Summary
Travmatik olmayan intraventriküler kanamanın kemirgen modellerinde kafa içi basıncının izlenmesi güncel literatürde yaygın değildir. Burada, bir sıçan hayvan modelinde intraventriküler kanama sırasında kafa içi basıncı, ortalama arteriyel basıncı ve serebral perfüzyon basıncını ölçmek için bir teknik gösterilmektedir.
Abstract
İntraventriküler kanamadan kurtulanlar genellikle önemli uzun süreli hafıza bozukluğu ile bırakılır; Bu nedenle, intraventriküler kanama hayvan modellerini kullanan araştırmalar esastır. Bu çalışmada, sıçanlarda travmatik olmayan intraventriküler kanama sırasında kafa içi basıncı, ortalama arteriyel basıncı ve serebral perfüzyon basıncını ölçmenin yollarını aradık. Deneysel tasarım üç Sprague Dawley grubunu içeriyordu: sahte, standart 200 μl intraventriküler kanama ve araç kontrol grupları. İntraparankimal fiberoptik basınç sensörü eklenerek, tüm gruplarda hassas kafa içi basınç ölçümleri elde edildi. Serebral perfüzyon basınçları kafa içi basıncı ve ortalama arteriyel basınç değerleri bilgisi ile hesaplandı. Beklendiği gibi, intraventriküler kanama ve araç kontrol gruplarının her ikisi de sırasıyla intraventriküler otolog kan ve yapay beyin omurilik sıvısı enjeksiyonu sırasında intrakraniyal basınçta bir artış ve ardından serebral perfüzyon basıncında düşüş yaşadı. İntraparankimal fiberoptik basınç sensörünün eklenmesi, hassas kafa içi basınç değişimlerinin izlenmesinde faydalıdır.
Introduction
İntraventriküler kanama (IVH), bir tür intrakraniyal kanama (ICH), önemli mortalite ve morbidite taşıyan yıkıcı bir hastalıktır. IVH, intrakraniyal ventriküllerin içinde kan ürünlerinin birikmesi olarak karakterize edilir. İzole IVH nadir görülür ve tipik olarak yetişkinlerde görülür1. Hipertansif kanama, rüptüre intrakraniyal anevrizma veya başka bir vasküler malformasyon, tümörler veya travma ile ilişkili olabilir1. IVH, sekonder beyin hasarına ve hidrosefali2 gelişimine yol açar. IVH'den kurtulanlar genellikle yaralanmalarını takiben önemli fonksiyonel, hafıza ve bilişsel bozukluklarla bırakılır. Bu uzun süreli bilişsel ve hafıza eksiklikleri, ICH3'ten kurtulanların% 44'ünde bildirilmiştir. Başka bir ICH türü olan subaraknoid kanamada (SAH), hayatta kalanların yaklaşık yarısının hafıza eksikliğine sahip olacağı iyi bilinmektedir ve SAH'ye ek olarak IVH'si olanlar için sonuçlar önemli ölçüde daha kötü olma eğilimindedir 4,5,6.
