위 의 측정
    1. 골형성 부위를 측정하기 위해, 근위 경골의 전방 및 후방 골형성을 영역 함수를 사용하여 추적한다(도2B,E,F).
      참고: 골형성은 관절 연골과 성장판, 전방 또는 후방 사이의 골격 돌출부입니다. 경골의 전방 및 후방 측에 골형성 영역은 골격 뼈에 전방 또는 후방 영역을 추적하여 결정된다. 골연골과 골격 사이의 접합은 관절 연골에서 성장 판으로 이어지는 세포 선에 의해 명확하게 묘사됩니다. 골형성제와 사이노비움 사이의 접합은 뼈와 섬유조직 사이의 전이에 의해 정의된다.
  7. 활액 두께 측정
    1. 대퇴골의 전방 활액 의 내부 삽입 지점에서 반월 상 연골에 부착 점을 향해 선을 그려 영역 함수를 사용하여 전방 대퇴 활활 활활 두께를 측정합니다(그림 3B).
    2. 대퇴골에 경골의 외부 삽입으로부터 반월 상 연골에 대한 부착쪽으로 두 번째 선을 그립니다(그림 3B).
    3. 총 활액 면적을 활액 둘레로 나누어 활액 두께를 계산합니다.

8. 통계분석

  1. 측정된 매개 변수를 수집하고 각 샘플에 대한 세 가지 대표 섹션에서 결과를 평균화합니다. 페어링되지 않은 학생의 t 검정을 사용하여 데이터를 분석하여 두 그룹 또는 단방향 ANOVA를 비교하여 세 개 이상의 그룹을 비교합니다.
  2. 데이터를 평균 ± 표준 오차로 표시합니다.
    참고: 통계적 유의는 p ≤ 0.05에서 달성되었다.

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결과

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

DMM 유도 OA 는 관절 연골 변성 및 연골 세포 손실의 결과
DMM-유도 OA는 샴 마우스에 비해 OARSI 점수가 증가하여, 표면 침식 및 연골 손실을 뚜렷하게 특징으로하였다(도 1A,D). 여기에 상세한 히스토모퍼홈트리 프로토콜은 총 연골 영역과 비석연골 영역의 감소를 포함하여 여러 OA 관련 변화를 검출했다(도1A,B,E,G); 총 연골 세포 수의 감소; 그리고, 중요한 것은, 연골 세포 를 생산하는 매트릭스의 손실(그림 1H,I). 침식의 중증도를 나타내는 관절 표면의 변화는 연골 세동 지수를 사용하여 평가하였다. 전반적으로, 세동 지수는 DMM 마우스에서 증가했다

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토론

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

최근 골관절염 연구는 관절 내의 다른 조직과 각 조직이 질병 개시 또는 진행에서 수행하는 역할 사이의 크로스토크에 대한 우리의 이해를 향상시켰으며88, 9,9,10,,35,,36. 따라서, OA의 평가는 연골의 분석에 국한되어서는 안되지만 또한 연골 뼈와 수축기의 분석을 포함해야한다는 것이 명백해졌다. 그럼에도 불구하고, 관절 연골은 OA15,,37,,38의반정적 채점의 주요 초점이되었습니다. 계산된 조직체는 이미 근골격계 연구39,...

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감사의 글

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

우리는 비교 의학 직원의 부 및 펜 스테이트 밀튼 S. 허쉬 메디컬 센터에서 분자 및 조직 병리학 코어의 지원을 인정하고 싶습니다. 자금 출처: NIH NIAMS 1RO1AR071968-01A1 (F.K.), ANRF 관절염 연구 보조금 (F.K.).

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
10% 완충된 포르말린 인산염피셔 화학물질SF100-20다음 샘플 고정용
Fisher ChemicalA38S-212석회질 제거 완충액 준비 및 아세트산 용액 염색용 준비
Cintiq 27QHD 크리에이티브 펜 디스플레이Wacomhttps://www.wacom.com/en-es/products/pen-displays/cintiq-27-qhd-touch조직 분석 및 이미징용
Cintiq Ergo 스탠드Wacomhttps://www.wacom.com/en-es/products/pen-displays/cintiq-27-qhd-touch조직 형태 분석 및 이미징
용 에틸렌 디아민 테트라 아세트산, 테트라 나트륨 염 이수화물, 99% Acros 유기AC446080010석회질 제거 완충액 준비
빠른 녹색 염색SIGMA Life SciencesF7258샘플 염색
용 Fisherbrand Superfrost Plus 현미경 슬라이드Fisher12-550-15샘플 섹션 수집
용HistoPrep XyleneFisherbrandHC-700-1GAL샘플 탈파라핀화 및 염색용
Histosette II 조직 카세트 - 뚜껑 및 베이스 조합Fisher15-182-701A샘플 처리 및 임베딩용
HP Z440 워크스테이션HP제품 번호: Y5C77US#ABA조직분석 및 이미징용
수동 로터리 마이크로톰LeicaRM 2235용 시료 절편
마킹 펜Leica3801880시료 라벨링, 카세트 및 슬라이드용
OLYMPUS BX53 현미경OLYMPUShttps://www.olympus-lifescience.com/en/microscopes/upright/bx53f2/조직 분석 및 이미징용
OLYMPUS DP 73 현미경 카메라OLYMPUShttps://www.olympus-lifescience.com/en/camera/color/dp73/조직분석 및 이미징용 (단종됨)
ORION STAR A211 pH 측정기Thermo ScientificSTARA2110석회질 제거 완충액 준비용
OsteoMeasure 소프트웨어OsteoMetricshttps://www.osteometrics.com/index.htm조직형태 측정 및 분석용
관류 2 자동 압력 관류 시스템Leica모델 # 39471005마우스용 knee harvest
PRISM 7 SoftwareGraphPadInstitutional Access AccountStatistical Analysis
Safranin-O stainSIGMA Life SciencesS8884샘플 염색용
ThinkBoneStage - Rotating Microscope StageThink Bone Consulting Inc. - OsteoMetrics (supplier)http://thinkboneconsulting.com/index_files/Slideholder.php조직분석 및 이미징
Wacom Pro Pen 스타일러스Wacomhttps://www.wacom.com/en-es/products/pen-displays/cintiq-27-qhd-touch조직분석 및 이미징용
Weigerts 철 Hematoxylin AFisher5029713헤마톡실린 염색용
Weigerts 철 Hematoxylin BFisher5029714헤마톡실린 염색용
수확 아세트산, 빙하(인증된 A.C.S.) 물

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