IVH sonrası hafıza disfonksiyonunun altında yatan mekanizmalar aydınlatılmaya devam etmektedir. Fonksiyonel ve hafıza disfonksiyonu olan travmatik olmayan IVH hayvan modellerini kullanan in vivo araştırmalar, bu tür hastalar için potansiyel terapötik hedefleri keşfetmek için gereklidir. IVH'yi takiben daha şiddetli hafıza ve fonksiyonel işlev bozukluğu olan hayvan modelleri, bu değişiklikleri incelemek için en iyisi olacaktır. Kıdemli yazarın laboratuvarı ayrıca, IVH sıçan modellerinde hafıza açıklarının gelişiminde yüksek kafa içi basıncın (ICP) rolünü özel olarak araştırmaktadır. Bu nedenle, IVH sırasında ICP'leri kesin olarak ölçme yöntemlerinin araştırılması önemliydi. Burada, bir IVH sıçan modelinde ICP'leri hassas bir şekilde ölçme yöntemleri hakkında rapor veriyoruz. ICP monitörizasyonu daha önce travmatik ICH ve subaraknoid kanamalı hayvan modellerinde kullanılmış olmasına rağmen, spontan IVH kemirgen modellerinde ICP monitörizasyonu literatürde yaygın olarak bildirilmemiştir 7,8. Bu nedenle, burada sunulan deneysel tasarım üç grup Sprague Dawley sıçanını içeriyordu: sahte, standart 200 μl intraventriküler kanama ve araç kontrolü. IVH grubu için otolog intraventriküler kan enjeksiyon modeli kullanıldı. Araç kontrol hayvanları için, steril Laktasyonlu Ringer çözeltisinin intraventriküler enjeksiyonu kullanıldı. ICP'ler, ortalama arteriyel basınçlar (MAP'ler) ve serebral perfüzyon basınçları (CPP'ler) intraoperatif olarak kaydedildi ve sonuçlar burada bildirildi.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Tüm araştırma yöntemleri ve hayvan bakımı / bakımı, Davis'teki Kaliforniya Üniversitesi'ndeki kurumsal kılavuzlara uygun olarak gerçekleştirilmiştir. Davis, Kaliforniya Üniversitesi'nin Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC), tüm hayvan kullanım protokollerini ve deneysel prosedürleri onayladı (IACUC protokolü #21874).
1. Hayvan barınağı
- 8-10 aylık Sprague-Dawley sıçanlarını edinin. Herhangi bir deneysel prosedürden önce, sıçanları bir vivaryumda barındırın ve yiyecek ve su ad libitum ile 12 saatlik bir ışık / karanlık döngüsünü takiben kafeslerinde genel adaptasyon için en az 1 hafta bekleyin.
2. Anestezi ve ameliyat öncesi işlemler
- Sıçanı 4 dakika boyunca% 4 izofluran ile uyuşturun. Sıçanı dişlerinden bir entübasyon platformunda sırtüstü pozisyonda asın ve endotrakeal kanül ve laringoskop kullanarak endotrakeal olarak entübe edin.
- Anestezi uygulanmış ve entübe edilmiş sıçanı bir ventilatöre yerleştirin (%2 izofluran ve O2/N2 taşıyıcı gaz). Arka bacak tutam gibi ağrılı bir uyarana yanıt gözlenmezse, sıçan yeterince uyuşturulur.
- Sıcaklığı sürekli izlemek için bir rektal termometre takın.
- Tüm ameliyat prosedürlerini steril teknik kullanarak gerçekleştirin. Saçları başın ve femur bölgesinin üzerine kesin ve ameliyattan önce üç alternatif Betadine ovma ve% 70 alkol ile cildi hazırlayın.
- Sıçanı ventilatörden geçici olarak çıkararak ve sekresyonları 10 mL'lik bir şırıngaya bağlı PE-50 tüpü ile aspire ederek biriken solunum sekresyonlarını aspire edin.
- Sıçanın gözlerini steril yapay gözyaşları göz merhemi ile koruyun.
- Kafa derisi insizyonundan önce lokal bupivakain (~% 0.25 çözeltinin ~ 0.1 mL'si) cilde ve deri altı dokulara enjekte edin.
3. Ameliyat protokolü
- İntraventriküler iğne ve kafa içi basıncı (ICP) monitörünün yerleştirilmesi
- Sıçanı stereotaktik bir çerçevede eğilimli bir konuma yerleştirin ve sıçanı kulak çubuğuna koyun.
- 15 bıçaklı bir neşter ile orta hat boyunca 1,5 cm'lik bir kafa derisi kesisi yapın.
- Hemostaz için gazlı bezle hafif basınç uygulayın.
- Steril bir pamuk ucu aplikatörü kullanarak, bregma dönüm noktası görünene kadar periostu kafatasından ayırın.
- Stereotaksi kullanarak bregmayı bulun ve işaretleyin ve bregmanın 1,4 mm lateral ve 0,9 mm posterior olmak üzere iki bilateral çapak deliğinin yerini işaretleyin.
- Elde taşınan bir matkap kullanarak, sağ ve sol yarımkürelerde bu iki küçük (2 mm'ye kadar) kafatası çapak deliği oluşturun. Fazla kemik yongalarını steril Laktasyonlu Ringer çözeltisi ile sulayın.
- Sağ yarımkürede, IVH oluşturmak için 28-G iğneyi kanülden sağ lateral ventrikülün derinliğine (bregma ile ilişkili olarak 4.6 mm) yerleştirmek için çapak deliği seviyesinde bir 22-G kılavuz kanül yerleştirin.
- Fiberoptik basınç sensörünü okuma ünitesine bağlayın. Okuma ünitesini açın ve seçilen birimlerin mmHg cinsinden olduğundan emin olun. Ardından, okuma ünitesi sıfır okuyana kadar ucunu Lactated Ringer çözeltisiyle küçük bir beherin içine batırarak sensörü hazırlayın. Lactated Ringers çözümünde sıfırlandıktan sonra, hepsi eklenecek şekilde ayarlanır.
- Sol yarımkürede, gerçek zamanlı ICP izleme için basınç sensörünü kortekse 2-3 mm derinliğe kadar yavaşça yerleştirin.
- Femoral arter kanülasyonu ve ortalama arteriyel basınç (MAP) monitörünün yerleştirilmesi
- ICP monitörünü taktıktan sonra, sol uyluk ve kasık bölgesine kolay erişim için sıçanın alt gövdesini çevirin.
- Steril hazırlama ve lokal bupivakain uygulamasından sonra, 15 bıçaklı bir neşter ile arka bacak üzerinde 1,5 cm'lik bir cilt kesisi yapın.
- Sol femoral arteri önce yüzeysel olarak bir hemostat ile ve daha sonra mikroskop altında ince uçlu forseps kullanarak daha derin tabakaları diseke edin. Bitişik arterin yerini belirlemeye yardımcı olmak için derin mavi femoral veni tanımlayın.
- Distal femoral arteri 3-0 ipek sütür kullanarak bağlayın ve femoral arterin proksimal kısmına geçici bir metal klips yerleştirin.
- Okuma ünitesine bağlı ikinci bir fiberoptik basınç sensörünün önceden astarlanmış olmasını sağlayın. Basınç sensörünü, daha sonra kapatılan bir Tuohy Borst'a yerleştirilen polietilen (PE-50) boruya yerleştirin. Tuohy Borst'u bir ucunda 1 mL'lik bir şırıngaya bağlı 3 yönlü bir stopcock'a ve diğer ucunda PE-50 borulu 22-G iğneye bağlayın.
- Mikroskop altında, mikro makasla 2 mm'lik bir femoral arteriyotomi yapın ve kurulumun geri kalanına bağlı PE-50 tüp ile kanüle edin.
- İntraventriküler enjeksiyon
- 1 mL'lik bir şırınga kullanarak 500 μL kan aspire edin ve basınç sensörünün MAP'yi okumasını sağlamak için 3 yönlü stopcock'u çevirin.
- PE-50 tüpüne bağlı 28-G intraventriküler iğneyi, IVH hayvanları için aspire edilmiş kan ve araç kontrol hayvanları için Laktasyonlu Ringer'larla astarlayın. Daha sonra bu iğneyi kılavuz kanüle sağ lateral ventrikülün derinliğine yerleştirin.
- 100 μL / dak hızını kullanarak, 1 mL şırıngayı baş parmağınızla pompalayarak kan veya steril Laktasyonlu Ringer çözeltisini (200 μL) sağ lateral ventriküle enjekte edin. Bundan önce ve intraventriküler enjeksiyon sırasında, ICP, arteriyel kan basıncı ve rektal sıcaklığı izleyin ve kaydedin.
- Enjeksiyon sonrası ICP ve MAP değerlerini izleyin ve kaydedin.
- Kapama
- İntraventriküler enjeksiyonun tamamlanmasının ardından, femoral artere yerleştirilen basınç sensörünü içeren PE-50 tüpünü geri çekin ve kanamayı önlemek için geçici klipsi femoral artere uygulayın.
- 3-0 ipek sütür kullanarak femoral arterin proksimal kısmını bağlayın.
- Femoral kesiyi 3-0 ipek kullanarak kesilmiş bir şekilde kapatın.
- Kılavuz kanülü intraventriküler iğne ve ICP monitörü ile çıkarın.
- Çapak deliklerini kemik mumu ile kapatın.
- Kraniyal insizyonu 3-0 ipek dikişle kesilmiş bir şekilde kapatın.
- İnsizyona topikal bupivakain uygulayın ve ameliyat sonrası 0.35 mL karprofen (5 mg / kg) enjekte edin. Sternal yassılığı korumak için yeterli bilinci yeniden kazanana kadar hayvanları gözetimsiz bırakmayın.
- Sıçanların gözetim altında ameliyattan sonra tamamen iyileşmelerine izin verin ve iyileşmeden sonra yiyecek ve suya serbestçe erişerek onları ev kafeslerine geri döndürün.
4. Postoperatif yönetim
- İyileşmelerini, nörolojik durumlarını, davranışlarını, ağırlıklarını ve insizyonlarını izlemek için ameliyat sonrası yedi gün boyunca tüm postoperatif hayvanları günlük olarak kontrol edin.
- Ameliyat sırasındave postoperatif 1. ve 2. günlerde deri altı enjeksiyonu ile 0.35 mL karprofen (5 mg / kg) uygulayın.
- Ameliyat sonrası 7. günde dikişleri steril bir şekilde alın.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
İntrakraniyal, ortalama arteriyel ve serebral perfüzyon basınçları
Hem ICP'ler hem de MAP'ler tüm hayvanlarda intraoperatif olarak izlendi (Şekil 1). Sıçanlar 8-10 aylıktı ve ortalama ağırlığı 495 ± 17 g idi. Gerçek zamanlı ICP grafikleri de toplandı (Şekil 2). Sahte grup hariç, IVH ve araç kontrol gruplarında intraventriküler enjeksiyon sırasında ICP'ler anlamlı olarak artmıştır (Şekil 3). ICP'ler, IVH grubunda (43 mmHg) araç kontrolüne (36.5 mmHg) kıyasla daha fazla zirveye ulaştı. ICP'ler daha sonra bu hayvan gruplarında intraventriküler enjeksiyondan sonraki beş dakika içinde hızla azaldı ve normalleştirildi. Fiberoptik sensör, ICP'leri ve MAP'leri gerçek zamanlı olarak izlemek için başarıyla kullanıldı. MAP'lerin prosedür boyunca benzer kaldığı, CPP'lerin ise kan veya Laktasyonlu Ringer çözeltisinin intraventriküler enjeksiyonu sırasında azaldığı gözlenmiştir (Şekil 3).
Resim 1: Deney düzeneği . (A) Çapak deliklerinin yeri. (B) Tüm deney düzeneğinin tasviri. Kısaltmalar: A-P, anterior ila posterior eksen; M-L, medial ila lateral eksen. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 2: ICP kayıtları. (A) sahte, (B) IVH ve (C) araç kontrol hayvanlarında gerçek zamanlı kafa içi basınç (ICP) kayıtları. Ok, IVH/LR enjeksiyonunun başlangıcını gösterir. Her grupta N=1. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 3: ICP, MAP ve CPP grafikleri. (A) Ortalama kafa içi basıncı (ICP), (B) ortalama arteriyel basınç (MAP) ve (C) ortalama serebral perfüzyon basıncı (CPP) değerleri, ventrikül enjeksiyonu sırasında, ventrikül enjeksiyonu sırasında ve IVH ve araç kontrol hayvanlarında ventriküler enjeksiyon sonrası ortalama serebral perfüzyon basıncı (CPP) değerleri. Her grupta N=1. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Bu çalışmada, travmatik olmayan bir IVH sıçan hayvan modelinde ICP'leri, MAP'leri ve CPP'leri ölçme mekanizmaları araştırılmıştır. Sonuçlar aşağıdaki gruplardan kaydedildi: sahte, VH 200 μL ve araç kontrolü (yapay beyin omurilik sıvısı intraventriküler enjeksiyon) hayvanlar. Bu deneysel tasarım, IVH enjeksiyonu sırasında ICP'lerin nasıl izlenebileceğini araştırmak için seçildi, çünkü ICP'lerdeki artışın IVH hayvan modellerinde daha önemli ikincil beyin hasarına ve dolayısıyla hafıza eksikliğine katkıda bulunabileceğini varsaydık. Bu nedenle, bu çalışmanın amacı, travmatik olmayan IVH'yi takiben ICP'lerin, MAP'lerin ve CPP'lerin objektif olarak izlenmesini sağlayan bir IVH hayvan modeli oluşturmaktı, böylece IVH tarafından indüklenen ICP'lerin sonraki hafıza disfonksiyonu üzerindeki etkilerine odaklanacak gelecekteki deneylerde bunu daha da uygulayabiliriz. Bu pilot çalışma, ICP'lerin ve MAP'lerin sırasıyla sol lateral ventrikül ve femoral artere yerleştirilen bir fiberoptik basınç sensörü kullanılarak hassas bir şekilde izlenebileceğini bulmuştur. ICP'ler, intraventriküler kan ve yapay beyin omurilik sıvısı enjeksiyonu sırasında önemli ölçüde artar. Ek olarak, karşılık gelen CPP'ler intraventriküler enjeksiyon sırasında azalır.
Bu çalışmanın en önemli endişelerinden biri, basınçlardaki (ICP'ler ve MAP'ler) çok küçük değişiklikleri doğru bir şekilde izlemenin ve kaydetmenin bir yolunu bulmaktı. Bu bir fiberoptik basınç sensörü kullanılarak yapıldı. Fiberoptik sensörün, basınçtaki minimum değişiklikleri doğru bir şekilde ölçmek için küçük olması gerekiyordu. Kullanılan fiberoptik sensör, korunması için bir kablo kılıfında yalıtılmıştır. Kılıfın dış çapı 0,9 mm'dir ve sensör ucunun çapı 420 μm'dir. Sıçan ICP ve MAP değerlerinin bu sensör için normal çalışma basınç aralığına (-50 mmHg ila +300 mmHg) düşebilmesini sağladık. Ayrıca, fiberoptik sensörün hassasiyetinin küçük, ±1 mmHg (Opsens Solutions) olması sağlandı.
Şu anda mevcut klinik öncesi ICH modellerinin çoğu, en yaygın iki deneysel tasarım olarak tam kan infüzyonu ve kollajenaz (IVH ile sonuçlanan hücre dışı matriksi yaralamak için kollajenaz enzimi enjeksiyonu) modellerine sahip kemirgenleri kullanmaktadır 9,10. Tam kan infüzyon modeli, bir kraniyotomi veya çapak deliği yoluyla kan infüzyonunu içerir ve sadece sıçanlarda değil, domuzlarda ve primat türlerinde de bildirilmiştir. Bununla birlikte, hiçbir hayvan modeli mükemmel değildir ve her birinin kendi avantajları ve dezavantajları vardır 9,10. Sonuçlar, davranış, serebral ödem, hücre ölümü ve hematom büyüklüğü açısından ICH çalışmalarında test edilen en yaygın sonlanım noktalarından bazılarıdır. Bilişsel ve hafıza fonksiyon bozukluğunu değerlendiren davranış testlerinin çoğu, Morris su labirenti testi10'u kullanmaktadır. IVH travmatik olmayan sıçan modellerinde ICP'leri objektif olarak ölçen çalışmalar bulamadık.
MacLellan ve ark. tarafından yapılan yakın tarihli bir derleme, klinik öncesi ICH literatürü9 ile ilgili birçok önemli sorun bulmuştur. MacLellan ve ark., çalışmaların ezici bir çoğunluğunun sadece olumlu tedavi etkileri hakkında rapor verdiğini bulmuşlardır. Olumsuz sonuçları olan birçok çalışma alt düzey dergilerde yayınlanır veya hiç yayınlanmaz, bu da önemsiz bir yayın yanlılığına katkıda bulunmaz. Ayrıca, birçok çalışmanın, diğerlerinin yanı sıra randomizasyon, hayvanların yaşı ve cinsiyeti gibi metodolojiyi tanımlamadığını bulmuşlardır. Körleştirme eksikliği, fizyolojik değişkenlerin raporlanmaması ve istatistiksel güç, bu derlemede gözlemlenen ek zayıflıklardır. Bütün bunlar, deneyi10'u kopyalamaya çalışan diğerleri için zorlaştırıyor. Ek olarak, Hatman ve ark. gibi bazı çalışmalar, öğrenme ve hafıza eksikliklerinin akut olma eğiliminde olduğunu ve hayvan modellerinde deneysel ICH'yi takip eden 8 hafta içinde olduğu gibi erken bir zamanda azaldığını göstermiştir11. Bu nedenle, hayvan modellerindeki bu kısa süreli hafıza etkileri, insan deneklerde ICH'den sonra meydana gelen uzun süreli hafıza ve bilişsel işlev bozukluğunu doğru bir şekilde yansıtmayabilir.
Bu çalışma sınırlama olmaksızın değildir. Önemli bir sınırlama, hayvanların düşük kerestesidir. Bu bir pilot çalışmaydı ve gelecekteki hayvan çalışmaları, burada gözlemlenen sonuçları sağlamlaştırmak için daha fazla sayıda hayvan içerecek. Bu çalışmanın bir diğer sınırlaması, femoral arter ve Tuohy Borst sistemi, tüpü yıkamak için düşük heparinize salin kullanılmasına rağmen her ikisinin de kolayca pıhtılaşması nedeniyle tüm ameliyat süresince MAP'lerin yeterince izlenememesidir.
Sonuç olarak, burada, travmatik olmayan bir IVH sıçan hayvan modelinde ICP'leri, MAP'leri ve CPP'leri tam olarak izleme yöntemleri hakkında rapor veriyoruz. Bunun gibi çalışmalar, daha tutarlı bir IVH hayvan modeli oluşturma ve daha sonra daha titiz klinik öncesi araştırmalar yapma yolunu açacaktır. Travmatik olmayan IVH hayvan modelleri üzerinde daha yüksek kaliteli klinik öncesi araştırmalar, gelecekte IVH mağdurları için potansiyel terapötik seçenekleri aydınlatmak için kritik öneme sahiptir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Tüm yazarlar çıkar çatışması olmadığını bildirmektedir.
Acknowledgments
Bu çalışma NINDS hibesi tarafından finanse edildi: K08NS105914
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 0.25% bupivacaine | Hospira, Inc. | 409115901 | |
| 1 mL syringe | Covetrus | 60734 | |
| 10% providine iodine solution | Aplicare | MSD093947 | |
| 20 mL syringe | Covidien | 8881520657 | |
| 22 G needles | Becton Dickinson | 305155 | |
| 28 G intraventricular needles | P technologies | 8IC313ISPCXC | C313I/SPC 28-Gneedles to fit 22-G guide cannula with 6 mm projection |
| 3-0 silk suture | Henry Schein, Inc. | SP116 | |
| 3-way-stopcock | Merti Medical Systems | M3SNC | |
| 4% paraformaldehyde | Fisher Chemical | 30525-89-4 | |
| AnyMaze software | Any-Maze behavioral tracking software | Stoelting CO, USA | |
| Artificial ointment | Covetrus | 48272 | |
| Blood collection vials with EDTA | Becton Dickinson | 367856 | |
| Bone wax | CP Medical, Inc. | CPB31A | |
| Carprofen | Zoetis, Inc. | 54771-8507-1 | |
| Centrifuge | Beckman | BE-GS6R | Model GS-6R |
| Cotton tip applicators | Covetrus | 71214 | |
| Drill | Dremel | 1600A011JA | |
| Fiberoptic pressure sensors with readout units | Opsens Medical | OPP-M200-X-80SC- 2.0PTFE-XN-100PIT-P1 and LIS-P1-N-62SC | Opp-M200 packaged pressure sensors with LifeSens system |
| Forceps | 11923-13, 11064-07 | ||
| Gauze | Covetrus | 71043 | |
| Guillotine | World Precision Instruments | 51330 | |
| Heating pad with rectal thermometer | CWE, Inc. | 08-13000 ,08-13014 | TC1000 Temperature controller |
| Hemostats | 13013-14, 13008-12 | ||
| Isoflurane | Covetrus | 29405 | |
| Lactated ringers | Baxter Healthcare Corp. | Y345583 | |
| Laryngoscope | American Diagnostic Corporation | 4080 | |
| Metal clip | Fine Scientic Tools | 18056-14 | |
| Micro scissors | Fine Scientic Tools | 15007-08 | |
| Microscope | Leica | model L2 | |
| Needle driver | 12003-15 | ||
| Polyethylene tubing | Thermo Fisher Scientific | 14-170-12B | PE-50 tubing |
| Rats | Envigo | Sprague Dawley rats 8–10 months old | |
| Scalpel | 10010-00 | ||
| Scissors | 14090-11 | ||
| Stereotaxic instrument | Kopf instruments | Model 940 with ear bars | |
| Syringe pump | KD Scientific | 780100 | Model 100 series |
| Tuohy Borst | Abbott | 23242 | |
| Ventilator | Harvard rodent ventilator | 55-0000 | Model 683 |
References
- Gates, P. C., Barnett, H. J. M., Vinters, H. V., Simonsen, R. L., Siu, K.
- Strajle, J., Garton, H. J. L., Maher, C. O., Muraszko, K., Keep, R. F., Xi, G. Mechanisms of hydrocephalus after neonatal and adult intraventricular hemorrhage. Translational Stroke Research. 3, Suppl 1 25-38 (2012).
- Murao, K., Rossi, C., Cordonnier, C. Intracerebral hemorrhage and cognitive decline. Revue Neurologique. 169, 772-778 (2013).
- Al-Khindi, T., Macdonald, R. L., Schweizer, T. A. Cognitive and functional outcome after aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Stroke. 41, 519-536 (2010).
- Kreiter, K. T., et al. Predictors of cognitive dysfunction after subarachnoid hemorrhage. Stroke. 33, 200-208 (2002).
- Zanaty, M., et al. Intraventricular extension of an aneurysmal subarachnoid hemorrhage is an independent predictor of a worse functional outcome. Clinical Neurology and Neurosurgery. 170, 67-72 (2018).
- Gabrielian, L., Willshire, L. W., Helps, S. C., vanden Heuvel, C., Mathias, J., Vink, R. Intracranial pressure changes following traumatic brain injury in rats: lack of significant change in the absence of mass lesions or hypoxia. Journal of Neurotrauma. 28, 2103-2111 (2011).
- Kolar, M., Nohejlova, K., Duska, F., Mares, J., Pachl, J. Changes of cortical perfusion in the early phase of subarachnoid bleeding in a rat model and the role of intracranial hypertension. Physiological Research. 66, 545-551 (2017).
- Ariesen, M. J., Claus, S. P., Rinkel, G. J. E., Algra, A. Risk factors for intracerebral hemorrhage in the general population. A systematic review. Stroke. 34, 2060-2066 (2003).
- MacLellan, C. L., Paquette, R., Colbourne, F. A critical appraisal of experimental intracerebral hemorrhage research. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 32, 612-627 (2012).
- Hartman, R., Lekic, T., Rojas, H., Tang, J., Zhang, J. H. Assessing functional outcomes following intracerebral hemorrhage in rats. Brain Research. 1280, 148-157 (2009).
